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<publisher-name><![CDATA[Asociación Española de Urología]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio experimental de la expresión de las proteínas de la pared vesical en la obstrucción del tracto urinario inferior en el conejo]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Experimental study of the expression of the bladder wall proteins in bladder outlet obstruction in the rabbit]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[OBJECTIVES: To determine the relationship of the bladder wall levels of the contractile proteins: whole actin, beta-actin, alpha-sarcomeric-actina caldesmon and of the Heat Stress Protein HSP-70, with the partial bladder outlet obstruction. MATERIAL AND METHODS: It was carried out an experimental study on 43 New-Zealand rabbits. These animals were divided into a control group and six experimental groups with partial bladder outlet obstruction induced by an incomplete tie around the urethra. The experimental groups were defined according the day when the animals were sacrified: at 24 hours, 7 days, 15 days, 1 month, 3 months and 6 months of the obstruction. It was determined in all animals the muscular bladder wall concentration of whole actin, beta-actin, alpha-sarcomeric-actin, caldesmon and HSP-70 protein, according to Western Blotting technique. The results were analyzed by means of ANOVA, using the Scheffe post hoc method. RESULTS: The bladder weight of the obstructed animals increased significantly in two stages: until the day 15 and between the day 15 and the end of the study, corresponding to theoretical phases of initial hypertrophy and compensation. The level of whole actin showed a significant decrease at the beginning of compensation phase, while the beta-actin level increased in the phase of initial hypertrophy and the alpha-sarcomeric-actin level increased at the end of the compensation phase, while the caldesmon and the HSP-70 made it at the end of the initial hypertrophy phase. CONCLUSIONS: Analysing our data we conclued that the determination of the caldesmon levels is the marker that better adjusts to the changes associated with partial bladder outlet obstruction in the rabbit.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Obstrucción parcial del tracto urinario inferior]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p> <i><font size=5>TRABAJO EXPERIMENTAL</font> </i>      <p> &nbsp;      <p> <b>     <p align="center"> <font size="4"> ESTUDIO  EXPERIMENTAL DE LA EXPRESIÓN DE LAS&nbsp;    <br>  PROTEÍNAS DE LA PARED VESICAL EN LA OBSTRUCCIÓN&nbsp;    <br> DEL  TRACTO URINARIO INFERIOR EN EL CONEJO </font> </b>     <p align="center"><b><font SIZE="3"> J. SALINAS CASADO</font></b><font SIZE="3"><b><sup><font>(1)</font></sup>,  M. VIRSEDA CHAMORRO<sup><font>(2)</font></sup>, A. MARTÍN VEGA<sup><font>(3)</font></sup>,    <br> &nbsp;A.  HERNÁNDEZ LAO<sup><font>(4)</font></sup>,  J.A. HERRERO PAYO<sup><font>(5) </font></sup> </b></font>  <i>     <p align="center"><sup><font SIZE="3">(1)</font></sup><font SIZE="3">Servicio  de Urología. Hospital Clínico San Carlos. Universidad Complutense. Madrid. <sup> (2)</sup>Servicio de Urología.&nbsp;    <br> Hospital Central de la Defensa. Madrid. <sup>(3)</sup>Departamento de  Bioquímica. Hospital Clínico San Carlos.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> &nbsp;Universidad Complutense. Madrid. <sup>(4)</sup>Servicio de Urología. Clínica  Puerta de Hierro. Madrid. <sup>(5)</sup>Servicio    <br> &nbsp;de  Urología. Hospital Severo Ochoa. Leganés (Madrid).</font>  </i>     <p align="center">       <table border="1" width="700">     <tr>       <td>    <p align="center"><font><i>    <br>         </i><u>RESUMEN</u></font> <font>     <p align="center">ESTUDIO  EXPERIMENTAL DE LA EXPRESIÓN DE LAS PROTEÍNAS DE LA&nbsp;    <br>  PARED VESICAL EN LA  OBSTRUCCIÓN DEL  TRACTO URINARIO&nbsp;    <br>  INFERIOR EN EL CONEJO <i>  </i>     <blockquote>     <p><i>OBJETIVOS: </i>  Determinar la relación de los niveles tisulares de las proteínas contráctiles:  actina total, beta-actina, alfa-actina  sarcomérica y caldesmón y de la “Heat Stress Protein” HSP-70, con la obstrucción  parcial del tracto urinario inferior.<i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> MATERIAL Y MÉTODOS:</i>  Se realizó un estudio experimental en 43 conejos machos neozelandeses que fueron  divididos en un  grupo control y seis grupos experimentales a los que se les realizó obstrucción  parcial del tracto urinario inferior mediante  ligadura de la uretra. Los grupos experimentales se definieron por el día del  sacrificio de los animales que tuvo lugar a las 24  horas, 7 días, 15 días, 1 mes, 3 meses y 6 meses de la obstrucción. En todos los  animales se determinó la concentración en la pared  de la capa muscular de actina total, beta-actina, alfa-actina sarcomérica,  caldesmón y HSP-70, mediante antisueros y  electroforesis según la técnica del “Western Blotting”. Los resultados fueron  analizados mediante ANOVA, utilizando el test de  contraste a posteriori de Scheffe.<i>    <br> RESULTADOS</i>: El  peso de las vejigas de los animales obstruidos aumentó significativamente en dos  etapas: hasta el día 15, y  entre el día 15 y el final del estudio, correspondiendo a las fases de  hipertrofia inicial y compensación, respectivamente. El nivel  total de actina mostró una disminución significativa al inicio de la fase de  compensación, mientras que la beta-actina  aumentó en la fase de hipertrofia inicial, y la alfa-actina sarcomérica al final  de la fase de compensación, mientras que el caldesmón y la  HSP-70 lo hicieron al final de la fase de hipertrofia inicial.<i>    <br> CONCLUSIONES:</i>  Del análisis de datos se deduce que la determinación de los niveles de caldesmón  es el marcador que mejor se  ajusta a los cambios asociados a la obstrucción parcial del tracto urinario  inferior en el conejo. <i>  </i>     <p><font size="2">PALABRAS CLAVE:  Obstrucción parcial del tracto urinario inferior. Hipertrofia vesical. Actina.  Caldesmón. “Heat Shock Proteins”.</font> </font><font SIZE="3"><b>   </blockquote>     <p align="center"><u>ABSTRACT</u> </b></font><font>     <p align="center">EXPERIMENTAL STUDY  OF THE EXPRESSION OF THE BLADDER&nbsp;    <br>  WALL PROTEINS IN BLADDER OUTLET  OBSTRUCTION    <br> &nbsp;IN THE RABBIT <i>  </i>     <blockquote>     <p><i>OBJECTIVES</i>: To  determine the relationship of the bladder wall levels of the contractile  proteins: whole actin, beta-actin,  alpha-sarcomeric-actina caldesmon and of the Heat Stress Protein HSP-70, with  the partial bladder outlet obstruction.<i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> MATERIAL AND  METHODS:</i> It was carried out an experimental study on 43 New-Zealand rabbits.  These animals were divided into  a control group and six experimental groups with partial bladder outlet  obstruction induced by an incomplete tie around the  urethra. The experimental groups were defined according the day when the animals  were sacrified: at 24 hours, 7 days, 15 days,  1 month, 3 months and 6 months of the obstruction. It was determined in all  animals the muscular bladder wall concentration of  whole actin, beta-actin, alpha-sarcomeric-actin, caldesmon and HSP-70 protein,  according to Western Blotting  technique. The results were analyzed by means of ANOVA, using the Scheffe post  hoc method.<i>    <br> RESULTS:</i> The  bladder weight of the obstructed animals increased significantly in two stages:  until the day 15 and between the  day 15 and the end of the study, corresponding to theoretical phases of initial  hypertrophy and compensation. The level of whole  actin showed a significant decrease at the beginning of compensation phase,  while the beta-actin level increased in the phase  of initial hypertrophy and the alpha-sarcomeric-actin level increased at the end  of the compensation phase, while the  caldesmon and the HSP-70 made it at the end of the initial hypertrophy phase.<i>    <br> CONCLUSIONS</i>:<i> </i>  Analysing our data we conclued that the determination of the caldesmon levels is  the marker that better  adjusts to the changes associated with partial bladder outlet obstruction in the  rabbit. <i>  </i> </font>     <p><font size="2">KEY WORDS: Partial  bladder outlet obstruction. Bladder hypertrophy. Actin. Caldesmon. Heat Shock  Proteins. &nbsp; <i>&nbsp; </i> </font>         </blockquote>         <i>         </i></td>       </tr>     </table>         <p><font size="2">  *Este trabajo ha  sido patrocinado por una Beca de Investigación de la Asociación Española de  Urología. </font>     <p>&nbsp;     <p>La hiperplasia  benigna prostática (HBP) es un  proceso muy frecuente en los varones de más de 50  años. En un porcentaje elevado de pacientes la HBP produce síntomas urinarios funcionales que  varían desde el aumento de la frecuencia  miccional nocturna, hasta la retención urinaria<sup>1</sup>. Se  admite que los síntomas producidos por la HBP  se deben frecuentemente a la obstrucción del  tracto urinario inferior<sup>2</sup>. La obstrucción del  tracto urinario inferior produce cambios funcionales en la  vejiga urinaria. La intensidad de la  contractilidad vesical aumenta proporcionalmente al  grado de obstrucción, aunque existe una  pérdida de la capacidad vesical para mantener la  contracción<sup>3</sup>. Esta disminución de la capacidad  vesical para mantener la contracción sería responsable de la  aparición de un volumen residual  post-miccional<sup>4</sup>. Además la obstrucción urinaria  crónica puede llegar a alterar la fase de llenado,  favoreciendo la disminución de la acomodación  vesical o capacidad de la vejiga de almacenar orina  a baja presión<sup>5</sup>.      <p>Para conocer los  cambios histológicos, biomecánicos, y  bioquímicos que tienen lugar en la vejiga  urinaria como consecuencia de la obstrucción del  tracto urinario inferior, se han realizado estudios  experimentales en animales de laboratorio en  los que se reproduce la obstrucción urinaria  asociada a la HBP, mediante obstrucción parcial de la  uretra con ligadura, manguito o anillo<sup>6</sup>.     <p>Estos estudios han  comprobado que la vejiga sufre  alteraciones tanto de sus propiedades biomecánicas  pasivas, como de sus propiedades  contráctiles, que se correlacionan con una serie de  cambios bioquímicos a nivel nuclear, citoplasmático y  metabólico. Los cambios citoplasmáticos  incluyen la alteración de la concentración de las  proteínas del tejido conectivo y muscular  (proteínas contráctiles), y la detección de proteínas  habitualmente no presentes en la célula normal<sup>7,8</sup>.      <p>Entre las  proteínas específicas de la capa  muscular vesical se encuentran la actina, que  presenta varias isoformas y es responsable junto con  la miosina de la contracción muscular, y el  caldesmón que interviene en la adherencia de los  fragmentos de actina y miosina, origen de la contracción  tónica característica de las fibras musculares lisas<sup>9</sup>.  También se ha descrito la aparición de  proteínas de stress como la “Heat Shock  Protein” de aproximadamente 70 KiloDaltons de peso  molecular (HSP-70). Estas proteínas aparecerían en  situaciones de lesión tisular como la  obstrucción urinaria<sup>10</sup>. La determinación de la  expresión de este tipo de proteínas podría ser un  marcador bioquímico importante para determinar la  presencia de obstrucción urinaria. El estudio de la  variación de su expresión en relación al  tiempo en que se mantiene la obstrucción urinaria  inferior, permitiría determinar si existe correlación entre  los niveles de dichas proteínas y el  tiempo de obstrucción.      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>De confirmarse  esta relación en este estudio  básico experimental, una futura etapa sería identificar estas  proteínas en varones con hiperplasia  benigna prostática, mediante biopsia de la pared  vesical, en orden a determinar la importancia clínica de  estos marcadores.     <p>El objetivo de  nuestro estudio es determinar la  variación con el tiempo de los niveles de las proteínas del  tejido muscular: actina (en tres isoformas: alfa-actina  sarcomérica, actina citoplasmática y  beta-actina), caldesmón y de la proteína  reactiva HSP-70, en las vejigas de animales de  laboratorio sometidos a obstrucción parcial de la  uretra.<font SIZE="3"><b>     <p align="center">MATERIAL Y MÉTODOS </b></font><font>     <p>Se realizó un  estudio experimental utilizando 43  conejos neozelandeses machos adultos de peso  medio 2.892 gramos (desviación típica: 874  gramos). Los conejos fueron divididos en dos grupos:      <p>– Grupo control,  formado por diez conejos. Estos  conejos fueron anestesiados con ketamina (25  mg/10 mg i.m.) y mantenida con pentobarbital (i.v.)  y sometidos a laparotomía abdominal y  cierre de la misma. De estos conejos, uno fue  sacrificado el mismo día de la intervención y sirvió como  patrón de medida del resto de los conejos. Seis  conejos se sacrificaron a la semana de la  intervención y los otros tres a las dos semanas.      <p>– Grupo  experimental, formado por 33 conejos,  anestesiados por el mismo procedimiento y  sometidos a laparotomía media y obstrucción  parcial de la uretra, según técnica descrita por Zhao  et al.<sup>10</sup>: cateterización uretral con sonda 8 Ch,  ligadura alrededor del catéter con seda de 3/0 y  retirada de la sonda. Al día siguiente, a los 7  días, 15 días, 1 mes, 3 meses y 6 meses de la  intervención los conejos fueron sacrificados. El  número de conejos sacrificados en cada periodo fue  de 4 (1 día), 6 (7 días), 6 (15 días), 7 (1 mes), 6 (3  meses) y 4 (6 meses). <i>      <p>Tratamiento de las  muestras </i>     <p>Una vez  sacrificados los conejos, las vejigas  extraídas de los diferentes grupos, fueron etiquetadas y  congeladas a -80ºC. A partir de esos órganos se  aisló la capa muscular y se cortaron  pequeñas piezas de aproximadamente 3 gramos. Estas  piezas fueron homogeneizadas en una  solución tampón de extracción compuesta por 10 mM de  Trisacetato, 10 mM de NaCL, 1 mM de EDTA  (ácido etilendiamín tetra-acético), 1 mM de PMSF  (fenilmetilsulfonilfluorido) y 2 µM de leupeptin. Para  homogeneizar la muestra se añadieron 3 ml  de solución por gramo de tejido y se utilizó un  homogeneizador Polytron-Kinetica PT 10<sup>®</sup> (Brinkmann,  Westbury, NY), durante dos minutos bajo  condiciones de temperatura cercanas a los 4ºC.  El producto de la homogeneización fue  centrifugado a 3900 x g durante 10 minutos. El  sobrenadante obtenido fue distribuido en alícuotas de 30  µl, etiquetado y almacenado a -80ºC. <i>      <p>Cuantificación de  proteínas </i>     <p>Se cuantificó la  masa total de proteínas de las  alícuotas a través de un ensayo comercial basado en el  método de Bradford<sup>11</sup>. Una vez cuantificadas las  proteínas se eligió la masa total de proteínas en  función de la muestra que tenía menor  concentración de proteínas, que correspondió a 2,18  µg/µl, con el fin de que todas las muestras  tuvieran la misma cantidad. Se calculó el volumen  extraído de cada muestra con el fin de que su  concentración proteica fuera de 2,18 µg/µl, y a  continuación se añadió una solución de solución  tampón salino fosfato (PBS) hasta llegar a los  10 µl de volumen. Posteriormente se añadieron 20 µl  de solución tampón hasta llegar a un  volumen total de 30 µl. <i>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Electroforesis </i>     <p>Las muestras  fueron hervidas a 100ºC durante 1  minuto, centrifugadas durante 2 minutos,  posteriormente mantenidas en hielo. La solución  tampón de desplazamiento (“running buffer”) utilizada  estaba compuesta por glicina 0,2 M y SDS al  0,1% en Tris 0,025 M a pH 8,3. Las condiciones de  electroforesis fueron de 10 mA de intensidad  durante 2 horas, a temperatura ambiente. En  todas las electroforesis se reservó una muestra como  marcador de peso molecular, para confirmar que  la proteína separada era la buscada en  relación con su peso molecular. <i>      <p>Transferencia de  proteínas </i>     <p>Después de la  separación electroforética de las  proteínas, éstas se transfirieron a una membrana de  nitrocelulosa de acuerdo al procedimiento descrito por  Burnette<sup>12</sup>, conocido como “Western  Blotting”. Antes de completar la electroforesis, la  solución tampón de transferencia compuesta por 25 mM  de Tris, 192 mM de glicina y metanol al 20%,  pH 8,3, fue preparada y mantenida a 4ºC. Las  membranas de nitrocelulosa, que eran del mismo  tamaño que el gel, los papeles de filtro y las  esponjas se mantuvieron durante 15-20  minutos en la solución de transferencia a 4ºC, antes  de comenzar el proceso. La transferencia se  realizó en cámara fría (4ºC), a 30 V durante más de 15  horas. <i>      <p>Inmunoanálisis </i>     <p>Después de la  transferencia, la membrana de  nitrocelulosa fue bañada en solución tampón de  bloqueo, compuesta por PBS en leche en polvo  desnatada al 5% y Tween 20 al 0,1%, durante una  hora y suavemente agitada. Después del bloqueo se  lavó la membrana tres veces durante 10  minutos con una solución de lavado compuesta por  PBS y Tween 20 al 0,1% (TPBS).      <p>La membrana de  celulosa fue incubada con  solución tamponada salina, conteniendo 0,1% de TPBS,  durante más de 15 horas con el anticuerpo  específico en cámara fría (4ºC). Se lavó tres veces  en solución de lavado y agitación suave  durante 10 minutos, y fue incubada por segunda vez  con el anticuerpo anti-IgG conjugado con  peroxidasa (Anti Mouse IgG peroxidase conjugate nº  A-4416 Sigma Chemical Company<sup>®</sup>), diluido en  PBS a la concentración de trabajo durante 3 horas  con agitación suave a temperatura ambiente.  Posteriormente, fue lavada con TPBS, 3 veces,  durante 10 minutos con agitación suave.      <p>Los anticuerpos  utilizados fueron:     <blockquote>     <p>– Anticuerpo  monoclonal anti-actina (nº producto:  A-4700 Sigma Chemical Company<sup>®</sup>).  Dilución de trabajo: 1:500.     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>– Anticuerpo  monoclonal anti-actina sarcomérica (nº  producto: A-2172, Sigma Chemical  Company<sup>®</sup>). Dilución de trabajo: 1:500.     <p>– Anticuerpo  monoclonal anti-ß-actina (producto nº  A-5441, Sigma Chemical Company<sup>®</sup>).  Dilución de trabajo: 1:5000.     <p>– Anticuerpo  monoclonal anti-caldesmón (producto nº  C-6542, Sigma Chemical Company<sup>®</sup>).  Dilución de trabajo: 1:100.     <p>– Anticuerpo  monoclonal anti-HSP-70 (producto nº  H-5147, Sigma Chemical Company<sup>®</sup>).  Dilución de trabajo: 1:5000. </blockquote>      <p>Después de la  segunda incubación, la membrana fue  sumergida en 30 ml de solución de  sustrato de peroxidasa y sometida a agitación  suave. La reacción enzimática producida es de tipo  colorimétrico, siendo detenida posteriormente  mediante la inmersión de la membrana en agua  destilada (<a href="#F1">Fig. 1</a>).     <p align="center"> <i> <b> <a name="F1"> <img border="0" src="/img/aue/v28n5/images/341-349f1.gif" width="388" height="766"></a>    <p align="center"><font size="2">FIGURA 1. A:  Bandas correspondientes al marcador de    <br> pesos  moleculares. B: Banda correspondiente a la muestra  control.&nbsp;    <br>  C: Bandas correspondientes a los animales  obstruidos durante 1 mes.&nbsp;    <br>  D: Bandas correspondientes a los  animales obstruidos</font>&nbsp;<font size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  durante 3 meses.</font> </b>     <p>Cuantificación  densitométrica </i> Las  bandas obtenidas en la membrana  mediante la reacción colorimétrica descrita anteriormente,  fueron cuantificadas a través del programa de  densitometría óptica “Quantity One” del  densitómetro GS-710 de Bio-Rad<sup>®</sup>. De las  posibilidades analíticas del programa se tomaron en  consideración la media de la densidad óptica, para  la cuantificación de las concentraciones de  anticuerpos anti-actina alfa sarcomérica, actina  total, beta-actina y HSP-70, y el volumen ajustado para  la cuantificación del anticuerpo anti-caldesmón,  debido a que presentaban valores más  homogéneos.     <p>Se tomó como  unidad estándar, el valor de la  densidad óptica y el volumen ajustado de la vejiga del  conejo control de 24 horas (valor 1), al que se  refirieron el resto de las muestras analizadas. De  esta manera, se evita el sesgo producido por las  variaciones de concentración debidas a los  diferentes tiempos de realización del registro. <i>      <p>Análisis  estadístico </i>     <p>Los valores de las  distintas muestras fueron  almacenados en una base de datos Excell<sup>®</sup> y  posteriormente importados al programa informático SPSS  para su procesamiento. Se utilizó el  procedimiento de análisis de la varianza (ANOVA)  para determinar la significación de  variación de la concentración de proteínas con el  tiempo y el test de contraste a posteriori de  Scheffe para comparar el nivel de proteínas en las  diferentes etapas. El nivel de significación se fijó  en p&lt; 0,05 bilateral. </font><b><font SIZE="3">     <p align="center">RESULTADOS </font></b><font>     <p>La variación del  peso de la vejiga con el tiempo de  obstrucción se muestra en la <a href="#F2"> Figura 2</a>. El  análisis de la varianza demostró una variación  significativa del peso vesical con el tiempo  (p=0,000). El test de contraste a posteriori de  Sheffe demostró diferencias significativas del grupo  control respecto al grupo de conejos obstruidos  durante 15 y 90 días.     <p align="center">&nbsp;  <i><b> <a name="F2"> <img border="0" src="/img/aue/v28n5/images/341-349f2.gif" width="389" height="349"></a> </b></i> <i><b>     <p align="center"><font size="2">FIGURA 2. En  ordenadas: peso de la vejiga en gramos.&nbsp;    <br>  En  abcisas se muestra el grupo control y los diferentes&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  grupos  experimentales, según el tiempo de duración&nbsp;    <br>  de la  obstrucción en días. Cuadrado central: media,    <br> &nbsp;segmentos: 95%  de confianza de la media (gráficos de error).    <br> &nbsp;Las  diferencias entre los distintos valores del grupo obstruido    <br> &nbsp;fueron significativas a nivel global (ANOVA). El test&nbsp;    <br>  de  Sheffe demostró diferencias significativas del grupo&nbsp;    <br>  control con  los grupos de obstruidos durante 15 y 90 días&nbsp;    <br>  (asteriscos).</font> </b></i>      <p>La variación del  nivel de actina se muestra en la <a href="#F3">  Figura 3</a>. El análisis de la varianza demostró una  variación significativa del peso vesical con el  tiempo (p=0,000). El test de contraste a posteriori de  Scheffe demostró diferencias significativas del  grupo control respecto al grupo de conejos  obstruidos durante 30 días.     <p align="center"> <i><b>  <a name="F3"> <img border="0" src="/img/aue/v28n5/images/341-349f3.gif" width="388" height="342"></a> &nbsp; </b></i>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"> <i><b>  <font size="2"> FIGURA 3. En  ordenadas: densidad óptica (valor respecto&nbsp;    <br> a la  vejiga control de 24 horas, que se toma como unidad).&nbsp;    <br> En abcisas se muestra el grupo control y los diferentes    <br> &nbsp;grupos experimentales, según el tiempo de duración de la&nbsp;    <br> obstrucción en días. Cuadrado central: media,    <br> &nbsp;segmentos: 95% de confianza de la media (gráficos de  error).&nbsp;    <br>  Las diferencias entre los distintos valores del grupo  obstruido&nbsp;    <br>  fueron significativas a nivel global (ANOVA).&nbsp;    <br> El test de Sheffe demostró diferencias significativas del&nbsp;    <br> grupo control con los grupos de obstruidos&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  durante 30 y 180 días (asteriscos).</font> </b></i>      <p>La variación del  nivel de actina sarcomérica se  muestra en la <a href="#F4"> Figura 4</a>. El análisis de la varianza  demostró una variación significativa del peso  vesical con el tiempo (p=0,000). El test de contraste a  posteriori de Scheffe demostró diferencias  significativas del grupo control respecto al grupo  de conejos obstruidos durante 30 y 180 días.&nbsp;      <p align="center"> &nbsp; <i><b>   <a name="F4"> <img border="0" src="/img/aue/v28n5/images/341-349f4.gif" width="388" height="339"></a>    <p align="center"><font size="2">FIGURA 4. En  ordenadas: densidad óptica (valor respecto    <br> &nbsp;a la  vejiga control de 24 horas, que se toma como unidad).    <br> &nbsp;En  abcisas se muestra el grupo control y los diferentes    <br> &nbsp;grupos experimentales, según el tiempo de duración de    <br> &nbsp;la  obstrucción en días. Cuadrado central: media,&nbsp;    <br>  segmentos: 95% de confianza de la media (gráficos de&nbsp;    <br>  error). Las diferencias entre los distintos valores del&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> grupo  obstruido fueron significativas a nivel global&nbsp;    <br> (ANOVA).  El test de Sheffe demostró diferencias significativas    <br> &nbsp;del  grupo control con los grupos de obstruidos  durante    <br> &nbsp;30 días (asteriscos). </font></b></i><font size="2"> &nbsp; <i><b> &nbsp; </b></i> </font>     <p>La variación del  nivel de beta-actina se muestra en la <a href="#F5">  Figura 5</a>. El análisis de la varianza  demostró una variación significativa del peso  vesical con el tiempo (p=0,000). El test de contraste a  posteriori de Scheffe demostró diferencias  significativas del grupo control respecto al grupo  de conejos obstruidos durante 7 días. <b> <i>      <p align="center"> <a name="F5"> <img border="0" src="/img/aue/v28n5/images/341-349f5.gif" width="390" height="336"></a>     <p align="center"> &nbsp;</i><font size="2"><i>FIGURA 5. En  ordenadas: densidad óptica (valor respecto a la  vejiga&nbsp;    <br>  control de 24 horas, que se toma como unidad). En  abcisas se muestra&nbsp;    <br>  el grupo control y los diferentes  grupos experimentales, según el tiempo    <br> &nbsp;de duración de la  obstrucción en días. Cuadrado central: media,&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  segmentos: 95% de confianza de la media (gráficos de  error). Las&nbsp;    <br>  diferencias entre los distintos valores del grupo  obstruido fueron&nbsp;    <br> significativas a nivel global (ANOVA).  El test de Sheffe demostró&nbsp;    <br>  diferencias significativas del  grupo control con los grupos de    <br> &nbsp;obstruidos  durante 7 días (asteriscos).</i></font> </b>       <p>La variación del  nivel de caldesmón se muestra en la <a href="#F6">  Figura 6</a>. El análisis de la varianza  demostró una variación significativa del peso  vesical con el tiempo (p=0,000). El test de contraste a  posteriori de Scheffe demostró diferencias  significativas del grupo control respecto al grupo  de conejos obstruidos durante 15 días. <i><b>     <p align="center"> <a name="F6"> <img border="0" src="/img/aue/v28n5/images/341-349f6.gif" width="391" height="336"></a>     <p align="center"><font size="2">FIGURA 6. En  ordenadas: densidad óptica (valor respecto a la  vejiga control&nbsp;    <br>  de 24 horas, que se toma como unidad). En  abcisas se muestra el grupo&nbsp;    <br>  control y los diferentes  grupos experimentales, según el tiempo de    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> &nbsp;duración de la  obstrucción en días. Cuadrado central: media,&nbsp;    <br>  segmentos: 95% de confianza de la media (gráficos de  error).&nbsp;    <br>  Las diferencias entre los distintos valores del grupo  obstruido&nbsp;    <br>  fueron significativas a nivel global (ANOVA).  El test de Sheffe    <br> &nbsp;demostró diferencias significativas del  grupo control con&nbsp;    <br>  los grupos de obstruidos durante 7 días (asteriscos).</font> </b></i>      <p>La variación del  nivel de la proteína HSP-70 se  muestra en la <a href="#F7"> Figura 7</a>. El análisis de la varianza  demostró una variación significativa del peso  vesical con el tiempo (p=0,000). El test de contraste a  posteriori de Scheffe demostró diferencias  significativas del grupo control respecto al grupo  de conejos obstruidos durante 15 días.      <p align="center">&nbsp; </font><b><i> <font>  <a name="F7"> <font size="2"> <img border="0" src="/img/aue/v28n5/images/341-349f7.gif" width="387" height="337"></font></a>    <p align="center"> &nbsp;</font><font size="2">FIGURA 7. En ordenadas: densidad óptica (valor respecto a la  vejiga&nbsp;    <br>  control de 24 horas, que se toma como unidad). En  abcisas se&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  muestra el grupo control y los diferentes  grupos experimentales según&nbsp;    <br>  el tiempo de duración de la  obstrucción en días. Cuadrado central:&nbsp;    <br>  media,  segmentos: 95% de confianza de la media (gráficos de  error). Las&nbsp;    <br>  diferencias entre los distintos valores del grupo  obstruido fueron significativas&nbsp;    <br>  a nivel global (ANOVA).  El test de Sheffe demostró diferencias&nbsp;    <br>  significativas del  grupo control con los grupos de obstruidos&nbsp;    <br>  durante 15 días (asteriscos). </font> </i>     <p align="center"> DISCUSIÓN</b><font>     <p>De  forma análoga a los cambios producidos por  la hiperplasia benigna prostática en varones, la  obstrucción urinaria experimental produce un  aumento de la masa vesical. Este aumento no es  uniforme, sino que transcurre en tres etapas  características<sup>7,13</sup>:      <blockquote>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>– Una  etapa inicial (entre 1 y 2 semanas),  caracterizada por un aumento rápido de la masa  muscular (hasta 10 veces). Histológicamente se  caracteriza por hipertrofia de las  células musculares e hiperplasia de la muscularis  mucosae suburotelial.      <p>– Una  etapa de compensación, de duración  variable, caracterizada por un aumento más lento  de la masa vesical. En esta etapa prosigue la  hipertrofia muscular y aparece tejido  conectivo en la capa subserosa.&nbsp;      <p> – Por  último, una etapa de descompensación,  caracterizada por un nuevo aumento brusco de la  masa vesical (hasta 20 veces). En esta etapa  el tejido muscular es reemplazado por  tejido conectivo. </blockquote>     <p>En  nuestro estudio, el test de Scheffe, que  compara el incremento del peso vesical en el grupo  de conejos obstruidos, demostró diferencias  significativas respecto al peso de la vejiga  control a los 15 días y a los 90 días. El peso de las  vejigas del grupo obstruido durante 15 días  aumentó aproximadamente 5 veces comparado con  el grupo control, mientras que el aumento del peso  entre los 15 y 90 días fue aproximadamente sólo  del doble.&nbsp;     <p> Con  estos datos podemos deducir que durante el  tiempo que duró el estudio se cubrieron la etapa  de aumento inicial del peso vesical (hasta la  segunda semana) y de compensación (desde la  segunda semana hasta su final, a los 3 meses).     <p>No ha  sido objetivo de nuestro estudio la miosina, dada  la multiplicidad de trabajos sobre la misma  en la obstrucción del tracto urinario inferior<sup>9</sup>. Por  el contrario, los trabajos sobre la actina son  más escasos y contradictorios.      <p>La  actina constituye la mayor parte de las  fibras lisas del tejido muscular. También forma parte  del citoesqueleto (microtúbulos) de las células  musculares y no musculares. Se conocen seis  isoformas de actina, que se diferencian en la  secuencia aminoácida del terminal amino (NH2),  coincidiendo todas ellas en el terminar carboxilo (COOH).  Esas seis isoformas son: la alfa-actina  sarcomérica del músculo esquelético, la alfa-actina del  músculo cardiaco, la alfa-actina del músculo liso,  la gamma-actina del músculo liso visceral y la  gamma y beta-actina citoplasmáticas (no  musculares)<sup>14</sup>. En nuestro estudio utilizamos tres  tipos diferentes de anticuerpos para detectar tres  tipos de actinas: un anticuerpo monoclonal que  reacciona frente a todos los isotipos de actina, otro  que reacciona específicamente frente a la beta-actina  citoplasmática y un tercero que únicamente  reacciona frente a la alfa-actina sarcomérica.      <p>Según  nuestros resultados los niveles de actina se  mantienen estables durante todo el tiempo de  estudio, excepto el día 30 que experimentan un  descenso significativo. La beta-actina citoplasmática  experimenta un incremento significativo el  día 7, para luego volver a sus niveles basales. Por  último, la alfa-actina sarcomérica experimenta un  aumento de sus niveles a partir del día 30  que se mantienen hasta el final del estudio.      <p>Otros  autores, han encontrado que el nivel de  actina se mantiene estable en las vejigas obstruidas, a  diferencia del nivel de miosina que disminuye<sup>13,15</sup>. Sin  embargo, se produciría una variación  respecto al tipo de isoformas de actina,  aumentando la concentración de gamma-actina<sup>13,15-17</sup> y  disminuyendo la de beta-actina<sup>16,17</sup>,  mientras que la alfa-actina permanecería invariable para  algunos autores<sup>16,17</sup>, o disminuiría para  otros<sup>13,15</sup>. Durante la fase de hipertrofia muscular  aumenta el nivel de gamma-actina, disminuyendo el  nivel de la beta-actina<sup>16</sup>.      <p>Sin  embargo, durante la obstrucción vesical  coexisten dos procesos: el de proliferación celular y el  de diferenciación. Ambos procesos están  inversamente relacionados. Debido a que las  células maduras no conservan la capacidad para  proliferar, es preciso su regresión a un fenotipo  fetal, para volver a adquirir su potencial proliferativo, y  posteriormente madurar y diferenciarse a  células especializadas.&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El  aumento de los niveles de beta-actina al final  de la primera semana, observado en nuestro  estudio, podría explicarse por la diferenciación  celular. Este incremento se asociaría a una disminución del  nivel de actina a nivel del músculo liso<sup>18</sup>, responsable del descenso significativo del nivel  total de actina, observado el día 30 de la  obstrucción. La alfa-actina sarcomérica es específica del  músculo esquelético, por lo que su aparición a  partir del día 30 y su mantenimiento hasta  el final del estudio podría explicarse por un nuevo  proceso de desdiferenciación celular que  podría evolucionar, esta vez, hacia la formación de  tejido conectivo. Diversos estudios han demostrado que  las células tumorales desdiferenciadas de  origen estromal expresan alfa-actina sarcomérica<sup>19,20</sup>. En  cualquier caso, debido a la falta de  especificidad de la actina, lo que hace que incluso la  gamma-actina se presente en dos isoformas, una  sola de las cuales es de origen muscular<sup>8</sup>,  implica que esta proteína no es un buen marcador de  las alteraciones musculares lisas durante la  obstrucción del tracto urinario inferior.     <p>El  caldesmón forma parte, junto con la actina, de  las fibras finas musculares. En nuestro estudio se  comprobó un aumento de esta proteína que  alcanzó un máximo el día 15 de la obstrucción, para  descender posteriormente a sus valores  basales. Esta elevación coincidiría con la primera etapa  de la obstrucción caracterizada por la  hipertrofia muscular.      <p>Otros  autores, también comprueban la elevación de  los niveles de caldesmón a las dos semanas de la  obstrucción<sup>21</sup>. Este incremento se produciría  principalmente a expensas de la forma fetal  del caldesmón o l-caldesmón, mientras que la  forma madura o h-caldesmón disminuiría<sup>22</sup> o  permanecería igual<sup>21</sup>. Este proceso sería una  faceta más del fenómeno de desdiferenciación  celular<sup>9</sup>. Los niveles de caldesmón fetal (l-caldesmón), se  normalizan rápidamente tras la liberación de la  obstrucción, por lo que es posible que esta  proteína sea un buen marcador de reversibilidad de la  función muscular después de la  desobstrucción<sup>23</sup>.      <p>Por  último, la expresión de la proteína de  stress celular HSP-70, mostró una elevación a  partir de la primera semana de obstrucción, aunque sus  niveles no fueron significativos hasta los 15  días de la obstrucción. Otros autores también  comprueban una elevación de esta proteína de  stress después de una obstrucción parcial. Sin  embargo, los valores máximos se alcanzan mucho  antes (a las 24 horas), para normalizarse a la  semana<sup>24</sup>. La principal desventaja de esta  proteína como marcador de obstrucción es que su  expresión es inespecífica del proceso causal.  Aparece ante cualquier agresión tisular como el  calor<sup>25</sup> o la simple distensión vesical<sup>26</sup>.      <p>En  conclusión, de todas las proteínas analizadas,  únicamente el caldesmón presentó unos datos  consistentes tanto con la evolución de la  obstrucción, como con los presentados por otros  autores, por lo que podría ser un marcador útil de  obstrucción del tracto urinario inferior. Sin  embargo, son precisos nuevos estudios para  comprobar su utilidad clínica. <i><b>     <p> Agradecimientos: </b></i>Queremos expresar nuestro  reconocimiento por su valiosa ayuda a la  Doctora Sánchez de la Muela, Profesora titular de  Cirugía de la Facultad de Veterinaria de la  Universidad Complutense de Madrid. </font><b>     <p align="center"> REFERENCIAS </p> </b><font>     <!-- ref --><p>1.  LEE A, RUSSELL EB, GARRAWAY WM, PRESCOTT RJ.:  Three year follow-up of a comunity-based  cohort of men with untreated benign prostatic  hyperplasia. <i>Eur Urol </i>1996; <b>30</b>: 11-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074984&pid=S0210-4806200400050000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.  SHERIF M, BLAIVAS J.: Functional types of prostatic  obstruction. <i>Neurourol Urodyn </i>1988; <b>7</b>: 221-222.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074985&pid=S0210-4806200400050000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.  ROSIER P, DE WILDT MJAM, DE LA ROSETTE JJ,  DEBRUYNE FM, WIJKSTRA H.: Analysis of maximum  detrusor contraction power in relation to bladder  emptying in patients with lower urinary tract  symptoms and benign prostatic enlargement. <i>J Urol </i> 1995; <b>154 (6)</b>: 2.137-2.142.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074986&pid=S0210-4806200400050000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.  BOSCH JLH, KRANSE R, VAN MASTRIGT R,  SCHROEDER F.: Dependence of male efficiency on age,  bladder contractility and urethral resistance:  development of a voiding efficiency nomogram. </font><i><font>J Urol </font></i><font>1995; <b>154 (1)</b>: 190194. </font> <font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074987&pid=S0210-4806200400050000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.  SULLIVAN M, YALLA S.: Detrusor contractility and  compliance characteristics in adult male patients with  obstructive and nonobstructive voiding dysfunction. <i> J  Urol </i>1996; <b>155</b>: 1.995-2.000.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074988&pid=S0210-4806200400050000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.  GUAN, KIRULUTA G, COOLSAET B, ELHILAHI M.: A  minipig model for urinary evaluation of intravesical  obstruction and its possible reversibility. <i>J Urol </i> 1995; <b>154</b>: 580-585.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074989&pid=S0210-4806200400050000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.  LEVIN R, LONGHURST P, MONSON F, KATO K, WEIN  A.: Effect of bladder outlet obstruction on the  morphology, physiology ans pharmacology of the  bladder. <i>Prostate </i>1990; <b>3 supp</b>: 926.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074990&pid=S0210-4806200400050000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.  MALMQVIST U, ARNER A, UVELIUS B.: Cytoskeletal and  contractile proteins in detrusor smooth muscle from  bladders with outlet obstruction. A comparative study  in rat and man. </font><i><font>Scandinavian Journal of  Urology and Nephrology </font></i><font>1991; <b>25</b>: 261267.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074991&pid=S0210-4806200400050000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.  ZIMMERN P, LIN V, MCCONNELL JD.: Smooth-muscle  physiology. <i>Urol Clin North Am </i>1996; <b>23</b>: 211-219.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074992&pid=S0210-4806200400050000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.  ZHAO Y, LEVIN RM, MONSON FC, CHACKO S.:  Expression of constitutive heat shock protein-70 in  normal (non-stressed) rabbit urinary bladder  tissue. <i>Mol Cell Biochem </i>1993 apr 7; <b>121 (1)</b>: 13-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074993&pid=S0210-4806200400050000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.  BRADFORD M.: A rapid and sensitive method for the  quantitation of microgram quantities of protein  utilizing the principle of protein-dye binding. </font><i><font> Anal  Biochem </font></i><font>1976; <b>72</b>: 248-254. </font> <font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074994&pid=S0210-4806200400050000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.  BURNETTE WN.: “Western Blotting”: electrophoretic  transfer of proteins from sodium dodecyl sulfatepolyacrylamide gels  to unmodified nitrocellulose and  radiographic detection with antibody and  radioiodinated protein. <i>Anal Biochem </i>1981; <b>112</b>:  195-203.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074995&pid=S0210-4806200400050000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.  LEVIN RM, MONSON FC, HAUGAARD N, BUTTYAN R,  HUDSON A, ROELOFS M., SARTORE S, WEIN AJ.:  Genetic and cellular characteristics of bladder  outlet obstruction. <i>Urol Clin North Am </i>1995; <b>22</b>:  263-283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074996&pid=S0210-4806200400050000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.  CHACKO S, DISANTO M, WANG Z, ZDERIC S, WEIN  AJ.: Contractile protein changes in urinary  bladder smooth muscle during obstructioninduced  hypertrophy. <i>Scan J Urol Nephrol Supp </i> 1997; <b>184</b>: 67-76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074997&pid=S0210-4806200400050000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15.  MALMQVIST U, ARNER A, UVELIUS B.: Contractile and  cytoskeletal proteins in smooth muscle during  hypertrophy and its reversal. <i>Am J Physiol </i>1991 may; <b>260 (5 Pt 1)</b>: C1085-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074998&pid=S0210-4806200400050000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.  KIM Y, WANG Z, LEVIN R, CHACKO S.: Alterations in  the expression of the beta-cytoplasmatic and  gamma-smooth muscle actins in hypertrophied  urinary bladder smooth muscle. <i>Mol Cell Biochem </i> 1994; <b>131</b>: 115-124.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=074999&pid=S0210-4806200400050000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.  CHACKO S, LONGHURST PA.: Regulation of actomyosin and  contraction in smooth muscle. </font><i><font>World J Urol </font></i><font>1994; <b>12 (5)</b>: 292-297. </font> <font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075000&pid=S0210-4806200400050000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.  OWENS GK, LOEB A, GORDON D, THOMPSON MM.:Expression  of smooth muscle-specific alphaisoactin in  cultured vascular smooth muscle cells:  relationship between growth and cytodiferentiation. <i> J  Cell Biol </i>1986; <b>102</b>: 303-306.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075001&pid=S0210-4806200400050000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.  SAPPINO AP, SKALLI O, JACKSON B, SCHURCH W,  GABBIANI G.: Smooth-muscle differentiation in stromal cells  of malignant and non-malignant breast tissues. <i> Int J  Cancer </i>1988 may 15; <b>41 (5)</b>: 707-712.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075002&pid=S0210-4806200400050000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.  SCHURCH W, SKALLI O, SEEMAYER TA, GABBIANI G.:  Intermediate filament proteins and actin  isoforms as markers for soft tissue tumour differentiation and  origin. I. Smooth muscle tumours. <i> Am J  Pathol </i>1987 jul; <b>128 (1)</b>: 91-103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075003&pid=S0210-4806200400050000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.  ZHANG E, STEIN R, ZDERIC S, WEIN AJ, CHACKO S.:  Overexpression of non-muscle isoform caldesmon. A  protein associated with stress fibers, in  detrusor remodeling following outlet obstruction. </font><i> <font>J Urol </font></i><font>2001; <b>165 (5 supp)</b>: 248. </font> <font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075004&pid=S0210-4806200400050000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.  DISANTO M, MENON C, WEIN AJ, CHACKO S.:  Changes in the composition of myosin isoforms and  caldesmon in the detrusor muscle following  partial outlet obstruction. <i>Neurourol Urodyn </i>1998; <b> 17</b>:  444-445.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075005&pid=S0210-4806200400050000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23.  BURKHARD FC, LEMACK GE, ZIMMERN PE, LIN VK,  MCDONNELL JD.: Contractile protein expression in  bladder smooth muscle is a marker of phenotypic  modulation after outlet obstruction in the  rabbit model. <i>J Urol </i>2001; <b>165: </b>963-967.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075006&pid=S0210-4806200400050000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24.  ZHAO Y, CHACKO S, LEVIN R.: Expression of  stress proteins (HSP-70 and HSP-90) in the rabbit  urinary bladder subjected to partial outlet obstruction. <i> Mol  Cell Biochemistry </i>1994; <b>130</b>: 49-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075007&pid=S0210-4806200400050000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25.  CHEN MW, KRASNAPOLSKY L, LEVIN RM,  BUTTYAN R.: An early molecular response induced by  acute overdistension of the rabbit urinary bladder. <i> Mol  Cell Biochem </i>1994 mar 16; <b>132 (1)</b>: 39-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075008&pid=S0210-4806200400050000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26.  CURRIE RW, WHITE FP.: Characterization of the  synthesis and accumulation of a 71-kilodalton protein  induced in rat tissues after hyperthermia. </font><i><font>Can J  Biochem Cell Biol </font></i><font>1983 jun; <b>61 (6)</b>:  438-446.&nbsp; </font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075009&pid=S0210-4806200400050000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;    <hr width="30%" align="left">     <p><font> &nbsp;Dr.  J. Salinas Casado    <br> C/  Solano, 6 - 4º D    <br> 28223  Prado de Somosaguas (Madrid)     <p> (Trabajo recibido el 10 abril de 2003) </font>       ]]></body><back>
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