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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Análisis de la resistencia inmune en un modelo murino experimental alimentado con dietas lipídicas e infectado con Listeria monocytogenes]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Jaén Facultad de Ciencias Experimentales Departamento de Ciencias de la Salud]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Several dietary lipids are capable of exerting an immunosupressor effect. This action may have undiserable effects on the host immune resistance to infectious diseases. The purpose of the present study was to determinate the immune status of mice fed dietary lipids and experimentally infected with a virulent strain of Listeria monocytogenes. Balb/c mice were divided into four groups and were fed with their respective diet: low fat diet (LF, 20%), olive oil diet (OO, 20%), fish oil diet (FO, 20%) and hydrogenated coconut oil (HCO, 20%). Mice were fed for four weeks and infected with L. monocytogenes by endovenous route. Results have shown a survival reduction in mice fed a diet containing FO, as well as a significant increase in the number of viable bacteria from spleen. In addition, we have observed an increase in the bactericidal activity in peritoneal cells from OO group, although the invasion of L. monocytogenes in cells from this group was larger. Finally, a significant reduction of lymphocyte proliferation was observed in the group fed an FO diet, whereas natural killer (NK) cell activity was not modified. These results indicate that dietary lipids constituted by polyunsaturated n-3 fatty acids reduce the murine immune resistance, whereas a diet constituted by OO-does not exert an immunosuppressor effect as relevant as FO diet, and it does not reduce the immune resistance leading to an efficient L. monocytogenes elimination.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P><B><font size="4">Original</font></B></P>     <P><font size=5><b>Análisis de la Resistencia Inmune en un Modelo Murino Experimental    <br> Alimentado con Dietas Lipídicas e Infectado con <I>Listeria  monocytogenes</I></b></font></P>     <P>M.ª A. Puertollano, M.ª T. Pérez-Toscano, L. Cruz-Chamorro, E.  Puertollano, G. Álvarez de Cienfuegos y M. A. de Pablo*</P>     <P><I><font size="2">Área de Microbiología. Departamento de Ciencias de la Salud. Facultad de  Ciencias Experimentales. Universidad de Jaén.</font></I></P>     <P>&nbsp;</P> <table border="0" width="100%">   <tr>     <td width="48%" valign="top">     <P><B>Resumen</B></P>     <P><B>Algunas dietas lipídicas están implicadas en la reducción de ciertas  funciones inmunes. Sin embargo, la acción inmunosupresora de estas dietas puede  tener efectos adversos sobre la resistencia inmune del individuo frente a  enfermedades de naturaleza infecciosa. En el presente estudio tratamos de  valorar el estado inmune de ratones alimentados con dietas lipídicas e  infectados experimentalmente con una cepa virulenta de </B><I><B>Listeria monocytogenes.</B></I><B>    <br> Ratones de la raza Balb/c fueron divididos en cuatro grupos alimentados  cada uno de ellos con su respectiva dieta: dieta baja en lípidos (control,  2,5%), dieta rica en aceite de oliva (AO, 20%), dieta rica en aceite de pescado  (AP, 20%) y dieta rica aceite de coco (AC, 20%). Los animales fueron alimentados  durante un mes y posteriormente infectados con </B><I><B>L.  monocytogenes</B></I><B> por vía endovenosa.    <br> Los resultados han mostrado una reducción de la supervivencia en animales  alimentados con AP, así como un incremento significativo en el número de  bacterias viables aisladas a partir de bazo. Además hemos podido observar un  aumento de la capacidad bactericida de células peritoneales procedentes de  ratones alimentados con AO, aunque la invasividad de </B><I><B>L. monocytogenes  </B></I><B>en este grupo fue mayor que en el resto. Finalmente, una reducción  significativa de la linfoproliferación fue observada en el grupo alimentado con  AP, mientras que la actividad de células natural killer (NK) no se ha visto  modificada.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Estos resultados indican que dietas lipídicas constituidas por ácidos  grasos poliinsaturados de la serie n-3 reducen la resistencia inmune de los  ratones, mientras que una dieta constituida por AO no produce un efecto  inmusupresor tan relevante y por consiguiente no reduce drásticamente la  resistencia inmune siendo más eficiente en la eliminación de </B><I><B>L. monocytogenes.</B></I></P>     <P align="right">(<I>Nutr Hosp </I>2004, 19:333-340)</P>     <P>Palabras clave:<I> Aceite de oliva. Aceite de pescado. Aceite de coco. Inmunonutrición.</I> Listeria monocytogenes.</P>     </td>     <td width="4%" valign="top"></td>     <td width="48%" valign="top">     <P align="center"><B>ANALYSIS OF THE IMMUNE RESISTANCE IN AN EXPERIMENTAL MURINE MODEL FED DIETARY LIPIDS AND INFECTED WITH  </B><I><B>LISTERIA  MONOCYTOGENES</B></I></P>     <P><B>Abstract</B></P>     <P><B>Several dietary lipids are capable of exerting an immunosupressor effect.  This action may have undiserable effects on the host immune resistance to  infectious diseases. The purpose of the present study was to determinate the  immune status of mice fed dietary lipids and experimentally infected with a  virulent strain of </B><I><B>Listeria monocytogenes.</B></I><B>    <br> Balb/c mice were divided into four groups and were fed with their  respective diet: low fat diet (LF, 20%), olive oil diet (OO, 20%), fish oil diet (FO, 20%) and hydrogenated coconut oil (HCO, 20%). Mice were fed for four weeks  and infected with </B><I><B>L. monocytogenes </B></I><B>by endovenous route.    <br> Results have shown a survival reduction in mice fed a diet containing FO,  as well as a significant increase in the number of viable bacteria from spleen.  In addition, we have observed an increase in the bactericidal activity in  peritoneal cells from OO group, although the invasion of </B><I><B>L.  monocytogenes in </B></I><B>cells from this group was larger. Finally, a  significant reduction of lymphocyte proliferation was observed in the group fed  an FO diet, whereas natural killer (NK) cell activity was not modified.    <br> These results indicate that dietary lipids constituted by polyunsaturated </B><I><B>n</B></I><B>-3 fatty acids reduce the murine immune resistance,  whereas a diet constituted by OO-does not exert an immunosuppressor effect as  relevant as FO diet, and it does not reduce the immune resistance leading to an  efficient </B><I><B>L. monocytogenes </B></I><B>elimination.</B></P>     <P align="right">(<I>Nutr Hosp </I>2004, 19:333-340)</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Key words:<I> Olive oil. Fish oil. Hydrogenated coconut oil. Immunonutrition.  </I>Listeria monocytogenes.</P>     </td>   </tr> </table> <hr width="48%" align="left">     <P><font size="2"><B>Correspondencia: </B>Manuel Antonio de Pablo Martínez.    <br> Universidad de  Jaén. Facultad de Ciencias Experimentales.    <br> Departamento de Ciencias de la Salud.  Área de Microbiología.    <br> 23071 Jaén.    <br> E-mail: <a href="mailto:mapablo@ujaen.es"> mapablo@ujaen.es</a></font></P>     <P><font size="2">Recibido: 11-II-2004.    <br> Aceptado: 26-IV-2004.</font></P>     <P>&nbsp;</P>     <P><B>Introducción</B></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La interacción existente entre los nutrientes y el sistema inmune de animales  y humanos es de gran relevancia y por consiguiente las consecuencias derivadas  de la administración de ciertos componentes de la dieta deben de ser analizadas  desde un punto de vista epidemiológico, clínico y experimental. Los estudios  epidemiológicos llevados a cabo en los años 70 y 80 contribuyeron  considerablemente a la demostración de los efectos inmunosupresores que el  aceite de pescado ejerce en Esquimales de Groenlandia (población caracterizada  por consumir una gran cantidad de pescado en su dieta), de manera que en esta  población la incidencia de enfermedades inflamatorias es muy  reducida<SUP>1</SUP>. Posteriormente otros estudios han destacado  el papel del aceite de pescado (compuesto principal-mente por ácidos grasos  poliinsaturados de la serie <I>n-</I>3) y del aceite de oliva (compuesto  principalmente por ácidos grasos monoinsaturados de la serie <I>n-</I>9) en la  reducción de la actividad inflamatoria característica de enfermedades de  naturaleza inflamatoria como por ejemplo la artritis  reumatoide<SUP>2,3</SUP>. Por lo tanto, la administración de  ácidos grasos con actividad inmunosupresora podría tener efectos beneficiosos  para la salud, dirigidos fundamentalmente a la prevención de desórdenes de tipo  inflamatorio. Sin embargo, investigaciones paralelas a las mencionadas con  anterioridad indicaron que en los Esquimales de Groenlandia la tasa de enfermos  afectados por tuberculosis era significativamente  alta<SUP>4,5</SUP>. Así, este hecho revela que los procesos de  inmunosupresión tras la administración de dietas ricas en ácidos grasos  poliinsaturados de la serie <I>n</I>-3 reducen la resistencia inmune frente a  agentes infecciosos.</P>     <P>Posteriormente diferentes estudios experimentales mostraron los mecanismos de  acción de diferentes dietas lipídicas (fundamentalmente aquellas que contienen  ácidos grasos poliinsaturados de la serie <I>n-3) </I>que conducen a un proceso  de inmunosupresión. Igualmente otras investigaciones de carácter experimental se  han centrado en el estudio de las diferentes funciones inmunes moduladas por  estos ácidos grasos. Así, a lo largo de los últimos años numerosas  investigaciones han puesto de manifiesto las consecuencias derivadas del consumo  de una dieta rica en ácidos grasos de la serie <I>n-</I>3 en animales sometidos  a una infección experimental con bacterias, virus o parásitos. Generalmente  estas consecuencias se basan en una reducción de las funciones inmunes que  conduce a un incremento de la susceptibilidad del animal frente al agente  patógeno<SUP>6-8</SUP>.</P>     <P>Sin embargo, en nuestro estudio nos centramos particularmente en los efectos  que una dieta rica en aceite de oliva puede provocar en la modulación de las  funciones inmunes y por lo tanto es de gran importancia la determinación de las  consecuencias que la administración de una dieta que contiene aceite de oliva  puede inducir sobre la alteración de las funciones inmunes y especialmente sobre  la resistencia a enfermedades de naturaleza infecciosa. Así, ratones de la raza  Balb/c fueron divididos en cuatro grupos y alimentados cada uno con una dieta  que contenía baja proporción de grasas (control), aceite de oliva (AO), aceite  de pescado (AP) o aceite de coco (AC), respectivamente. Una vez finalizado el  período de administración de las dietas, los ratones fueron sometidos a una  infección experimental con <I>Listeria monocytogenes,</I> un patógeno  intracelular muy utilizado para establecer los mecanismos inmunes desencadenados  frente a bacterias que se desarrollan en el interior de ciertos tipos  celulares.</P>     <P><B>Material y métodos</B></P>     <P><I>Animales y dietas</I></P>     <P>Ratones Balb/c, (8-10 semanas de edad) obtenidos de la Universidad de Jaén  fueron mantenidos en jaulas a 24° C y ciclos luz/oscuridad de 12 h. Los ratones  se escogieron aleatoriamente y fueron divididos en cuatro grupos experimentales.  Cada grupo tuvo acceso a agua y a sus respectivas dietas experimentales <I>ad  libitum. </I>Las dietas eran idénticas en composición a excepción del tipo de  grasa. Así, el primer grupo fue alimentado con una dieta que contenía una baja  proporción de lípidos (dieta control 2,5%), el segundo grupo con una que  contenía aceite de oliva (AO, 20%), el tercer grupo con una que contenía aceite  de pescado (AP, 20%) y finalmente el cuarto grupo con una que contenía aceite de  coco (AC, 20%). Las dietas fueron administradas durante cuatro semanas antes de  la infección experimental con <I>L. monocytogenes. </I>La composición de las  dietas experimentales es mostrada en la <a href="#t1"> tabla 1</a>.</P>     <p align=center><a name="t1"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_tabla1.gif" width=317 height=338></a></p>     <P><I>    <br> Infección experimental con Listeria monocytogenes</I></P>     <P>Una cepa virulenta de<I> L. monocytogenes</I> fue sembrada en agar sangre  (medio agar triptona-soja (TSA) suplementado con 7% de sangre) a 37° C durante  24 h. Posteriormente para los ensayos de supervivencia, 10<SUP>7  </SUP>unidades formadoras de colonias (UFC)/ml fueron recogidas en  tampón fosfato salino (PBS) y 100 <i>µ</i>l de esta suspensión  (10<SUP>6</SUP> UFC) fueron inyectadas a través de la vena de la  cola. Cada grupo estaba compuesto por 10 ratones y la muerte fue registrada cada  8 h. Los datos son expresados como porcentaje de supervivencia.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>Recuperación y cuantificación de bacterias viables a partir del  bazo</I></P>     <P>Los ratones fueron infectados a través de la vena de la cola  (10<SUP>4</SUP> UFC por ratón). Los bazos de los ratones  infectados fueron homogenizados asépticamente y las células lavadas tres veces  en agua destilada para producir un choque osmótico y liberar a las bacterias que  crecen en el interior. Seis diluciones seriadas fueron llevadas a cabo en  solución salina mediante la transferencia de 10 <i>µ</i>l en placas de agar TSA-sangre.  Las placas fueron incubadas a 37° C durante 24 h y el número de colonas  bacterianas fue contado. Los resultados son expresados como  log<SUB>10</SUB> de bacterias viables.</P>     <P><I>Medición de proliferación de linfocitos</I></P>     <P>La proliferación de linfocitos aislados del bazo de ratones alimentados con  las dietas experimentales fue cuantificado mediante la técnica colorimétrica con (3-[4,5-dimethyithiazol-2 yl]-2,5-diphenyltetrazolium bromide)  (MTT)<SUP>9</SUP>. Los esplenocitos fueron cultivados en placas  de 96 pocillos a una concentración de 10<SUP>5  </SUP>células/pocillo e incubados en una atmósfera humidificada a 37° C  y 5% de CO<SUB>2</SUB> durante 24 h y en presencia de  concanavalin A (Con A) a 5 <i>µ</i>g/ml. Posterior-mente se añadió 150 <i>µ</i>l de HCI 0.04N  en isopropanol para disolver los precipitados de formazan. La densidad óptica de  cada muestra en triplicado se cuantificó en un lector de microplacas a 550 nm  (longitud de onda de medida) y 620 nm (longitud de onda de referencia). los  resultados son expresados como índice de estimulación que fue calculado como  densidad óptica (DO) en presencia del mitógeno dividido por la DO en ausencia  del nitógeno.</P>     <P><I>Actividad de células natural killer (NK)</I></P>     <P>La actividad de las células NK fue determinada mediante la medición de la  liberación de la enzima lactato deshidrogenasa (LDH) producida por las células  esplénicas en sobrenadantes de los cultivos celulares. La citotoxicidad fue  medida mediante un kit (Promega, Madison, WI, USA) siguiendo las instrucciones  del fabricante, Las células esplénicas (células efectoras) fueron ajustadas a  una concentración de 2 x l0<SUP>6</SUP> células/pocillo  en triplicado, mientras que las células YAC-1 (células diana) fueron ajustadas a  una concentración de 10<SUP>4</SUP> células/pocillo en una placa  de microtiter de 96 pocillos y a un ratio efectoras:diana de 100:1, 50:1 y 25:1.  La liberación máxima de LDH fue determinada al incubar las células diana con  Triton X-100 al 0,8%. En cambio, la liberación de LDH espontánea fue  cuantificada mediante el cultivo de las células diana en RPMI 1.640 suplementado  con suero bovino fetal (SBF) al 5%. La placa fue centrifugada durante 5 min a  700 rpm y posteriormente las células se incubaron durante 5 h a 37° C y en una  atmósfera humidificada con 5% de CO<SUB>2</SUB>. El tampón de  liberación máxima fue añadido 45 min antes de que finalizara el periodo de  incubación. El substrato fue añadido a cada pocillo, incubando las células  durante 30 min a temperatura ambiente y protegidas de la luz. Finalmente la  reacción fue detenida al añadir la solución stop y la placa fue leída en un  lector de microplacas a una longitud de onda de 492 nm, Los valores son  expresados como porcentaje de liberación de LDH y calculados según la siguiente  ecuación:</P>     <P align="center">Citotoxicidad= [(DO<font size="2"><sub>experimental</sub></font>-DO<font size="2"><sub>espontánea</sub></font>efectoras-    <br> DO<font size="2"><sub>espontánea  diana</sub></font>)/(D<font size="2"><sub>máximo diana</sub></font>-DO<font size="2"><sub>espontánea diana</sub></font>)] x 100</P>     <P><I>    <br> Análisis de la actividad bactericida</I></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La eficiencia de células peritoneales para eliminar a <I>L.  monocytogenes</I> fue determinada mediante protocolos previamente  descritos<SUP>10</SUP>. Células peritoneales ajustadas a una  concentración de 2 x l0<SUP>6</SUP> células/ml fueron  incubadas con bacterias viables a 37° C durante 30 min (20 bacterias por  célula). Una solución de gentamicina a una concentración final de 50 <i>µ</i>g/ml fue  añadida con el objeto de eliminar a las bacterias no fagocitadas. Tras 15 min de  incubación, las células fueron lavadas dos veces en PBS suplementado con 1 g/l  de albúmina sérica bovina, Una alícuota de las células fue lisada con digitonina  al 0,1% a 4° C con el objeto de liberar las bacterias internalizadas. Las  muestras fueron sembradas en triplicado en placas de TSA-sangre (recuento  inicial). La alicuota restante fue incubada durante 2 h a 37° C y procesadas  como se ha descrito anteriormente (recuento final). La actividad bactericida de  células peritoneales se expresa como la diferencia entre las lecturas  practicadas a 0 h (recuento inicial) y 2 h (recuento final) x 100 y  dividido por la lectura a 0 h. </P>     <P><I>Determinación de adhesión e invasión de L. monocytogenes</I></P>     <P>Para este ensayo las células esplénicas ajustadas a una concentración de 3 x 10<SUP>5</SUP> por pocillo fueron dispuestas en placas  de 24 pocillos. Para los ensayos de adhesión, las células fueron infectadas con  0,1 ml de suspensión bacteriana (20 bacterias por célula, índice de  multiplicidad 2001) durante 2 h de incubación a 37° C y 5%  C0<SUB>2</SUB>. Posteriormente las células fueron lavadas tres veces y lisadas con 1 ml de  Triton X-100 al 1% durante 5 min a 37° C, seguido por 10 diluciones seriadas en  TSA-sangre. Las UFC fueron contadas después de 24 h de incubación de las placas  a 37° C. Para los ensayos de invasión 50 <i>µ</i>g/ml de gentamicina fueron añadidos al  cultivo celular infectado para matar las bacterias extracelulares; seguido de 2  h de incubación a 37° C. Finalmente, las células fueron lavadas dos veces y  lisadas con Triton X-100 al 1% durante 5 min a 37° C. Los resultados fueron  expresados como log<SUB>10</SUB> de bacterias viables.</P>     <P><I>Análisis estadístico</I></P>     <P>Los datos son presentados como media ± error estándar de la media, Los  resultados fueron determinados por análisis de varianza (ANOVA) para comparar  los efectos de las dietas experimentales y el grupo control. Cuando ANOVA indicó  diferencias significativas, se utilizó el test LSD. Las diferencias  estadísticamente significativas fueron consideradas a <I>P</I> &lt; 0,05.</P>     <P><B>Resultados</B></P>     <P><I>1. Análisis</I> in vivo</P>     <P>Peso de ratón y bazo</P>     <P>Los pesos de ratón y bazo no mostraron diferencias estadísticamente  significativas en todos los grupos analizados, con excepción del grupo  alimentado con AP en el cual una reducción significativa en el peso de ratón y  bazo fue observada después de la administración de la dieta (<a href="#t2">tabla II</a>).</P>     <p align=center><a name="t2"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_tabla2.gif" width=311 height=238></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>    <br> Ácidos grasos poliinsaturados </I>n<I>-3 reducen la supervivencia de  ratones infectados</I></P>     <P>La <a href="#f1"> figura 1</a> muestra los valores de supervivencia de ratones alimentados con  dietas lipídicas a una infección experimental con <I>L. monocytogenes.</I> Los  animales alimentados con la dieta que contiene AP mueren antes que aquellos  alimentados con los otros tipos de dieta analizados. De hecho, a las 48 h de la  infección experimental con <I>L. monocytogenes</I> sólo sobrevivieron el 20% de  los animales, mientras que a las 96 h murieron el 100% de todos los animales que  integraban este grupo. Sin embargo, en los grupos alimentados con AO o AC los  animales sobrevivieron durante más tiempo especialmente en los animales  alimentados con esta última dieta, donde los porcentajes de supervivencia fueron  superiores al resto de los grupos.</P>     <p align=center><a name="f1"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_fig1.gif" width=493 height=383></a></p>     <p align="center"><font size="2"><I>Fig. 1.-Porcentaje de supervivencia de ratones  alimentados con dietas lipídicas    <br> (</I>n<I>=10 en cada grupo experimental)  después de la infección con </I>Listeria monocytogenes.</font></P>     <P><I>    <br> Recuentos de bacterias viables a partir del bazo</I></P>     <P>El recuento de bacterias viables obtenidas a partir del bazo de ratones  alimentados con dietas lipídicas ha mostrado un incremento estadísticamente  significativo en los grupos alimentados con AO, AP o AC con respecto al grupo  alimentado con una dieta baja en lípidos (control) (<I>P</I> &lt; 0,05). Sin  embargo, es destacable mencionar el elevado número de bacterias aisladas en  bazos de ratones alimentados con la dieta que contiene AP, mayor que en el resto  de los grupos analizados (<a href="#f2">fig. 2</a>).</P>     <p align=center><a name="f2"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_fig2.gif" width=309 height=246></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2"><I>Fig. 2.-Recuentos de</I> Listeria monocytogenes <I>aislada a    <br> partir del bazo de ratones alimentados con dietas    <br> lipídicas (n = 5 en cada grupo experimental). * </I>P<I> &lt; 0,05    <br> comparado con el grupo control es considerado como    <br> estadísticamente significativo.</I></font></p>     <P><I>    <br> 2. Análisis </I>ex vivo</P>     <P>Proliferación de linfocitos estimulados con concanavalin A (Con A) </P>     <P>La <a href="#f3"> figura 3</a> muestra la proliferación de linfocitos estimulados con el  mitógeno Con A. La proliferación de linfocitos procedentes de ratones  alimentados con AP mostró una reducción estadísticamente significativa con  respecto a los valores de linfoproliferación en animales alimentados con una  dieta control (P &lt; 0,05). En el resto de los grupos no encontramos  alteraciones estadísticamente significativas con respecto a la proliferación de  linfocitos, aunque podemos observar un ligero incremento en la proliferación de  linfocitos en el grupo alimentado con la dieta que contiene AO.</P>     <p align=center><a name="f3"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_fig3.gif" width=308 height=246></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2"><I>Fig. 3.-Medición de la proliferación de linfocitos  estimulados    <br> con concanavalina A (Con A) en animales alimentados con    <br> dietas  lipídicas (</I>n<I> = 5 en cada grupo experimental). *</I>P<I> &lt; 0,05    <br> comparad con el grupo control es considerado como    <br> estadísticamente  significativo.</I></font></p>     <P>    <br> Actividad de células natural killer (NK)</P>     <P>La <a href="#t3"> tabla III</a> muestra la actividad de células NK en animales alimentados con  dietas lipídicas. La administración de las diferentes dietas lipídicas no  modifican la actividad de células NK medida como porcentaje de  citotoxicidad.</P>     <p align=center><a name="t3"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_tabla3.gif" width=646 height=206></a></p>     <P>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Actividad bactericida</P>     <P>La actividad bactericida determina la capacidad de las células fagociticas  para eliminar un determinado patógeno. La <a href="#t4"> tabla IV</a> muestra la medición de la  actividad bactericida de células peritoneales procedentes de animales  alimentados con dietas lipídicas. En el grupo alimentado con AP podemos observar  una reducción significativa de la capacidad de estas células para eliminar a  <I>L. monocytogenes</I> (P &lt; 0,05), mientras que en el grupo alimentado con  AO el porcentaje de la actividad bactericida es mayor que el del grupo  control.</P>     <p align=center><a name="t4"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_tabla4.gif" width=308 height=243></a></p>     <P>    <br> Adhesión e invasión</P>     <P>En este estudio tratamos de determinar también la capacidad de adhesión e  invasión de <I>L. monocytogenes</I> en esplenocitos procedentes de animales  alimentados con dietas lipídicas. Los valores de adhesión fueron reducidos  significativamente en esplenocitos de animales alimentados con AP, mientras que  los mayores valores de invasión fueron observados en el grupo alimentado con AO (<a href="#f4">fig. 4</a>).</P>     <p align=center><a name="f4"><img src="/img/nh/v19n6/original2/original2_fig4.gif" width=309 height=245></a></p>     <p align="center"><I><font size="2">Fig. 4.-Medición de la adhesión e invasión de </font>  </I><font size="2">Listeria    <br> monocytogenes<I> en esplenocitos procedentes de animales    <br> alimentados con dietas lipídicas e incubadas durante 2 h.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Adhesión (barras  abiertas), invasión (barras cerradas).    <br> *</I>P<I> &lt; 0,05 comparado con el  grupo control es considerado    <br> como estadísticamente significativo (</I>n<I> = 5  en cada grupo    <br> experimental).</I></font></p>     <P><B>    <br> Discusión</B></P>     <P>Los estudios experimentales y epidemiológicos llevados a cabo hasta el  momento han revelado las propiedades inmunomoduladoras de algunas dietas  lipídicas y la importancia que han adquirido algunos ácidos grasos en  inmunonutrición<SUP>11,12</SUP>. Sin embargo, la acción que  ejercen las mencionadas dietas lipídicas depende fundamentalmente del tipo de  ácidos grasos contenidos en ellas. Tal y como hemos indicado con anterioridad,  el aceite de pescado compuesto principalmente por ácidos grasos de la serie  <I>n-</I>3 es el más inmunosupresor ejerciendo su efecto sobre diferentes  funciones del sistema inmune como es la proliferación de  linfocitos<SUP>13</SUP>, producción de diferentes  citoquinas<SUP>14</SUP>, actividad de células  NK<SUP>15</SUP>, o moléculas de  adhesión<SUP>16</SUP>. Esta propiedad inmunosupresora se ha  revelado muy importante en la reducción de los síntomas inflamatorios  característicos de enfermedades autoinmunes como por ejemplo la artritis  reumatoide<SUP>2,3</SUP>. Sin embargo un efecto inmunosupresor  también puede ser perjudicial, puesto que reduce la resistencia inmune del  individuo frente a agentes patógenos<SUP>6,7</SUP>. Muchos son  los estudios que han indicado que la administración de dietas que contiene  ácidos grasos de la serie <I>n</I>-3 reducen la resistencia inmune frente a  patógenos tan importantes como <I>Mycobacterium  tuberculosis</I><SUP>17</SUP>, <I>Salmonella  typhimurium</I><SUP>18</SUP><I> Pseudomonas  aeruginosa</I><SUP>19</SUP> o <I>L.  monocyto-genes</I><SUP>20-22</SUP>. Por el contrario es necesario  mencionar que otros estudios han demostrado un incremento de la resistencia  inmune en animales alimentados con dietas enriquecidas con aceite de pescado e  infectados experimentalmente con <I>Klebsiella  pneumoniae</I><SUP>23-24</SUP>, 0 bien una ausencia de efecto en  ratones alimentados con diferentes dietas lipídicas en infectados con  <I>Pseudomonas aeruginosa</I> o <I>Salmonella  typhimurium</I><SUP>25</SUP>. Sin embargo, a nuestro juicio estas  discrepancias se pueden deber a los diferentes mecanismos de patogenia que  utilizan las diferentes bacterias expuestas con anterioridad, si bien los  estudios llevados a cabo con el virus influenza en animales alimentados con  aceite de pescado han demostrado también una reducción de la resistencia inmune  frente a este agente<SUP>26,27</SUP>.</P>     <P>Estas propiedades inmunosupresoras asociadas a la administración de dietas  que contienen aceite de pescado no se ven tan agudizadas con la administración  de dietas que contienen AO, puesto que esta grasa no ejerce un efecto  inmunosupresor tan relevante como el AP<SUP>28</SUP>. Así, los  ensayos <I>in vivo</I> han demostrado como los índices de supervivencia de los  animales alimentados con ácidos grasos saturados son mayores y consecuentemente  sobreviven a la infección con una dosis letal de<I> L. monocytogenes</I> durante  un periodo de tiempo ligeramente superior que el grupo alimentado con  AP<SUP>22</SUP>. Paralelamente este estudio ha demostrado como a  partir del bazo de los animales experimentalmente infectados con<I> L.  monocytogenes</I> y alimentados con una dieta que contiene ácidos grasos  saturados se produce una reducción en el recuento de bacterias viables en  comparación con el grupo alimentado con la dieta que contiene AP, esto indica  que el sistema inmune del grupo alimentado con ácidos grasos saturados posee una  mayor capacidad para eliminar a <I>L. monocytogenes</I> que el grupo alimentado  con una dieta que contiene AP<SUP>22</SUP>. En nuestro estudio  hemos podido comprobar como se reduce la supervivencia en el grupo alimentado  con AP, mientras que la recuperación de bacterias viables aisladas a partir de  bazo es mayor, lo cual indica una ineficiente capacidad de eliminación de <I>L.  monocytogenes</I> en el grupo alimentado con esta dieta. Por el contrario, en el  resto de los grupos el porcentaje de supervivencia fue ligeramente superior y la  recuperación de bacterias viables a partir de bazo fue menor que en el grupo  alimentado con la dieta que contiene AP.</P>     <P>Las propiedades inmunosupresoras asociadas al AO se deben exclusivamente a la  acción del ácido oleico y por lo tanto, otros componentes menores que forman  parte de este aceite no están implicados en estas  acciones<SUP>29</SUP>. Además, la administración de  N-acetil-L-cisteína, agente con función antioxidante, no produjo ningún efecto  en la supervivencia o en el recuento de bacterias viables obtenidas a partir del  bazo de animales alimentados con una dieta que contenía AO o AP, lo que  demuestra que el posible papel de la oxidación causada por la administración de  dietas que contienen ácidos grasos poliinsaturados o monoinsaturados, no  adquiere ninguna importancia en la supresión del sistema inmune y por lo tanto,  otras causas diferentes a los procesos de oxidación son responsables de la  modulación del sistema inmune por los ácidos grasos de la  dieta<SUP>30</SUP>.</P>     <P>Uno de los posibles mecanismos implicados en un mejor estado del sistema  inmune en animales alimentados con AO puede estar relacionado con una mejor  respuesta linfoproliferativa. En esplenocitos procedentes de ratones alimentados  con AO y estimulados con un mitógeno de células T como es Con A pudimos observar  un incremento de esta actividad, mientras que una reducción significativa del  índice de estimulación fue cuantificado en esplenocitos de animales alimentados  con AP. Este dato indica la capacidad supresora de esta dieta, tal y como  algunos estudios sugieren<SUP>13</SUP>. Por otra parte, en  nuestro estudio no comprobamos ninguna alteración de la actividad de células NK  después de la administración de dietas lipídicas, mientras que otras  investigaciones han encontrado una reducción de la actividad de estas  células<SUP>15</SUP>. Aquí, también determinamos la capacidad de  adhesión e invasión de <I>L. monocytogenes</I> en esplenocitos de animales  alimentados con dietas lipídicas. Como podemos apreciar, los valores de invasión  son superiores en el grupo alimentado con la dieta que contiene AO, mientras que  la capacidad bactericida en este grupo fue mayor. Estos resultados indican que  uno de los factores implicados en la eliminación de <I>L. monocytogenes </I>en  el grupo alimentado con AO está relacionado con la capacidad de las células  procedentes de estos ratones para posibilitar la entrada de <I>L.  monocytogenes,</I> mientras que simultáneamente un incremento de la actividad  bactericida frente a este patógeno ha sido evidenciado, lo cual facilita  considerablemente la eliminación de este  patógeno<SUP>10</SUP>.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>De estos estudios se deduce principalmente que si bien el AO ejerce un  proceso inmunosupresor, éste no es tan relevante como el derivado de la  administración de dietas que contienen AP y esto provoca un mayor incremento de  la resistencia inmune del individuo frente a enfermedades de naturaleza  infecciosa. Por consiguiente, a raíz de estas investigaciones se desprende la  secuencia de los ácidos grasos más inmunosupresores; así ácidos grasos  poliinsaturados &gt; ácidos grasos monoinsaturados <font size="2"> &#8805;</font> ácidos grasos  saturados.</P>     <P>Sin embargo, a pesar de los descubrimientos dentro de este campo, en los  últimos años se han generado una serie de discrepancias lo cual hace necesario  una mayor investigación con el objeto de despejar las actuales controversias y  determinar las razones por las cuales en algunos casos las dietas enriquecidas  con ácidos grasos poliinsaturados de la serie <I>n-</I>3 incrementan la  resistencia inmune, mientras que en otros casos la reducen. Este hecho podría  estar relacionado con la necesidad de definir de forma precisa los componentes  del sistema inmune requeridos para la defensa frente a un patógeno específico,  el modo de administración del patógeno, las especies animales objeto del estudio  o la cantidad de ácidos grasos administrados en la dieta.</P>     <P><B>Conclusiones</B></P>     <P>Las dietas lipídicas constituidas por ácidos grasos poliinsaturados de la  serie <I>n-</I>3 (contenidos fundamentalmente en el aceite de pescado) producen  una supresión de las funciones inmunes, lo cual conduce a una reducción de la  resistencia inmune del individuo frente a agentes patógenos (bacterias o virus).  Sin embargo, las dietas constituidas por ácidos grasos monoinsaturados  (contenidos particularmente en el aceite de oliva) no ocasionan una  inmunosupresión tan agudizada como los ácidos grasos poliinsaturados de la serie  <I>n-</I>3 y no inducen un incremento tan severo de la susceptibilidad del  individuo a enfermedades de naturaleza infecciosa.</P>     <P><B>Agradecimientos</B></P>     <P>M. A. Puertollano recibe una beca del Plan de Formación de Personal Docente e  Investigador de la Junta de Andalucía. E. Puertollano recibe una beca del Plan  de Formación de Profesorado Universitario del Minis-terio de Educación, Cultura  y Deporte.</P>     <P><B>Referencias</B></P>     <!-- ref --><P>1 . Kromann N y Green A: Epidemiological studies in the Upernavik district,  Greenland incidence of some chronic diseases 1950-1974. <I>Acta Med Scand  </I>1980, 208:401-406. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453276&pid=S0212-1611200400060000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->2. Kremer JM, Lawrence DA, Jubiz W y cols.: Dietary  fish oil and olive oil supplementation in patients with rheumatoid arthritis.  Clinical and immunologic effects.<I> Arthritis Rheum </I>1990, 33:810-820.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453277&pid=S0212-1611200400060000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Linos A, Kaklamanis E, Kontomerkos A y cols.: The effect of olive  oil and fish consumption on rheumatoid arthritis-case control study. <I>Scand J  Rheumatol</I> 1991, 20:419-426.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453278&pid=S0212-1611200400060000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Kaplan, GJ, Fraser, RI, Comstock  GW: Tuberculosis in Alaska 1970. <I>Am Rev Respir Dis </I>1971, 105:920-926.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453279&pid=S0212-1611200400060000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Stevenson M: Tuberculosis in the north - a lifestyle issue. <I>Can  Nurse </I>1984, 80:41-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453280&pid=S0212-1611200400060000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Anderson M, Fritsche KL: (n-3) fatty  acids and infectious disease resistance. <I>J Nutr </I>2002, 132:3566-3576.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453281&pid=S0212-1611200400060000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. De Pablo MA, Puertollano MA, Álvarez de Cienfuegos G: Biological  and clinical significance of lipids as modulators of immune system functions.  <I>Clin Diagn Lab Immunnol</I> 2002, 9:945-950.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453282&pid=S0212-1611200400060000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. De Pablo MA,  Puertollano MA y Álvarez de Cienfuegos G: Immune cell functions, lipids and host  natural resistance. <I>FEMS Immunol Med Microbiol</I> 2000, 29:323-328.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453283&pid=S0212-1611200400060000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Mosmann T: Rapid colormetric, assay for cellular growth and  survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. <I>J Immunol  Methods</I> 1983, 65:55-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453284&pid=S0212-1611200400060000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Palombo JD, DeMichele SJ, Boyce PJ y  cols.: Effect of short-term enteral feeding with eicosapentaenoic and  gamma-linolenic acids on alveolar macrophage eicosanoid synthesis and  bactericidal function in rats.<I> Crit Care Med</I> 1999, 27:1908-1915.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453285&pid=S0212-1611200400060000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Calder PC: Fat chance of immunomodulation. <I>Immunol Today  </I>1998, 19:244-247.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453286&pid=S0212-1611200400060000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. De Pablo MA, Álvarez de Cienfuegos: G:  Modulatory effects of dietary lipids on immune system functions. <I>Immunol Cell  Biol </I>2000, 78:31-39.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453287&pid=S0212-1611200400060000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Yaqoob P, Newsholme EA, Calder PC: The  effect of dietary lipid manipulation on rat lymphocyte subsets and  proliferation. <I>Immunology </I>1994, 82:603-610.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453288&pid=S0212-1611200400060000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Calder PC: N-3  polyunsaturated fatty acids and cytokine production in health and disease.  <I>Ann Nutr Metab</I> 1997, 41:203-234.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453289&pid=S0212-1611200400060000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Yaqoob P, Newsholme EA,  Calder PC: Inhibition of natural killer cell activity by dietary lipids.<I>  Immunol Lett </I>1994, 41:241-247.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453290&pid=S0212-1611200400060000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Sanderson P, Calder PC: Dietary  fish oil diminishes lymphocyte adhesion to macrophage and endothelial cell  monolayers. <I>Immunology</I> 1998, 94:79-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453291&pid=S0212-1611200400060000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Paul KP,  Leischsenring M, Pfisterer M y cols.: Influence of <I>n-</I>6 and n-3  polyunsaturated fatty acids on the resistance to experimental tuberculosis.  <I>Metabolism</I> 1997, 46:619-624.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453292&pid=S0212-1611200400060000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Chang HR, Dullo AG, Vladoianu  IR y cols.: Fish oil decreases natural resistance of mice to infection with  <I>Salmonella typhimurium. Metabolism </I>1992, 41:1-2.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453293&pid=S0212-1611200400060000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Peck MD,  Alexander JW, Ogle CK y Babcock GF: The effect of dietary fatty acids on  response to Pseudomonas infection in burned mice. <I>J Trauma</I> 1990,  30:445-452.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453294&pid=S0212-1611200400060000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 De Pablo MA, Puertollano MA, Gálvez A, Ortega E, Gaforio JJ y  Álvarez de Cienfuegos G: Determination of natural resistance of mice fed dietary  lipide to experimental infection induced by <I>Listeria monocytogenes. FEMS  Immunol Med Micro-biol </I>2000; 27:127-133.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453295&pid=S0212-1611200400060000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Puertollano, MA, De  Pablo MA y Álvarez de Cienfuegos G: Relevance of dietary lipids as modulators of  immune functions in cells infected with <I>Listeria monocytogenes. Clin Diagn  Lab Immunol</I> 2002,9:352-357.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453296&pid=S0212-1611200400060000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Fritsche KL, Shahbazian LM, Feng  C, Berg JN: Dietary fish oil reduces survival and impairs bacterial clearance in  C3H/Hen mice challenged with <I>Listeria monocytogenes. Clin Sci </I>1997,  92:95-101.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453297&pid=S0212-1611200400060000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Bjornsson S, Hardardottir 1, Gunnarson E, Haraldsson A:  Dietary fish oil supplementation increases survival in mice following  <I>Klebsiella pneumoniae</I> infection. <I>Scand J Infect Dis </I>1997,  29:491-493.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453298&pid=S0212-1611200400060000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Blok WL, Vogels MT, Curfs JH, Eling WM, Buumnan WA,  Van der Meer JW: Dietary fish-oil supplementation in experimental gram-negative  infection and in cerebral malaria in mice. <I>J Infect Dis </I>1992,165:898-903.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453299&pid=S0212-1611200400060000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Clouva-Molyvdas P, Peck MD, Alexander JW: Short-term dietary lipid  manipulation does not affect survival in two models of murine sepsis. <I>J  Parenter Enteral Nutr</I> 1992, 16:343-347.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453300&pid=S0212-1611200400060000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Byleveld PM, Pang GT,  Clancy RL, Roberts DCK: Fish oil feeding enhances lymphocyte proliferation but  impairs virus-specific T lymphocyte cytotoxicity in mice following challenge  with influenza virus. <I>Clin Exp Immunol</I> 2000, 119:287-292.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453301&pid=S0212-1611200400060000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27.  Byleveld PM, Pang GT, Clancy RL, Roberts DC: Fish oil feeding delays influenza  virus clearance and impairs production of interferon-gamma and virus-specific,  immunoglobulin A in the lungs of mice. <I>J Nutr</I> 1999, 129:328-335.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453302&pid=S0212-1611200400060000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Yaqoob P, Knapper JA, Webb DH, Williams CM, Newsholme EA, Calder  PC: Effect of olive oil on immune function in middle-aged men.<I> Am J Clin Nutr  </I>1998, 67:129-135.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453303&pid=S0212-1611200400060000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Jeffery NM, Yaqoob P, Newsholme EA, Calder  PC: The effects of olive oil upon rat serum lipid levels and lymphocyte  functions appear to be due to oleic acid. <I>Ann Nutr Metab</I> 1996, 40:71-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453304&pid=S0212-1611200400060000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Puertollano MA, De Pablo MA, Álvarez de Cienfuegos G: Anti-oxidant  properties of N-acetyl-L-cysteine do not improve the immune resistance of mice  fed dietary lipids to <I>Listeria monocytogenes</I> infection. <I>Clin Nutr</I>  2003, 22:313-319.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3453305&pid=S0212-1611200400060000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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