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Avances en Odontoestomatología

versión On-line ISSN 2340-3152versión impresa ISSN 0213-1285

Av Odontoestomatol vol.35 no.3 Madrid sep./dic. 2019  Epub 18-Mayo-2020

https://dx.doi.org/10.4321/s0213-12852019000300003 

Originales

Capacidad de Disolución del Hipoclorito de Sodio con o sin Activación

Dissolution Capacity of Sodium Hypochlorite with or without Activation

H Monardes Cortés*  , MT Martínez Uribe*  , F Arriagada Arriagada*  , J Abarca Reveco* 

*Programa de Especialización en Endodoncia, Facultad de Odontología, Universidad San Sebastián, Santiago, Chile.

RESUMEN

Introducción:

Una de las propiedades del hipoclorito de sodio (NaOCl) es la disolución de tejido pulpar remanente después de la instrumentación. Los sistemas de activación del irrigante pretenden mejorar esta propiedad. Este trabajo tiene como objetivo determinar la capacidad de disolución de tejido de NaOCl con y sin activación sónica o ultrasónica en diferentes concentraciones.

Metodología:

300 muestras de tejido conectivo de paladar de cerdo de 4,5 * 2 mm obtenidos 1 día antes del estudio, congelado a -15©C en 100% de humedad, fueron pesados en una balanza analítica y sometidos a la acción de NaOCl 1%, 3% y 5% con y sin activación durante 45 minutos, cambiando la solución cada 10 minutos. Se secaron en papel filtro y se pesaron nuevamente. Los datos se analizaron mediante tests Kolmogorov – Smirnov; Kruskal – Wallis y Mann – Whitney.

Resultados y Discusión:

NaOCl 1% tiene menor capacidad de disolución que mejora levemente al activarlo. NaOCl 3% tiene mejor capacidad de disolución que NaOCl 1%, pero la activación no la mejora significativamente. NaOCl 5% tiene mayor capacidad de disolución, que aumenta con la activación, sin significancia entre activación sónica y ultrasónica, lo que se debería a que la mucosa palatina porcina requiere más tiempo para su disolución completa, y a que el volumen de tejido utilizado es mayor que una pulpa dental.

Conclusiones:

Bajo las condiciones de este estudio, sólo NaOCl 5% mostró mayor capacidad de disolución con la activación. NaOCl 1% y 3% no mejoraron significativamente con la activación.

PALABRAS CLAVE: Hipoclorito de sodio; Disolución de tejidos; Activación

ABSTRACT

Introduction:

One of the properties of sodium hypochlorite (NaOCl) is dissolution of pulp tissue remaining after instrumentation. Irrigant activation systems aim to improve this property. The objective of this work is to determine tissue dissolution capacity of NaOCl with and without sonic or ultrasonic activation in different concentrations.

Methodology:

300 pork palate connective tissue samples of 4.5 * 2 mm obtained 1 day before the study, frozen at -15 © C in 100% humidity, weighed on an analytical balance and subjected to the action of NaOCl 1%, 3% and 5% with and without activation for 45 minutes, changing the solution every 10 minutes. They were dried on filter paper and weighed again. The data were analyzed by Kolmogorov-Smirnov tests; Kruskal - Wallis and Mann - Whitney.

Results and Discussion:

NaOCl 1% has a lower dissolution capacity that improves slightly when activated. NaOCl 3% has better dissolution capacity than NaOCl 1%, but the activation does not significantly improve it. NaOCl 5% has greater dissolution capacity, which increases with activation, without significance between sonic and ultrasonic activation, which is due to the fact that the porcine palatine mucosa requires more time for its complete dissolution, since the volume of tissue used is greater than a dental pulp

Conclusions:

Under the conditions of this study, only NaOCl 5% showed greater dissolution capacity with activation. NaOCl 1% and 3% did not improve significantly with activation.

KEY WORDS: Sodium hypochlorite; Tissue dissolution; Activation

INTRODUCCIÓN

La eliminación de restos pulpares vitales y necróticos, microorganismos y toxinas microbianas de los canales radiculares, es esencial para el éxito del tratamiento en endodoncia.

Durante la preparación químico – mecánica de los canales radiculares, los instrumentos eliminan parte de los contenidos del canal, la irrigación juega un papel indispensable en la eliminación de tejido orgánico1, en particular, en aquellas partes que son inaccesibles para la instrumentación por la compleja anatomía radicular2.

El hipoclorito de sodio (NaOCl) es el irrigante del canal radicular más comúnmente utilizado, entre sus características destacan propiedades antimicrobianas y la capacidad de disolución de tejidos orgánicos2. Es por esto, que se han descrito e investigado diversas maneras de mejorar la eficacia de las preparaciones de NaOCl en la disolución del tejido, entre otras, aumentando la concentración, el pH3 y la temperatura de las soluciones, incorporando la activación sónica o ultrasónica2.

El objetivo de la presente investigación es determinar qué tan efectiva es la concentración y activación de NaOCl en la disolución de tejido orgánico.

MATERIALES Y MÉTODOS

Se realizó un estudio experimental in vitro, utilizando NaOCl en 3 diferentes concentraciones, 1%, 3% y 5% (Laboratorio Hertz, Chile), de fabricación reciente y pH promedio 11.5, los cuales fueron mantenidos antes y durante su uso, en un contenedor frío, oscuro y ventilado.

Como tejido de estudio se utilizó tejido conectivo de paladar de cerdo recién faenado con fines de alimentación humana, en un recinto debidamente autorizado por la autoridad sanitaria, el cual fue obtenido un día antes del estudio experimental y mantenido congelado a -15 ©C con 100% de humedad, hasta 30 minutos antes del inicio del trabajo experimental. El tejido fue cortado en piezas de 4,5 x 2 mm con un bisturí circular (Biohorizons Tissue Puch 4.5 mm, Alabama, USA) diseñado para la obtención de este tipo de muestras, puesto que el área de superficie tiene un impacto importante en la disolución de tejido, por lo que cada muestra debe tener una forma y tamaño similar (Figura 1).

Figura 1. Muestras de tejido conectivo de paladar de cerdo de 4,5mm x 4,5mm. 

Las muestras fueron pesadas previamente en una balanza analítica (Adam Equipment, ACBplus-600H. Milton Keynes, U.K.) y distribuidas aleatoriamente en 1 grupo control y 9 grupos experimentales de 30 muestras cada uno:

  • -Grupo 1: Tejido en cloruro de sodio al 0,9 %

  • -Grupo 2: Tejido en NaOCl al 1%, no activado

  • -Grupo 3: Tejido en NaOCl al 1%, activación sónica

  • -Grupo 4: Tejido en NaOCl al 1%, activación ultrasónica

  • -Grupo 5: Tejido en NaOCl al 3%, no activado

  • -Grupo 6: Tejido en NaOCl al 3%, activación sónica

  • -Grupo 7: Tejido en NaOCl al 3%, activación ultrasónica

  • -Grupo 8: Tejido en NaOCl al 5%, no activado

  • -Grupo 9: Tejido en NaOCl al 5%, activación sónica

  • -Grupo 10: Tejido en NaOCl al 5%, activación ultrasónica.

Las muestras de los grupos 2, 5 y 8 fueron depositadas en un frasco de vidrio de 7ml, el cual contenía NaOCl al 1%, NaOCl al 3% e NaOCl al 5% respectivamente, por un tiempo de 45 minutos, realizando recambio total de la solución cada 10 minutos. Luego, las muestras se dejaron en papel filtro por 5 minutos para absorber la solución residual. Finalmente, se procedió a hacer el pesaje final.

Las muestras de los grupos 3, 6 y 9 fueron sometidas al mismo procedimiento, pero además se realizaron 3 ciclos de activación de la solución por un período de 30 segundos, con un sistema de vibración sónica Endoactivator® (Denstply, Maillefer, Suiza), con una punta de polímero flexible de tamaño 25/0.4, la cual fue accionada en el frasco, sin tocar las muestras.

Las muestras de los grupos 4, 7 y 7 fueron sometidas al mismo procedimiento anterior, pero se activaron con un sistema de vibración ultrasónica compuesto por un ultrasonido Suprasson P5 Newtron® (Satelec Acteon, Merignac Cedex, France) y una punta ultrasónica VDW Irri K (VDW GmbH, Munich, Germany).

Los datos obtenidos se registraron en una planilla Excel especialmente diseñada y sometidas a análisis estadístico utilizando el software estadístico Stata V 15.1.

Tabla 1. Pérdida de peso por cada grupo, expresada en porcentaje 

Activación Grupo Media% Máx Min Ranking
Sin Activación 2(1%) 50.34 70.00 25.00 45.00
5(3%) 80.74 90.91 62.50 28.41
8(5%) 79.61 90.91 70.00 20.91
Activación 3(1%) 47.50 58.30 13.22 45.08
Sónica 6(3%) 80.94 92.80 50.25 42.55
9(5%) 87.65 98.82 70.91 27.91
Activación 4(1%) 43.87 77.09 19.50 57.59
Ultrasónica 7(3%) 78.03 87.00 46.25 40.75
1(5%) 85.36 97.50 74.44 23.06

Total 70.45 98.82 13.22 85.60

RESULTADOS

Para determinar la distribución de la muestra se aplicó el Test de Kolmogorov-Smirnov (Statistic = 0.152; p<0,001) y se determinó que tenía una distribución no paramétrica. Posteriormente se aplicaron las pruebas de Kruskal-Wallis (p<0,05) (Tabla 2) y de Mann-Whitney (p<0,05) (Tabla 3), encontrándose diferencias significativas entre grupos.

Tabla 2. Prueba Kruskall-Wallis 

DP%
Chi-Square 186,71
df 8
Sig. 000

Tabla 3. Prueba U de Mann-Whitney 

3% Sin Activación 5% Sin Activación 1% Sónica 3% Sónica 5% Sónica 1% Ultrasónica 3% Ultrasónica 5% Ultrasónica
1% Sin Activación 0.000* 0.000* 0.605 0.000* 0.000* 0.018* 0.000* 0.000*
3% Sin Activación 0.434 0.000* 0.734 0.003* 0.000* 0.141 0.336
5% Sin Activación 0.000* 0.260 0.000* 0.000* 0.970 0.003*
1% Sónica 0.000* 0.000* 0.037* 0.000* 0.000*
3% Sónica 0.009* 0.000* 0.062 0.030*
5% Sónica 0.000* 0.000* 0.311

*Significativo al 5% (a = 0.05)

NaOCl al 1% tiene un menor efecto en la disolución del tejido orgánico, mejorando levemente sus propiedades de disolución al aplicar activación ultrasónica (p=0.018). Para NaOCl al 3%, ni la activación sónica (p=0.734) ni la activación ultrasónica (p=0.141) mejoran significativamente las propiedades de disolución, pero se observa una mayor capacidad de disolución de tejido orgánico con respecto a la concentración del 1% (p=0.000).

La activación sónica (p=0.000) y ultrasónica (p=0.003) aumentan las propiedades de disolución de NaOCl al 5%, sin embargo, no se observan diferencias significativas, entre la activación sónica y ultrasónica (p=0.311).

La mayor disolución de tejido se observa en NaOCl al 5%, comparado con 1% y 3% (p=0.000), siendo mejorada su capacidad de disolución cuando se realiza activación.

DISCUSIÓN

NaOCl ha demostrado tener capacidad de disolución de materia orgánica, lo que depende de varios factores: concentración, temperatura, condiciones de almacenamiento4, Ph5 cantidad de materia orgánica y de tejido disponible6, y de la activación de la irrigación7. Además, se ha reportado una acción solvente sobre las células muertas, que acelera la separación del tejido muerto del tejido vivo8.

Ramírez – Bower9 comprobó que la pérdida de materia orgánica de la dentina – colágeno expuesto a NaOCl 2,5% – es de 40% a los 2 min, 60 % entre los 6 y los 10 min, pues el tiempo de saturación del NaOCl comienza a los 5 minutos de entrar en contacto con materia orgánica, por lo tanto, es necesario el recambio de la solución, ya que a menor disponibilidad de iones hidroxilo menor capacidad de disolución, lo que también sucede con el polvo de dentina10.

NaOCl se inactiva al interactuar con materia orgánica11, debido a que se producen reacciones de saponificación, neutralización, y formación de cloraminas, reacciones que ocurren principalmente en la superficie de contacto entre NaOCl y materia orgánica, llevan a la licuefacción del tejido11 y las moléculas de NaOCl involucradas se consumen, resultando en una disminución de su concentración y actividad local. Además, soluciones acuosas de NaOCl tienen altos valores de tensión superficial, lo que disminuye su capacidad de humectación, por lo que la adición de surfactantes mejoraría esta propiedad12.

La mucosa palatina porcina se ha usado para evaluar la capacidad de disolución de los tejidos de las soluciones de irrigación13. Cuando se compara con el tejido de la pulpa humana, se ha encontrado que la mucosa palatina porcina requiere un tiempo más largo para su disolución completa, sin embargo, no se han encontrado diferencias en términos de la capacidad de solubilización13.

Teniendo en cuenta que la cantidad de materia orgánica y la superficie disponible influyen en el poder de disolución de NaOCl14, vale la pena señalar que el volumen del tejido utilizado en este estudio es más grande que en la realidad.

Al igual que en este estudio, los modelos in vitro a menudo no replican la realidad clínica15 pero, permiten saber qué tan efectiva es la activación para acelerar los procesos de disolución de tejido, sin considerar otros factores clínicos. Se ha reportado que la activación / agitación del irrigante mejora de manera importante la acción antibacteriana y la acción de disolución de tejidos del NaOCl16.

En el presente estudio, se realizaron 3 ciclos de activación de 30 seg, ya que diversos estudios habían demostrado que el uso de activación de 30 seg es el más efectivo17 y que según Estévez18, tiempos mayores a 30 seg pueden producir un “efecto meseta” donde la agitación se estabiliza. Estudios similares han considerado 30 seg19 y 2 ciclos de 30 seg20.

Estudios ex vivo en canales radiculares con flujo restringido a través del foramen apical, que simula mejor el flujo de fluidos en condiciones clínicas, revelaron que la penetración de soluciones se mejora con ultrasonido y, en menor grado con activación sónica19. Sin embargo, en el presente estudio, sólo para NaOCl 5% se pudo observar una mayor disolución de tejido al realizar activación. Para las concentraciones 1% y 3%, la activación no mejoró la disolución de tejido.

Tal como lo demuestran estudios anteriores, el tiempo de degradación del tejido por la acción de NaOCl es directamente proporcional a la concentración, más que a la activación. Sin embargo, los sistemas de activación mejorarían su capacidad de disolución sólo en la práctica clínica y no en estudios in vitro, lo se explicaría por la capacidad de NaOCl de poder difundir a la complejidad anatómica propia de los canales radiculares21. Asimismo, la adición de otros elementos surfactantes y ácido glicólico, tendría una acción sinérgica mejorando la disolución de tejidos22.

BIBLIOGRAFIA

1. Hasse MGM, Gonçalves JF, Spano JCE, Silveira LFM, Martos J, Barbin EL. Solvent effect of Sodium hypochlorite solutions commercialized in Pelotas (Brazil) on bovine dental pulps. Dental Press Endod. 2014;42(2):45-51. [ Links ]

2. Haapasalo M, Shen Y, Wang Z, Gao Y. Irrigation in endodontics. Br Dent J. 2014;216(6):299-03 [ Links ]

3. Van der Waal S, Connert T, Laheij A, de Soet J, Wesselink P. Free available chlorine concentration in sodium hypochlorite solutions obtained from dental practices and intended for endodontic irrigation: Are the expectations true? Quintessence Int. 2014;45(6):467-74. [ Links ]

4. Plotino G, Cortese T, Grande NM, Leonardi DP, Di Giorgio G, Testarelli L, Gambarini G. New technologies to improve root canal disinfection. Braz Dent J. 2016;27(1):3-8. [ Links ]

5. Del Carpio-Perochena A, Monteiro Bramante C, Bombarda de Andrade F, Alves Maliza AG, Cavalini Cavenago B, Marciano MA, Amoroso-Silva P, Hungaro Duarte M. Antibacterial and dissolution ability of Sodium hypochlorite in different pHs on multi-species biofilms. Clin Oral Invest. 2015;19:2067-73. [ Links ]

6. Quintana RM. Jardine AP, Montagner F, Fatturi Parolo CC, Morgental RD, Poli Kopper PM. Effect of human, dentin, albumin and lypopolisaccharide on the antibacterial activity of endodontic activity of endodontic irrigants. J Conserv Dent. 2017;20:341-45. [ Links ]

7. Tejada S, Baca P, Ferrer-Luque CM, Ruiz-Linares M, Valderrama MJ, Arias-Moliz MT. Influence of dentine debris and organic tissue on the properties of sodium hypochlorite solutions. Int Endod J. 2019;52(1):114–22. [ Links ]

8. Keyes M, Thibodeau R. Dakin solution. (Sodium Hypochlorite). StatPearls. 2018; Oct 27 [ Links ]

9. Ramírez-Bommer C, Gulabivala K, Ng Y-L, Young A. Estimated depth of apatite and collagen degradation in human dentine by sequential exposure to sodium hypochlorite end EDTA:quantitative FTIR study. Int Endod J. 2018;51(4):469-78. [ Links ]

10. Morgental RD, Singh A, Sappal H, Kopper PMP, Vier-Pelisser FV, Peters OA. Dentin inhibits the antibacterial effects of new and conventional endodontic irrigants. J Endod. 2013;39(3):406-10. [ Links ]

11. Topbas C, Adiguzel O. Endodontic irrigation solutions. A review. Int Dent Res. 2017;7:54–61. [ Links ]

12. Iglesias JE, Pinheiro LS, Weibel DE, Montagner F, Greca FS. Influence of surfactans addition on the properties of calcium hypochlorite solutions. J Appl Oral Sci. 2019;27:e20180157. [ Links ]

13. Naenni N, Thoma K, Zehnder M. Soft tissue dissolution capacity of currently used and potential endodontic irrigants. J Endod. 2004;30(11):785–87. [ Links ]

14. Moorer WR, Wesselink PR. Factors promoting the tissue dissolving capability of sodium hypochlorite. Int Endod J. 1982;25(4):187–96. [ Links ]

15. Sobhani OE, Gulabivala K, Knowles JC, Ng YL. The effect of irrigation time, root morphology and dentin thickness on tooth surface strain when using 5% sodium hypochlorite and 17% EDTA. Int Endod J. 2010;43(3):190-99. [ Links ]

16. Landolo A, Amato M, Dagna A, Poggio C, Abellatif D, Franco V, Pantaleo G. Intracanal heating of sodium hypochlorite: Scanning electron microscope evaluation of root canal walls. J Conserv Dent. 2018;21(5):569-73. [ Links ]

17. Plotino G, Pameijer CH, Grande NM, Somma F. Ultrasonics in endodontics: a review of the literature. J Endod. 2007;33(2):81–95. [ Links ]

18. Estevez R, Conde AJ, Valencia de Pablo O, de la Torre F, Rossi-Fedele G, Cisneros R. Effect of passive ultrasonic activation on organic Tissue dissolution from simulated grooves in root Canals using Sodium hypochlorite with or without surfactants and EDTA. J Endod. 2017;43(7):1161-65. [ Links ]

19. Sáinz-Pardo M, Estevez R, Pablo ÓV, Rossi-Fedele G, Cisneros R. Root canal penetration of a Sodium hypochlorite mixture using Sonic or ultrasonic activation. Braz Dent J. 2014;25(6):489-93. [ Links ]

20. Conde AJ, Estevez R, Loroño G, Valencia de Pablo Ó, Rossi-Fedele G, Cisneros R. Effect of Sonic and ultrasonic Activation on organic Tissue dissolution from simulated grooves in root Canals using Sodium hypochlorite and EDTA. In Endod J. 2017;50(10):976-82. [ Links ]

21. Vera J, Arias A, Romero M. Dynamic movement of intracanal gas bubbles during cleaning and shaping procedures: the effect of maintaining apical patency on their presence in the middle and cervical thirds of human root canals –an in vivo study. J Endod. 2012;38(2):200-3. [ Links ]

22. Peña Lopez A, Conde AJ, Estevez R, Valencia de Pablo O, Rossi-Fedele G, Cisneros F. Sodium hypochlorite and a preparation containing glycocholic acid and surfactans have a synergistic action on organic tissue dissolution In Vitro. J Endod. 2018;44(5):813–15. [ Links ]

H. Monardes Cortés, MT. Martínez Uribe, F. Arriagada Arriagada, J. Abarca Reveco. Capacidad de Disolución del Hipoclorito de Sodio con o sin Activación. 2019; 35, (3): 114-119.

Recibido: 27 de Junio de 2019; Aprobado: 09 de Julio de 2019

AUTOR DE CORRESPONDENCIA: Dirección Postal: Bellavista 7, piso 8 Recoleta, Santiago, Chile e-mail: hector.monardes@uss.cl

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