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<article-id pub-id-type="doi">10.20960/nh.627</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Impacto de la pasteurización/liofilización en el contenido disponible de inmunoglobulinas en leche humana madura: estudio de aplicación en bancos de leche humana en hospitales]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: This study analyzes the effect on the content of immunoglobulins and C3 complement of freeze drying after pasteurization by three different methods in mature human milk (MHM). Objective: Freeze drying is proposed as a complementary method for the maintenance of MHM therapeutic properties with greater validity. Methods: This was a descriptive study in which MHM samples were obtained. Next, aliquots of the samples obtained were pasteurized by three methods: 62.5 ºC/30 minutes, 72 ºC/15 minutes, 85 ºC/5 minutes, followed by a rapid cooling at 5 ºC. Then, 30 ml volumes of pasteurized sample were freeze-dried over a period of 36 hours. Total protein determination was performed by the Lowry method. The concentrations of immunoglobulins A, G and M, and complement C3, were determined by conventional nephelometric technique following the manufacturer's instructions. Statistical significance was defined as p < 0.05. Results: The method of pasteurization of MHM with increased protein and immunoglobulin retention was at 62.5 ºC, however, pasteurization at 72 ºC before freeze-drying showed better retention of immunoglobulins. Conclusions: Our results suggest that the freeze-drying of pasteurized MHM is a suitable method for the conservation in human milk banks. Both the nutritional composition and the extension of its validity and the application of the two processes together provide the advantage of maintaining the therapeutic properties of human milk to improve the health of the newborn in a vulnerable, impaired or immunosuppressed state.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><a name="top"></a><font face="Verdana" size="2"><b>TRABAJO ORIGINAL / <i>Epidemiología y diet&eacute;tica</i></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="4"><b>Impacto de la pasteurizaci&oacute;n/liofilizaci&oacute;n en el contenido disponible de inmunoglobulinas en leche humana madura. Estudio de aplicaci&oacute;n en bancos de leche humana en hospitales</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="4"><b>Impact of pasteurization/freeze-drying on available immunoglobulin content of the mature human milk. Use in human milk banking of hospitals</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Jorge Castro-Albarr&aacute;n<sup>1,4</sup>, Rosa Elena Navarro-Hern&aacute;ndez<sup>2,3</sup>, Josu&eacute; Raymundo Sol&iacute;s-Pacheco<sup>1,2</sup>, Itza Carmina Salazar-Qui&ntilde;ones<sup>5</sup>, Griselda Guadalupe Mac&iacute;as-L&oacute;pez<sup>2</sup>, Juan Carlos Barrera-De Le&oacute;n<sup>4</sup> y Blanca Rosa Aguilar-Uscanga<sup>1,2</sup></b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><sup>1</sup>Doctorado en Procesos Biotecnol&oacute;gicos. Centro Universitario de Ciencias Exactas e Ingenier&iacute;as. Universidad de Guadalajara. Guadalajara, Jalisco. M&eacute;xico.    <br><sup>2</sup>Departamento de Farmacobiolog&iacute;a. Centro Universitario de Ciencias Exactas e Ingenier&iacute;as. Universidad de Guadalajara. Guadalajara, Jalisco. M&eacute;xico.    <br><sup>3</sup>Departamento de Biolog&iacute;a Molecular y Gen&oacute;mica. Centro Universitario de Ciencias de la Salud. Universidad de Guadalajara. Guadalajara, Jalisco. M&eacute;xico.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br><sup>4</sup>Hospital Materno-Infantil. E.L.M. Secretar&iacute;a de Salud Jalisco. Guadalajara, Jalisco. M&eacute;xico.    <br><sup>5</sup>Departamento de Ciencias de la Salud y Ecolog&iacute;a Humana. Centro Universitario Costa Sur. Universidad de Guadalajara. Autl&aacute;n de Navarro, Jalisco. M&eacute;xico</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><a href="#bajo">Direcci&oacute;n para correspondencia</a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n:</b> este estudio analiza el efecto sobre el contenido de inmunoglobulinas y complemento C3 de la liofilizaci&oacute;n posterior a la pasteurizaci&oacute;n por tres m&eacute;todos diferentes en leche humana madura (LHM).    <br><b>Objetivo:</b> la liofilizaci&oacute;n es propuesta como m&eacute;todo complementario para el mantenimiento de las propiedades terap&eacute;uticas de la LHM con mayor vigencia.    <br><b>M&eacute;todos:</b> estudio descriptivo en el que se obtuvieron muestras de LHM. Al&iacute;cuotas de las muestras obtenidas se pasteurizaron por tres m&eacute;todos: 62,5 <sup>o</sup>C/30 minutos, 72 <sup>o</sup>C/15 minutos 85 <sup>o</sup>C/5 minutos, seguido de un enfriamiento r&aacute;pido a 5 <sup>o</sup>C. Despu&eacute;s, vol&uacute;menes de 30 ml de muestra pasteurizada fueron liofilizados durante un periodo de 36 horas. La determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas totales fue realizada por el m&eacute;todo Lowry. Las concentraciones de inmunoglobulinas A, G y M y el complemento C3 fueron determinadas por nefelometr&iacute;a convencional, siguiendo las instrucciones del fabricante. La significancia estad&iacute;stica se defini&oacute; como p &lt; 0,05.    <br><b>Resultados:</b> el m&eacute;todo de pasteurizaci&oacute;n de LHM con mayor retenci&oacute;n de prote&iacute;na e inmunoglobulinas fue a la temperatura de 62,5 <sup>o</sup>C, sin embargo, la pasteurizaci&oacute;n a 72 <sup>o</sup>C antes de la liofilizaci&oacute;n mostr&oacute; mayor retenci&oacute;n de inmunoglobulinas.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br><b>Conclusiones:</b> nuestros resultados sugieren que la liofilizaci&oacute;n de LHM pasteurizada es un m&eacute;todo eficiente para la conservaci&oacute;n en bancos de leche humana. Tanto la composici&oacute;n nutricional como la extensi&oacute;n de su vida &uacute;til y la aplicaci&oacute;n de los dos procesos juntos proporcionan la ventaja de mantener las propiedades terap&eacute;uticas de la leche humana para mejorar la salud del reci&eacute;n nacido en estado vulnerable, desmedro o inmunosuprimido.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Inmunoglobulinas. Leche humana. Pasteurizaci&oacute;n. Liofilizaci&oacute;n. Bancos de leche.</font></p> <hr size="1">     <p><font face="Verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Introduction:</b> This study analyzes the effect on the content of immunoglobulins and C3 complement of freeze drying after pasteurization by three different methods in mature human milk (MHM).    <br><b>Objective:</b> Freeze drying is proposed as a complementary method for the maintenance of MHM therapeutic properties with greater validity.    <br><b>Methods:</b> This was a descriptive study in which MHM samples were obtained. Next, aliquots of the samples obtained were pasteurized by three methods: 62.5 <sup>o</sup>C/30 minutes, 72 <sup>o</sup>C/15 minutes, 85 <sup>o</sup>C/5 minutes, followed by a rapid cooling at 5 <sup>o</sup>C. Then, 30 ml volumes of pasteurized sample were freeze-dried over a period of 36 hours. Total protein determination was performed by the Lowry method. The concentrations of immunoglobulins A, G and M, and complement C3, were determined by conventional nephelometric technique following the manufacturer's instructions. Statistical significance was defined as p &lt; 0.05.    <br><b>Results:</b> The method of pasteurization of MHM with increased protein and immunoglobulin retention was at 62.5 <sup>o</sup>C, however, pasteurization at 72 <sup>o</sup>C before freeze-drying showed better retention of immunoglobulins.    <br><b>Conclusions:</b> Our results suggest that the freeze-drying of pasteurized MHM is a suitable method for the conservation in human milk banks. Both the nutritional composition and the extension of its validity and the application of the two processes together provide the advantage of maintaining the therapeutic properties of human milk to improve the health of the newborn in a vulnerable, impaired or immunosuppressed state.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Key words:</b> Immunoglobulins. Human milk. Pasteurization. Freeze drying. Milk banks.</font></p> <hr size="1">     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El contenido de macronutrientes, micronutrientes y componentes bioactivos de la leche humana (LH) es importante desde el punto de vista conceptual en el que es considerada la "nutrici&oacute;n perfecta" para los reci&eacute;n nacidos y lactantes (1,2), incluyendo el reci&eacute;n nacido prematuro (3). Es reconocida como el est&aacute;ndar de oro de la alimentaci&oacute;n infantil, debido a su contenido de prote&iacute;nas, l&iacute;pidos y carbohidratos y la relaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n entre estos componentes, la cual var&iacute;a de acuerdo al tiempo de evoluci&oacute;n de la lactancia (4).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La LH es un biofluido bioqu&iacute;micamente complejo y considerablemente variable que, a trav&eacute;s de la evoluci&oacute;n, ha adquirido las propiedades necesarias para alimentar y proteger de la enfermedad a la especie humana en la etapa temprana de la vida, mientras que su propio sistema inmunitario madura (2,5,6). La LH que produce la madre despu&eacute;s del parto y durante el periodo de lactancia se clasifica en tres estadios: calostro (de uno a seis d&iacute;as), leche transicional (de siete a diez d&iacute;as) y leche madura (m&aacute;s de diez d&iacute;as), que corresponde a la composici&oacute;n est&aacute;ndar con menor variaci&oacute;n nutrimental, en especial en sus macronutrientes (2,4).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La LH contiene elementos bioactivos, entre los que se identifican las inmunoglobulinas, cuya s&iacute;ntesis tiene origen en el epitelio mamario o c&eacute;lulas mamarias. Son secretados en forma soluble y son transportados por receptores a trav&eacute;s del epitelio mamario hacia el suero materno, y su importancia radica en que tienen impacto sustancial en procesos biol&oacute;gicos y funciones corporales (2).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se han identificado diferentes componentes bioactivos en la LH, principalmente inmunoglobulinas, antioxidantes, interleucinas 1, 6, 8 y 10, factor de crecimiento transformante, inhibidores de proteasa de leucocitos, defensina-1, mol&eacute;culas de adhesi&oacute;n, citocinas, quimiocinas, factores de crecimiento, hormonas, factores antimicrobianos, oligosac&aacute;ridos y mucinas (1). Estos son secretados en forma soluble, producto de la actividad celular en el tejido mamario, y poseen potencial para regular la diferenciaci&oacute;n y maduraci&oacute;n de c&eacute;lulas B, fuente exclusiva de inmunoglobulinas (1,4).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En el contexto de la respuesta inmune del reci&eacute;n nacido y lactante se ha demostrado que el consumo de LH favorece su protecci&oacute;n inmunol&oacute;gica. En este sentido, el contenido de inmunoglobulinas se ha estudiado debido a que adquiere especial importancia por la actividad biol&oacute;gica que desempe&ntilde;an. Las inmunoglobulinas A, G y M (IgA, IgG e IgM, respectivamente) y la fracci&oacute;n del complemento C3 participan en la protecci&oacute;n inmunol&oacute;gica del lactante (7).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En LH madura (LHM) se estiman concentraciones para IgA, IgG e IgM de 1,0 a 2,0 g/l, 0,16 a 0,66 g/l y 0,04 a 0,15 g/l respectivamente (7), las cuales tienen funciones particulares. La IgA se produce en mayor cantidad espec&iacute;ficamente en el calostro, su actividad se relaciona con evitar que los ant&iacute;genos lleguen a la pared intestinal y neutralizar la acci&oacute;n de toxinas en la mucosa intestinal (2), y la &uacute;nica fuente de obtenci&oacute;n para el reci&eacute;n nacido es a trav&eacute;s de la LH. La IgM posee capacidad neutralizante, aglutinante y precipitante, fija el complemento por la v&iacute;a cl&aacute;sica y activa la respuesta inmune, mientras que la IgG es capaz de atravesar membranas biol&oacute;gicas, es trascendente en la respuesta inmune humoral y la defensa contra microorganismos, tiene la capacidad de neutralizar virus y posee actividad antimicrobiana (7).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Por otra parte, el componente C3 del complemento tiene la habilidad de producir lisis bacteriana al unirse con inmunoglobulinas, posee actividad ops&oacute;nica, quimiot&aacute;ctica y bacteriol&iacute;tica, y su concentraci&oacute;n en el suero materno es de 436 &plusmn; 118 mg/l, con un rango de 240 a 800 mg/l (8).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica se presenta la necesidad de implementar una nutrici&oacute;n a base de LH para los lactantes cuya condici&oacute;n nutricia es vulnerable: reci&eacute;n nacidos con bajo peso para su edad gestacional (3) y lactantes en desmedro o con otras enfermedades en las cuales no es factible la lactancia hom&oacute;loga. En la actualidad no se tiene al alcance una f&oacute;rmula artificial con propiedades y componentes bioactivos id&eacute;nticos a los de la LH. Una estrategia a seguir es la alimentaci&oacute;n con LH heter&oacute;loga a trav&eacute;s de su conservaci&oacute;n en bancos de LH, sin embargo, el reto actual es conservar los componentes bioactivos en cantidad y calidad recomendables el mayor tiempo posible.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los bancos de LH son un modelo estrat&eacute;gico de atenci&oacute;n y prevenci&oacute;n a la salud de los lactantes, instituido por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud, en los que existe reserva de LH con la calidad e inocuidad recomendadas (9). Con esta finalidad, se han desarrollado procesos biotecnol&oacute;gicos que incrementan la vigencia y aseguran la inocuidad de la LH. La metodolog&iacute;a espec&iacute;fica est&aacute;ndar consiste en la pasteurizaci&oacute;n por calentamiento sostenido (proceso a 62,5 <sup>o</sup>C por 30 minutos), con enfriamiento inmediato a temperatura menor de 12 <sup>o</sup>C y posterior congelamiento a -20 <sup>o</sup>C durante un periodo m&aacute;ximo de seis meses (10).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">En diversos estudios se reportan resultados controversiales con respecto al mantenimiento de los componentes bioactivos de la LH despu&eacute;s de la pasteurizaci&oacute;n, mientras que con respecto al contenido de inmunoglobulinas no se ha establecido cu&aacute;l es el mejor proceso de conservaci&oacute;n.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En este estudio se analiza el efecto en el contenido de inmunoglobulinas y complemento C3 de tres m&eacute;todos de pasteurizaci&oacute;n, y se propone como m&eacute;todo complementario la liofilizaci&oacute;n, para incrementar las propiedades terap&eacute;uticas de la LHM con mayor tiempo de vigencia e inocuidad.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>MUJERES DONANTES DE MUESTRA DE LHM</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En este estudio descriptivo se seleccion&oacute; una muestra representativa de cuatro mujeres en etapa de puerperio, las cuales firmaron un consentimiento informado para participar en el estudio y cumplieron los siguientes criterios: secundigestas, edad de 25 a 35 a&ntilde;os, &iacute;ndice de masa corporal de 18,5 a 24,9 kg/m<sup>2</sup>, originarias del occidente de M&eacute;xico, sin parentesco de consanguinidad entre ellas y sin signos ni s&iacute;ntomas de enfermedades, con historia cl&iacute;nica de evoluci&oacute;n de la gestaci&oacute;n, trabajo de parto, parto y posparto fisiol&oacute;gicos, reci&eacute;n nacido a t&eacute;rmino (37 a 41 semanas) con peso adecuado para su edad gestacional, evaluado cl&iacute;nicamente como saludable y con lactancia al seno materno exclusiva.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>EXAMEN E HISTORIA CL&Iacute;NICA DE LAS MADRES Y SUS RECI&Eacute;N NACIDOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El protocolo y la recolecci&oacute;n de la LH fueron revisados y aprobados por el Comit&eacute; de &Eacute;tica y Bioseguridad del del Hospital Materno-Infantil E.L.M. de la Secretar&iacute;a de Salud Jalisco. Todas las mujeres y sus reci&eacute;n nacidos que cumplieron con los criterios de estudio fueron evaluados cl&iacute;nicamente por un m&eacute;dico especialista, ginecoobstetra y perinat&oacute;logo, respectivamente, quienes llevaron a cabo la historia cl&iacute;nica completa, evaluaci&oacute;n del estatus de salud general y medici&oacute;n de signos vitales.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>RECOLECCI&Oacute;N DE LA LHM</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Durante el periodo de lactancia de 15 a 30 d&iacute;as posparto, cada madre, en tres d&iacute;as consecutivos, don&oacute; un volumen total de 500 ml de LHM, que se recolect&oacute; por la ma&ntilde;ana (4). En condiciones de asepsia de rutina, la leche se extrajo utilizando una bomba de extracci&oacute;n mec&aacute;nica (Freestyle<sup>&reg;</sup> Breastpump<sup>&copy;</sup> 2016 Medela, Inc., McHenry, Il), previo masaje de acuerdo a la t&eacute;cnica de Marmet (11). Porciones de las muestras obtenidas se analizaron y pasteurizaron inmediatamente.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><b>PROCESOS DE CONSERVACI&Oacute;N APLICADOS A LAS MUESTRAS DE LHM</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Vol&uacute;menes de 50 ml de la LHM obtenida se pasteurizaron por triplicado con tres m&eacute;todos: 62,5 <sup>o</sup>C durante 30 minutos, 72 <sup>o</sup>C durante 15 minutos y 85 <sup>o</sup>C durante cinco minutos (en frascos de boro silicato), seguido de un enfriamiento r&aacute;pido en ba&ntilde;o mar&iacute;a inverso a una temperatura de 5 <sup>o</sup>C. La pasteurizaci&oacute;n a 62,5 <sup>o</sup>C durante 30 minutos se realiz&oacute; en un pasteurizador PAS 10000-HSC (HSC Neonatolog&iacute;a; HSC, D&eacute;cines-Charpieu, Francia); para la pasteurizaci&oacute;n con las temperaturas de 72 y 85 <sup>o</sup>C se utiliz&oacute; ba&ntilde;o de agua (HB 4000 Digit, Heidolph Heating Bath HB eco, Suarlee, B&eacute;lgica).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">De cada muestra pasteurizada, vol&uacute;menes de 30 ml fueron liofilizados durante un periodo de 36 horas en el liofilizador Freezone 4.5L modelo 7750041 (FreeZone<sup>&reg;</sup> 4.5 Liter Freeze Dry Systems Labconco Corporation, Kansas City, Estados Unidos, MO 64132-2696) a temperatura de -55 <sup>o</sup>C, recolectando el polvo de leche para el an&aacute;lisis de componentes biol&oacute;gicos (12).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>AN&Aacute;LISIS DE COMPONENTES BIOACTIVOS EN LA LHM</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas se realiz&oacute; en las muestras sin tratamiento y en las muestras pasteurizadas por el m&eacute;todo de Lowry (13), mientras que la concentraci&oacute;n de inmunoglobulinas y C3 se realiz&oacute; en cada muestra por triplicado, en tres momentos: a) inicial o sin tratamiento; b) despu&eacute;s de la pasteurizaci&oacute;n; y c) despu&eacute;s de la liofilizaci&oacute;n. Se emple&oacute; la t&eacute;cnica de nefelometr&iacute;a convencional, la cual se basa en la cuantificaci&oacute;n de la luz dispersada por complejos ant&iacute;geno-anticuerpo formados durante la inmunoprecipitaci&oacute;n en fase l&iacute;quida (14), con rangos de medici&oacute;n de 0,21 a 5,9 g/l para IgA, de 2,8 a 27,6 g/l para IgG, de 0,23 a 3,77 g/l para IgM, y de 15,5 a 502 mg/dl para C3 (Randox Laboratories; Antrim, Irlanda del Norte, Reino Unido).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Las muestras liofilizadas fueron reconstituidas con aproximadamente 9 ml que corresponden al diluyente (agua inyectable) por cada gramo de leche en polvo, para restablecer la humedad original de la LHM antes de su procesamiento.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">De las muestras pasteurizadas y liofilizadas reconstituidas, se centrifugaron 1,5 ml a 3.000 rpm durante diez minutos a 4 <sup>o</sup>C. En el sobrenadante obtenido se analizaron los componentes bioactivos. El an&aacute;lisis de prote&iacute;nas se realiz&oacute; en la muestra completa.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>AN&Aacute;LISIS ESTAD&Iacute;STICO</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El an&aacute;lisis de las variables se realiz&oacute; comparando los resultados de cada m&eacute;todo de pasteurizaci&oacute;n o liofilizaci&oacute;n con la evaluaci&oacute;n inicial, con los paquetes estad&iacute;sticos IBM-SPSS v21 (SPSS Inc., Chicago, IL, Estados Unidos), Statgraphics Centurion XVII (2010 StatPoint Technologies, Inc., Estados Unidos) y GraphPad Prism v6.00.283 (GraphPad Software, Inc., La Jolla, CA, Estados Unidos). Prueba U de Mann-Whitney. Las diferencias significativas se definieron como p &lt; 0,05.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Este grupo de mujeres donantes de LHM con edad de 30 a&ntilde;os en promedio presentaron producci&oacute;n espont&aacute;nea y fisiol&oacute;gica de leche y estado saludable de ellas y sus reci&eacute;n nacidos, con peso de 3,2 kg en promedio al nacimiento.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos del contenido de prote&iacute;na total muestran tendencia a la disminuci&oacute;n sin diferencia entre las concentraciones de 17,60 &plusmn; 2,77 g/l y 16,57 &plusmn; 2,86 g/l, cuando se incrementa la temperatura de pasteurizaci&oacute;n (de 62,5 a 85 <sup>o</sup>C) (<a target="_blank" href="/img/revistas/nh/v34n4/21_original_tabla1.jpg">Tabla I</a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El contenido de inmunoglobulinas A, G y M y C3 en la LHM tiende a disminuir con los tres procesos de pasteurizaci&oacute;n (62,5, 72 y 85 <sup>o</sup>C) con respecto al contenido inicial (<a target="_blank" href="/img/revistas/nh/v34n4/21_original_fig1.jpg">Fig. 1A-D</a>). Mientras que con el proceso de liofilizaci&oacute;n despu&eacute;s de la pasteurizaci&oacute;n a 62,5, 72 y 85 <sup>o</sup>C, se observ&oacute; disminuci&oacute;n en el contenido de IgG e IgM respecto a su concentraci&oacute;n inicial, con menor p&eacute;rdida en el proceso de pasteurizaci&oacute;n a 72 <sup>o</sup>C, comparado con la pasteurizaci&oacute;n a 62,5 <sup>o</sup>C y 85 <sup>o</sup>C (<a target="_blank" href="/img/revistas/nh/v34n4/21_original_fig1.jpg">Fig. 1F y G</a>), al mismo tiempo que los contenidos de IgA y C3 se mantienen constantes (<a target="_blank" href="/img/revistas/nh/v34n4/21_original_fig1.jpg">Fig. 1E y H</a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Proporcionalmente, la temperatura de pasteurizaci&oacute;n a 62,5 <sup>o</sup>C mostr&oacute; mejor eficiencia en la retenci&oacute;n de prote&iacute;nas e inmunoglobulinas, con el siguiente patr&oacute;n de comportamiento: 62,5 <sup>o</sup>C mejor que 72 <sup>o</sup>C, y este a su vez mejor que 85 <sup>o</sup>C, para los componentes analizados, prote&iacute;nas totales, IgA e IgM, con excepci&oacute;n de IgG, que present&oacute; el mejor rendimiento a 72 <sup>o</sup>C (<a target="_blank" href="/img/revistas/nh/v34n4/21_original_tabla2.jpg">Tabla II</a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Adicionalmente, en la <a target="_blank" href="/img/revistas/nh/v34n4/21_original_tabla2.jpg">tabla II</a> se muestran los porcentajes de retenci&oacute;n reportados en estudios previos, en los que se evalu&oacute; el contenido de prote&iacute;nas e inmunoglobulinas despu&eacute;s de procesos de pasteurizaci&oacute;n similares a los aplicados en este estudio. La retenci&oacute;n evaluada representa la cantidad en masa de los componentes bioactivos despu&eacute;s del proceso de pasteurizaci&oacute;n; en este contexto es la recuperaci&oacute;n total en cantidad y calidad recomendable.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Para IgA e IgM, la estimaci&oacute;n de la combinaci&oacute;n pasteurizaci&oacute;n a 72 <sup>o</sup>C durante 15 minutos y liofilizaci&oacute;n mostr&oacute; la mejor retenci&oacute;n, del 82,1% y 69,8% respectivamente.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La proporci&oacute;n por litro de LHM de componentes bioactivos evaluados se muestra en la <a href="#t3">tabla III</a>, donde se observan el 12,84% y el 3,09% en total y de inmunoglobulinas, respectivamente. Se muestra una comparaci&oacute;n adicional con estudios previos.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><a name="t3"><img src="/img/revistas/nh/v34n4/21_original_tabla3.jpg"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En este estudio se pondera el contenido de los componentes bioactivos de la LHM con base en que actualmente se han desarrollado procesos biotecnol&oacute;gicos que incrementan su vigencia y aseguran la inocuidad, ya sea por pasteurizaci&oacute;n o por liofilizaci&oacute;n, mientras que se desconoce su efecto en la disponibilidad de sus componentes biol&oacute;gicamente activos.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En este contexto, sugerimos una estrategia en el uso conjunto de ambos m&eacute;todos alternando diferentes temperaturas y tiempos en la pasteurizaci&oacute;n, con la propuesta de implementar la liofilizaci&oacute;n como m&eacute;todo complementario para extender la vigencia y asegurar la inocuidad, al mismo tiempo que se conservan las propiedades terap&eacute;uticas de la LH en relaci&oacute;n al contenido de prote&iacute;nas, inmunoglobulinas y complemento C3, y con la ventaja de que una vez liofilizada la LH, el m&eacute;dico pediatra puede adecuar el tratamiento en contenido de componentes bioactivos de acuerdo a las necesidades nutricias y terap&eacute;uticas del lactante.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En las muestras analizadas de nuestro grupo de estudio encontramos similitud para la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas, de 17,24 a 16,57 g/l al inicio y despu&eacute;s del proceso de pasteurizaci&oacute;n, independientemente de la temperatura de exposici&oacute;n. Estos niveles son mayores a los publicados previamente por Michaelsen en 1990, qui&eacute;n report&oacute; concentraciones de 9 a 12 g/l de prote&iacute;nas (15). Otros autores reportan que el contenido total de prote&iacute;nas que incluyen las inmunoglobulinas se reduce por la pasteurizaci&oacute;n (16).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">A este respecto, se han identificado m&aacute;s de 400 prote&iacute;nas diferentes en la leche humana y de acuerdo a sus caracter&iacute;sticas bioqu&iacute;micas se dividen en tres grupos: case&iacute;nas, suero de leche y prote&iacute;nas de mucina, con funciones sustanciales como actividad inmunomoduladora y antimicrobiana, absorci&oacute;n y metabolismo de nutrientes y precursoras de diferentes p&eacute;ptidos biol&oacute;gicamente activos (2).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Otros estudios reportan diferentes niveles en el contenido de prote&iacute;nas, y se observan divergencias entre mujeres lactantes, hora y espacio de tiempo entre lactadas. En este sentido, el tiempo y la etapa de producci&oacute;n de LHM por la gl&aacute;ndula mamaria definen sus caracter&iacute;sticas bromatol&oacute;gicas y nutrimentales. A este respecto, y no obstante que estandarizamos la obtenci&oacute;n de las muestras de LHM con los criterios de inclusi&oacute;n, en este estudio consideramos como una limitaci&oacute;n el n&uacute;mero de las donadoras voluntarias, por lo que sugerimos la ampliaci&oacute;n en el n&uacute;mero de muestras a estudiar en nuevos estudios.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En este estudio, la variaci&oacute;n en temperatura/tiempo de los tres m&eacute;todos de pasteurizaci&oacute;n aplicados a la LHM no tiene efecto en el perfil de inmunoglobulinas y complemento C3 evaluado. Sin embargo, cuando se aplic&oacute; el proceso de liofilizaci&oacute;n observamos disminuci&oacute;n en los niveles de IgG e IgM.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Tomando en cuenta que la diversidad en la composici&oacute;n de la LHM en el escenario de la lactancia es dependiente de la etapa y duraci&oacute;n de esta, los estudios que eval&uacute;an el contenido de inmunoglobulinas reportan resultados controversiales (16), mostrando niveles de 1,0 a 2,0 g/l para IgA, de 0,16 a 0,66 g/l para IgG y de 0,04 a 0,15 g/l para IgM en LHM (16). A este respecto, en las muestras incluidas en este estudio encontramos concentraciones parcialmente similares (IgA 1,29 g/l, IgG 0,57 g/l e IgM 1,56 g/l), mientras que para el complemento C3 se reportan concentraciones de 19,93 &plusmn; 1,63 mg/dl para LH en etapa de calostro (16) y 16 mg/dl en LHM (17), que contrastan con los niveles encontrados en nuestro estudio 9,75 &plusmn; 2,62 mg/dl.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Asimismo, observamos que la concentraci&oacute;n de inmunoglobulinas A, G y M y C3 en la LHM tiende a la disminuci&oacute;n con los tres procesos de pasteurizaci&oacute;n con respecto a las concentraciones iniciales, cuando se incrementa la temperatura de pasteurizaci&oacute;n de 62,5 a 72 y 85 <sup>o</sup>C.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Este efecto se puede explicar debido a que la desnaturalizaci&oacute;n de las inmunoglobulinas se observa en un rango de temperatura de 62,5 a 81,7 <sup>o</sup>C (18); el orden de termoestabilidad puede ser atribuido a sus diferentes pesos moleculares, teniendo en cuenta que un mayor peso molecular implica menor termorresistencia y se puede referenciar en el siguiente orden: IgG &gt; IgA &gt; IgM, siendo la IgG m&aacute;s termorresistente e IgM, la inmunoglobulina m&aacute;s termol&aacute;bil.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n de la retenci&oacute;n como un indicador de la disponibilidad de los componentes bioactivos en la LHM mostr&oacute; 93,7%, 78,9%, 61,5% y 89,7% para IgA, IgG, IgM y complemento C3, respectivamente. Estos porcentajes son mayores a los reportados en otros estudios en condiciones similares, a excepci&oacute;n de lo reportado por Evans y cols. en 1978 para los niveles de IgA con pasteurizaci&oacute;n a 62,5 <sup>o</sup>C, por Goldblum y cols. en 1984 y por Chantry y cols. en 2009, con pasteurizaci&oacute;n a 72 <sup>o</sup>C (16,19-21).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">A este respecto, en la evaluaci&oacute;n de retenci&oacute;n de inmunoglobulinas en la LH despu&eacute;s de un proceso de pasteurizaci&oacute;n los reportes son recientes pero escasos, y la informaci&oacute;n obtenida por otros autores (16,19,21-23) es de 27 a 67%. Espec&iacute;ficamente, para IgM en la pasteurizaci&oacute;n a 62,5 <sup>o</sup>C durante 30 minutos se reporta p&eacute;rdida significativa con respecto a la concentraci&oacute;n inicial (16,22-24). La importancia de la IgM radica en que, en respuesta a un est&iacute;mulo antig&eacute;nico, r&aacute;pidamente incrementa su concentraci&oacute;n y se caracteriza por poseer capacidad neutralizante, precipitante y aglutinante (25).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Similarmente, en este estudio observamos mayor variaci&oacute;n en el contenido de IgM despu&eacute;s de los procesos de pasteurizaci&oacute;n y liofilizaci&oacute;n, lo que se explica por la caracter&iacute;stica particular con respecto a su peso molecular, que le confiere menor termoestabilidad que IgA e IgG (18). A este respecto, otros estudios reportan que la pasteurizaci&oacute;n afecta los niveles de IgM en grado variable, sin cuantificar el nivel de degradaci&oacute;n. Sin embargo, en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica se ha confirmado que, en su mayor parte, las propiedades favorables de la leche materna permanecen incluso despu&eacute;s de la pasteurizaci&oacute;n (16).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Por otra parte, la funci&oacute;n, concentraci&oacute;n y conservaci&oacute;n de la IgA en la LH se reporta en un mayor n&uacute;mero de estudios con respecto a otras inmunoglobulinas, por lo que en la literatura cient&iacute;fica existen diversos estudios con resultados controversiales (16). Estos contrastes se pueden explicar por una parte porque los m&eacute;todos aplicados en la pasteurizaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de los componentes bioactivos difieren en caracter&iacute;sticas de tecnolog&iacute;a e infraestructura y, por otra parte, por el momento hist&oacute;rico-social en que fueron evaluados, debido a que existen reportes a lo largo de tres d&eacute;cadas.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Seg&uacute;n los resultados de este estudio, podemos sugerir que la pasteurizaci&oacute;n a 62,5 <sup>o</sup>C durante 30 minutos es el proceso que conserva en mayor proporci&oacute;n el contenido de la suma de los componentes bioactivos de la LHM evaluados, mientras que la liofilizaci&oacute;n es aplicable de manera independiente.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los m&eacute;todos aplicados a la conservaci&oacute;n de la LH deben garantizar su inocuidad debido a que se ha reportado que puede ser un veh&iacute;culo de transmisi&oacute;n de virus (26), al mismo tiempo que su importancia es reconocida porque se considera que posee propiedades antioxidantes, con la limitante de que var&iacute;an de acuerdo a la historia obst&eacute;trica y edad de las madres lactantes (27).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Por ello, es recomendable ampliar la informaci&oacute;n disponible en otros estudios en los que se integren nuevas tecnolog&iacute;as y se eviten sesgos potenciales, con el objetivo de estandarizar la valoraci&oacute;n del efecto conjunto de la pasteurizaci&oacute;n y liofilizaci&oacute;n de la LH, al mismo tiempo que se garantice su calidad biol&oacute;gica e inocuidad.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, nuestros resultados sugieren que la liofilizaci&oacute;n de LHM pasteurizada es un m&eacute;todo eficiente para la conservaci&oacute;n en bancos de leche humana. Tanto en su composici&oacute;n nutricional como en la extensi&oacute;n de la vida de anaquel, la aplicaci&oacute;n de los dos procesos proporciona la ventaja de mantener las propiedades terap&eacute;uticas de la leche humana para mejorar la salud del reci&eacute;n nacido.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Agradecemos el apoyo otorgado por el Posgrado en Ciencias en Procesos Biotecnol&oacute;gicos del Centro Universitario de Ciencias Exactas e Ingenier&iacute;as (CUCEI) de la Universidad de Guadalajara y el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACYT).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Bibliograf&iacute;a</b></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">1. Ballard O, Morrow AL. Human milk composition: Nutrients and bioactive factors. Pediatr Clin North Am 2013;60(1):49-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961580&pid=S0212-1611201700040002100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">2. Andreas NJ, Kampmann B, Le-Doare KM. Human breast milk: A review on its composition and bioactivity. Early Hum Dev 2015;91(11):629-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961582&pid=S0212-1611201700040002100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">3. Torres G, Arg&eacute;s L, Alberto M, Figueroa R. Leche humana y nutrici&oacute;n en el prematuro peque&ntilde;o. Nutr Hosp 2004;19(4):236-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961584&pid=S0212-1611201700040002100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">4. Ren X, Yang Z, Shao B, Yin SA, Yang X. B-vitamin levels in human milk among different lactation stages and areas in China. PLoS One 2015;10(7): e0133285.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961586&pid=S0212-1611201700040002100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">5. Sharma AA, Jen R, Butler A, Lavoie PM. The developing human preterm neonatal immune system: A case for more research in this area. Clin Immunol 2012;145(1):61-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961588&pid=S0212-1611201700040002100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">6. Cordero MJA, Ba&ntilde;os NM, Garc&iacute;a LB, Villar NM, Barrilao RG, L&oacute;pez AMS. Lactancia materna como m&eacute;todo para prevenir alteraciones cardiovasculares en la madre y el ni&ntilde;o. Nutr Hosp 2015;31(n05):1936-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961590&pid=S0212-1611201700040002100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">7. Goldman AS. The immune system of human milk: Antimicrobial, antiinflammatory and immunomodulating properties. Pediatr Infect Dis J 1993;12(8):664-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961592&pid=S0212-1611201700040002100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">8. Tr&eacute;goat V, Montagne P, Cuilli&egrave;re M-L, B&eacute;n&eacute; M-C, Faure G. C3/C4 concentration ratio reverses between colostrum and mature milk in human lactation. J Clin Immunol 1999;19(5):300-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961594&pid=S0212-1611201700040002100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">9. Arnold LD, Larson E. Immunologic benefits of brest milk in relation to human milk banking. Am J Infect Control 1993;21(5):235-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961596&pid=S0212-1611201700040002100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">10. Carrat&ugrave; B, Ambruzzi AM, Fedele E, Sanzini E. Human milk banking: Influence of different pasteurization temperatures on levels of protein sulfur amino acids and some free amino acids. J Food Sci 2005;70(6):c373-c5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961598&pid=S0212-1611201700040002100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">11. Marmet C. Manual expression of breast milk: Marmet technique. Breastfeeding Information Guide 2000:41-2.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961600&pid=S0212-1611201700040002100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">12. Franks F. Freeze-drying of bioproducts: Putting principles into practice. Eur J Pharm Biopharm 1998;45(3):221-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961602&pid=S0212-1611201700040002100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">13. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J biol Chem 1951;193(1):265-75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961604&pid=S0212-1611201700040002100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">14. Montagne P, Laroche P, Bessou T, Cuilli&egrave;re ML, Varcin P, Duheille J. Measurement of eleven serum proteins by microparticle-enhanced nephelometric immunoassay. CCLM 1992;30(4):217-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961606&pid=S0212-1611201700040002100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">15. Michaelsen KF, Skafte L, Badsberg JH, J&oslash;rgensen M. Variation in macronutrients in human bank milk: Influencing factors and implications for human milk banking. J Pediatr Gastroenterol Nutr 1990;11(2):229-39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961608&pid=S0212-1611201700040002100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">16. Peila C, Moro GE, Bertino E, Cavallarin L, Giribaldi M, Giuliani F, et al. The effect of holder pasteurization on nutrients and biologically-active components in donor human milk: A review. Nutrients 2016;02;8(8).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961610&pid=S0212-1611201700040002100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">17. Jagadeesan V, Reddy V. C3 in human milk. Acta Paediatr Scand 1978;67(2): 237-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961612&pid=S0212-1611201700040002100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">18. Mainer G, S&aacute;nchez L, Ena J, Calvo M. Kinetic and thermodynamic parameters for heat denaturation of bovine milk IgG, IgA and IgM. J Food Sci 1997;62(5): 1034-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961614&pid=S0212-1611201700040002100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">19. Evans T, Ryley H, Neale L, Dodge J, Lewarne V. Effect of storage and heat on antimicrobial proteins in human milk. Arch Dis Child 1978;53(3):239-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961616&pid=S0212-1611201700040002100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">20. Goldblum RM, Dill CW, Albrecht TB, Alford ES, Garza C, Goldman AS. Rapid high-temperature treatment of human milk. J Pediatr 1984;104(3):380-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961618&pid=S0212-1611201700040002100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">21. Chantry CJ, Israel-Ballard K, Moldoveanu Z, Peerson J, Coutsoudis A, Sibeko L, et al. Effect of flash-heat treatment on immunoglobulins in breastmilk. J Acquir Immune Defic Syndr (1999) 2009;51(3):264.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961620&pid=S0212-1611201700040002100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">22. Koenig &Aacute;, De Albuquerque Diniz EM, Barbosa SFC, Vaz FAC. Immunologic factors in human milk: The effects of gestational age and pasteurization. J Hum Lact 2005;21(4):439-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961622&pid=S0212-1611201700040002100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">23. Goldsmith SJ, Dickson JS, Barnhart HM, Toledo RT, Eiten-Miller RR. IgA, IgG, IgM and lactoferrin contents of human milk during early lactation and the effect of processing and storage. J Food Prot 1983;46(1):4-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961624&pid=S0212-1611201700040002100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">24. Ford J, Law B, Marshall VM, Reiter B. Influence of the heat treatment of human milk on some of its protective constituents. J Pediatr 1977;90(1):29-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961626&pid=S0212-1611201700040002100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">25. Capasso L, Borrelli AC, Parrella C, Lama S, Ferrara T, Coppola C, et al. Are IgM-enriched immunoglobulins an effective adjuvant in septic VLBW infants. Ital J Pediatr 2013;39:63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961628&pid=S0212-1611201700040002100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">26. Garc&iacute;a-Loygorri MC, De Luis D, Torreblanca B, March GA, Bachiller MR, Eiros JM. Breast milk as a vehicle of transmission of virus. Nutr Hosp 2015;32(1):4-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961630&pid=S0212-1611201700040002100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">27. Castillo-Castaneda PC, Gaxiola-Robles R, M&eacute;ndez-Rodr&iacute;guez LC, Zenteno-Savin T. Antioxidant defences in breast milk in relation to number of pregnancies and age of mothers. Nutr Hosp 2014;30(3):540-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961632&pid=S0212-1611201700040002100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">28. Vieira AA, Soares FVM, Pimenta HP, Abranches AD, Moreira MEL. Analysis of the influence of pasteurization, freezing/thawing, and offer processes on human milk's macronutrient concentrations. Early Hum Dev 2011;87(8):577-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961634&pid=S0212-1611201700040002100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">29. Gibbs JH, Fisher C, Bhattacharya S, Goddard P, Baum J. Drip breast milk: Its composition, collection and pasteurization. Early Hum Dev 1977;1(3):227-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961636&pid=S0212-1611201700040002100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">30. Czank C, Prime DK, Hartmann B, Simmer K, Hartmann PE. Retention of the immunological proteins of pasteurized human milk in relation to pasteurizer design and practice. Pediatr Res 2009;66(4):374-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961638&pid=S0212-1611201700040002100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">31. Chang J-C, Chen C-H, Fang L-J, Tsai C-R, Chang Y-C, Wang T-M. Influence of prolonged storage process, pasteurization, and heat treatment on biologically-active human milk proteins. Pediatr Neonatol 2013;54(6):360-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961640&pid=S0212-1611201700040002100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">32. Wills M, Han V, Harris D, Baum J. Short-time low-temperature pasteurisation of human milk. Early Hum Dev 1982;7(1):71-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961642&pid=S0212-1611201700040002100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">33. Akinbi H, Meinzen-Derr J, Auer C, Ma Y, Pullum D, Kusano R, et al. Alterations in the host defense properties of human milk following prolonged storage or pasteurization. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2010;51(3):347-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3961644&pid=S0212-1611201700040002100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    ]]></body>
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<body><![CDATA[<br>Boulevaard Marcelino Garc&iacute;a Barrag&aacute;n, 1421.    <br>44430 Guadalajara, Jalisco. M&eacute;xico.    <br>e-mail: <a href="mailto:agublanca@gmail.com">agublanca@gmail.com</a></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Recibido: 03/10/2016    <br>Aceptado: 10/12/2016</font></p>      ]]></body><back>
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