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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio de dos pautas de inmunosupresión tras alotrasplante límbico]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Purpose: Comparison of two immunosuppressive strategies after limbal allograft transplantation in an experimental model of ocular surface chemical burn. Methods: Twenty albino rabbits underwent corneal and limbal chemical burn with NaOH. One week later limbal transplantation was performed. Clinical assessments included measurements of epithelial defect, stromal opacity and neovascularization areas, using a computerized planimetry system 0, 7, 15, 30, 60 and 90 days after the chemical burn. Histologic examination was performed at 3 months, after sacrifice of the animals. Two immunosuppressive strategies were evaluated: topical cyclosporin A on constant dosage (group 1), and a combination of topical cyclosporin A and dexamethasone followed by a tapered dosage of topical cyclosporin A (group 2). Results: No statistical differences were observed between both groups regarding all of the variables 3 months after the chemical burn. Differences in the stromal opacity area were detected on day 7 (43.33 D.E. 4.84 vs 36.67 D.E. 3.88; p<0.01), day 15 (41.68 3 D.E..95 vs 33.6 D.E. 1.99; p<0.01), and day 30 (40.1 D.E. 5.45 vs 32.52 D.E. 7.33; p<0.05). As for the neovascularization area, differences were detected on day 7 (1.92 D.E. 0.48 vs 3.73 D.E. 1.18; p<0.01), day 15 (7.08 D.E. 1.54 vs 4.42 D.E. 1.68; p<0.01), and day 60 (4.9 D.E. 2.58 vs 9.65 D.E. 5.55; p<0.05). Conclusions: There are no long-term differences between both immunosuppressive strategies regarding all the studied variables.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><b>ARTÍCULO ORIGINAL</b></p> <hr>     <p align=center><b><font size="4">ESTUDIO DE DOS PAUTAS DE INMUNOSUPRESIÓN TRAS    <br> ALOTRASPLANTE  LÍMBICO</font></b></p>     <p align=center><b>STUDY OF TWO IMMUNOSUPPRESIVE STRATEGIES AFTER    <br> LIMBAL  ALLOGRAFT TRANSPLANTATION</b></p>     <p align=center>RODRÍGUEZ-AGIRRETXE I<sup>1</sup>, MENDICUTE J<sup>2</sup>, ALDAZÁBAL P<sup>3</sup>, GARCÍA-URQUÍA N<sup>4</sup>,&nbsp;    <br> DURÁN DE LA COLINA J<sup>5</sup></p> <table border="0" width="100%">   <tr>     <td width="48%" valign="top">     <P align=center><b>RESUMEN</b></P>     <P align=left><b>Objetivo:</b> Comparación de dos  pautas de inmunosupresión tras alotrasplante límbico en un modelo de  causticación experimental de la superficie ocular.    <br> <b>Métodos:</b> 20 conejos albinos,  sometidos a causticación corneal con compromiso limbar con NaOH y alotrasplante  límbico al cabo de una semana. Las determinaciones clínicas consistieron en la  medición del área de defecto epitelial, opacidad estromal y neovascularización corneal, mediante planimetría computerizada en los días 0, 7, 15, 30, 60 y 90  tras la causticación. El estudio histológico se realizó a los 3 meses, tras  sacrificio de los animales. Se evaluaron dos pautas de inmunosupresión:  ciclosporina A tópica a dosis constante (grupo 1) y una combinación inicial de  dexametasona y ciclosporina A tópicas, seguida por una pauta descendente de  ciclosporina A (grupo 2).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Resultados:</b> No se encontraron  diferencias estadísticas entre ambos grupos a los 3 meses en ninguna de las  variables. Se detectaron diferencias en el área de opacidad estromal en los días  7 (43,33 D.E. 4,84 vs 36,67 D.E. 3,88; p&lt;0,01), 15 (41,68 D.E. 3,95 vs 33,6 D.E. 1,99; p&lt;0,01), y 30 (40,1 D.E. 5,45 vs 32,52 D.E. 7,33; p&lt;0,05). En  cuanto al área de neovascularización, se detectaron diferencias en los días 7  (1,92 D.E. 0,48 vs 3,73 D.E. 1,18; p&lt;0,01), 15 (7,08 D.E. 1,54 vs 4,42 D.E.  1,68; p&lt;0,01), y 60 (4,9 D.E. 2,58 vs 9,65 D.E. 5,55;  p&lt;0,05).    <br> <b>Conclusiones:</b> No existen  diferencias a largo plazo entre ambas pautas de inmunosupresión en las variables  estudiadas.</P>     <P align=left><b>Palabras clave:</b> Limbus corneae, trasplante, inmunosupresión, córnea, ciclosporina A.</P>     <P align=left>&nbsp;</P>     </td>     <td width="4%" valign="top"></td>     <td width="48%" valign="top">     <P align=center><b>SUMMARY</b></P>     <P align=left><b>Purpose:</b> Comparison of two immunosuppressive strategies after limbal allograft transplantation in an experimental model of ocular surface chemical burn.    <br> <b>Methods:</b> Twenty albino rabbits underwent corneal and limbal chemical burn with NaOH. One week later limbal transplantation was performed. Clinical assessments included measurements of epithelial defect, stromal opacity and neovascularization areas, using a computerized planimetry system 0, 7, 15, 30, 60 and 90 days after the chemical burn. Histologic examination was performed at 3 months, after sacrifice of the animals. Two immunosuppressive strategies were evaluated: topical cyclosporin A on constant dosage (group 1), and a combination of topical cyclosporin A and dexamethasone followed by a tapered dosage of topical cyclosporin A (group 2).    <br> <b>Results:</b> No statistical differences were observed between both groups regarding all of the variables 3 months after the chemical burn. Differences in the stromal opacity area were detected on day 7 (43.33 D.E. 4.84 vs 36.67 D.E. 3.88; p&lt;0.01), day 15 (41.68 3 D.E..95 vs 33.6 D.E. 1.99; p&lt;0.01), and day 30 (40.1 D.E. 5.45 vs 32.52 D.E. 7.33; p&lt;0.05). As for the neovascularization area, differences were detected on day 7 (1.92 D.E. 0.48 vs 3.73 D.E. 1.18; p&lt;0.01), day 15 (7.08 D.E. 1.54 vs 4.42 D.E. 1.68; p&lt;0.01), and day 60 (4.9 D.E. 2.58 vs 9.65 D.E. 5.55; p&lt;0.05).    <br> <b>Conclusions:</b> There are no long-term differences between both immunosuppressive strategies regarding all the studied variables <i> (Arch Soc Esp Oftalmol 2003; 78: 29-34).</i></P>     <P align=left><b>Key words:</b> Limbus corneae,  transplantation, immunosuppressive, cornea, cyclosporine A.</P>     </td>   </tr> </table> <hr width="30%" align="left">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2">Recibido: 19/3/02. Aceptado: 6/11/02.    <br> Hospital Donostia. Osakidetza-Servicio Vasco de Salud. San Sebastián. Guipúzcoa.&nbsp;    <br> <sup>1</sup>&nbsp;Médico Oftalmólogo. Instituto Clínico Quirúrgico de Oftalmología (ICQO). Bilbao.&nbsp;    <br> <sup>2</sup>&nbsp;Doctor en Medicina.&nbsp;    <br> <sup>3</sup>&nbsp;Licenciado en Medicina.&nbsp;    <br> <sup>4</sup>&nbsp;Licenciada en Biología. Unidad Experimental del Hospital Donostia. San Sebastián. Guipúzcoa.&nbsp;    <br> <sup>5</sup>&nbsp;Doctor en Medicina. Instituto Clínico Quirúrgico de Oftalmología (ICQO). Bilbao.&nbsp;    <br> Comunicación presentada en el LXXVII Congreso de la S.E.O. (Barcelona 2001).    <br> Ninguno de los autores tiene intereses comerciales en el estudio.&nbsp;    <br> Proyecto subvencionado por el Ministerio de Sanidad y Consumo (FIS 99/0404) y por el Gobierno Vasco (presupuestos de sanidad 1999).   </font> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2">Correspondencia:&nbsp;    <br> Iñaki Rodríguez-Agirretxe&nbsp;    <br> C/. R. Cía. Guipuzcoana Caracas, 12, 1.º C    <br> 20011 San Sebastián&nbsp;    <br> España    <br> E-mail: <a href="mailto:irodrig@euskalnet.net">irodrig@euskalnet.net </a>&nbsp;</font> </p> <FONT  face=Arial> <HR> </FONT>     <P align=center>&nbsp;</P>     <P align=center><b>INTRODUCCIÓN</b></P>     <P align=left>Las causticaciones oculares severas, especialmente  las producidas por álcalis, constituyen entidades clínicas de difícil  tratamiento para el oftalmólogo en la actualidad. En ellas es típica una  importante afectación de la superficie ocular, caracterizada por la aparición de  defectos epiteliales persistentes, inflamación estromal y neovascularización  corneal (1,2). Este conjunto de signos indica la existencia de un daño severo  del limbo esclerocorneal (deficiencia de células madre). Dado que el limbo  esclerocorneal es el reservorio de las células primordiales (<i>stem cells</i>),  su afectación lleva consigo una regeneración epitelial corneal defectuosa (3).  Ésta es la causa de los pobres resultados alcanzados mediante la queratoplastia  en situaciones de insuficiencia límbica. Kenyon y Tseng, en 1989, describieron  el trasplante límbico, que ha constituido un gran avance en el manejo de las  causticaciones corneales severas (4). Mediante este procedimiento se trasplantan  células primordiales viables obtenidas del mismo individuo (autotrasplante  límbico) o, en situación de daño en ambos ojos, de un donante (alotrasplante  límbico) (4-6). La diferencia fundamental entre ambos procesos radica en la  posibilidad de rechazo tras el alotrasplante, la cual obliga al empleo de  inmunosupresión.</P>     <P align=left>Presentamos un estudio comparativo entre dos pautas  de inmunosupresión, tras la práctica de alotrasplantes de limbo en un modelo  experimental de causticación de la superficie ocular (7).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=center><b>SUJETOS, MATERIAL Y MÉTODOS</b></P>     <P align=left><b>Animales</b></P>     <P align=left>Se emplearon 20 conejos albinos de la raza New  Zealand, cuyos pesos oscilaron entre 1,9 y 2,6 kg, estabulados y manipulados  según la normativa vigente en la Unión Europea para uso de animales de  experimentación (86/609).</P>     <P align=left><b>Causticación</b></P>     <P align=left>Los animales fueron sometidos a una causticación  severa con NaOH (grado III de Thoft) (7). El cáustico fue aplicado sobre el  sector corneal comprendido entre 10,00 y 02,00 horas, con afectación del limbo  circundante (f<a href="#f1">ig 1</a>). La aplicación del cáustico se realizó por espacio de 1  minuto, mediante un papel de filtro Whatman® (Whatman Paper Ltd., Maidstone,  Reino Unido), humedecido con NaOH 1N. Tras la causticación, se realizó un lavado  durante 30 segundos con solución salina balanceada (BSS®, IOLAB Pharmaceuticals,  Claremont, Estados Unidos). Todo el proceso se realizó bajo anestesia general  con una mezcla de ketamina (Ketolar®, Parke Davis, El Prat de Llobregat, España)  y clorhidrato de dihidrotiacina (Rompún®, Bayer, Leverkusen,  Alemania).</P>     <P align=center><a name="f1"><img border="0" src="/img/aseo/v78n1/img/f07-01.jpg" width="494" height="323"></a>    <BR><font size="2"><i>Fig. 1. Modelo de  causticación experimental.&nbsp;</i></font></P>     <P align=left>    <br> <b>Trasplante límbico</b></P>     <P align=left>Fue practicado a la semana de la causticación, según  la técnica descrita por Kenyon y Tseng (4). Se realizó una queratectomía  superficial en el ojo receptor y, posteriormente, se extrajo el injerto limbar  en el donante (2 mm de córnea, 3 mm de conjuntiva). El injerto fue suturado  ortotópicamente mediante 3 puntos de nylon 10/0 en la zona corneal y 3 puntos de  seda virgen 8/0 en la zona conjuntival (<a href="#f2">fig. 2</a>). Todo el proceso se realizó bajo  anestesia general.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=center><a name="f2"><img border="0" src="/img/aseo/v78n1/img/f07-02.jpg" width="458" height="308"></a>    <BR><i><font size="2">Fig. 2. Alotrasplante  límbico.&nbsp;</font></i></P>     <P align=left>    <br> <b>Fotografía del segmento  anterior</b></P>     <P align=left>Fueron realizadas fotografías en los días 0, 7, 15,  30, 60 y 90 tras la causticación, bajo anestesia tópica (Colircusi anestésico  doble®, Alcon-Cusí, El Masnou, España). Las fotografías obtenidas fueron  analizadas mediante un sistema de planimetría computerizada previamente descrito  por nosotros que consistió en la proyección sobre una pantalla digitalizadora  (Drawing board II®, Calcomp Digitizer Products, Anaheim, Estados Unidos) y el  establecimiento de mediciones (7). Estas mediciones fueron calculadas mediante  un programa diseñado para tal efecto bajo MS-DOS®, Microsoft, Seattle, Estados  Unidos). El factor de escala utilizado en las mediciones fue el indicador  numérico de cada animal, de 5 mm de longitud.</P>     <P align=left><b>Sacrificio y necropsia</b></P>     <P align=left>Los animales fueron sacrificados a los 3 meses de la  causticación. Previamente al sacrificio, se extrajo el botón corneal, que fue  introducido en solución de formol tamponado al 10% para su fijación.  Posteriormente se realizaron los cortes histológicos semifinos en parafina,  obtenidos a 2 mm del limbo superior, el cual había sido marcado previamente con  un punto de seda 3/0. Para el estudio histológico se utilizó tinción de  hematoxilina-eosina.</P>     <P align=left><b>Variables</b></P>     <P align=left><i>Variables clínicas</i></P>     <P align=left>1. Área de úlcera corneal.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 2. Área de opacidad estromal.    <br> 3. Área de neovascularización corneal.</P>     <P align=left><i>Variables histológicas</i></P>     <P align=left>1. Número de capas del epitelio corneal (0=0-1,  1=2-3, 2=4-5 capas).    <br> 2. Presencia de células caliciformes (0=ausencia,  1=presencia).    <br> 3. Infiltración estromal de linfocitos (0=ausencia,  1=presencia).    <br> 4. Infiltración estromal de polimorfonucleares  (0=ausencia, 1=presencia).    <br> 5. Infiltración estromal de células plasmáticas  (0=ausencia, 1=presencia).</P>     <P align=left><b>Grupos de estudio: según la pauta de  inmunosupresión</b></P>     <P align=left><i>Grupo 1 (n=10)</i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> CsA 2% tópica, 1 gota cada 8 horas, durante 90 días  (días 7-90).</P>     <P align=left><i>Grupo 2 (n=10)    <br> </i>1. CsA 2% tópica y dexametasona 0,1% (Maxidex  colirio®, Alcon-Cusí, El Masnou, España), 1 gota de cada, cada 8 horas, durante  15 días (días 7-22).    <br> 2. CsA 2% tópica: 1 gota cada 12 horas, durante 34  días (días 23-56).    <br> 3. CsA 2% tópica: 1 gota cada 24 horas, durante 34  días (días 57-90).</P>     <P align=left><b>Preparación del colirio de CsA 2%</b></P>     <P align=left>Se preparó, en campana de flujo laminar, a partir de  la forma comercial de solución oral (Sandimmun neoral solución®, Novartis,  Barcelona, España), empleando aceite de oliva estéril como  vehículo.</P>     <P align=left><b>Estadística</b></P>     <P align=left>Los estudios estadísticos fueron realizados mediante  el programa Systat Windows® (Microsoft, Seattle, Estados Unidos). Las variables  cuantitativas fueron analizadas mediante el test t-Student y, las cualitativas,  mediante el test de Fisher.</P>     <P align=center><b>RESULTADOS</b></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left><b>Variables clínicas</b></P>     <P align=left><i>1. Área de úlcera corneal    <br> </i>No se encontraron diferencias estadísticas entre  ambos grupos en el tamaño de la úlcera corneal en ninguno de los días estudiados  (t-Student) (<a href="#t1">tabla I</a>).</P>     <P align=center><a name="t1"><img border="0" src="/img/aseo/v78n1/img/t07-01.gif" width="478" height="233"></a></P>     <P align=left><i>    <br> 2. Área de opacidad estromal    <br> </i>No existieron diferencias estadísticas entre ambos  grupos en los días 0, 60 y 90. Sin embargo el área de opacidad estromal fue  significativamente superior en el grupo 1 en los días 7 (p&lt;0,01), 15  (p&lt;0,01) y 30 (p&lt;0,05) (t-Student) (<a href="#t2">tabla II</a>).</P>     <P align=center><a name="t2"><img border="0" src="/img/aseo/v78n1/img/t07-02.gif" width="468" height="235"></a></P>     <P align=left><i>    <br> 3. Área de neovascularización corneal</i></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>Al comparar ambos grupos mediante el test t-Student,  no se detectaron diferencias en el área de neovascularización corneal en los  días 0, 30 y 90. Sin embargo, el valor de esta variable fue significativamente  superior en el grupo 1 en el día 15 (p&lt;0,01), y en el grupo 2 en los días 7  (p&lt;0,01) y 60 (p&lt;0,05) (<a href="#t3">tabla III</a>).</P>     <P align=center><a name="t3"><img border="0" src="/img/aseo/v78n1/img/t07-03.gif" width="470" height="234"></a></P>     <P align=left><b>    <br> Variables histológicas</b></P>     <P align=left><i>4. Número de capas del epitelio  corneal    <br> </i>El número de estratos del epitelio corneal fue normal  (4-5 capas) en todos los conejos de ambos grupos, no existiendo diferencias  estadísticas (test F Fisher).</P>     <P align=left><i>5. Presencia de células caliciformes    <br> </i>Sólo se detectaron en un caso en el grupo 1. No  existieron diferencias estadísticas entre ambos grupos en cuanto a la presencia  de caliciformes (test F Fisher).</P>     <P align=left><i>6. Infiltración estromal de linfocitos    <br> </i>Se observó infiltración linfocitaria estromal en un  caso en el grupo 1 frente a 4 casos en el grupo 2. No existieron diferencias  significativas entre ambos grupos en la variable estudiada (test F  Fisher).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left><i>7. Infiltración estromal de  polimorfonucleares    <br> </i>Se detectaron polimorfonucleares en un caso en el  grupo 1 y en 4 casos en el grupo 2, no existiendo diferencias estadísticas entre  ambos (test F Fisher).</P>     <P align=left><i>8. Infiltración estromal de células  plasmáticas    <br> </i>Aparecieron células plasmáticas en estroma en 2 casos  en el grupo 1 frente a los 4 casos encontrados en el grupo 2. No hubo  diferencias estadísticas entre ambos grupos (test F Fisher).</P>     <P align=center><b>DISCUSIÓN</b></P>     <P align=left>A la hora de estudiar la utilidad del alotrasplante  de limbo es necesario partir de una situación previa de deficiencia de células  madre limbares. Este cuadro, típico en las causticaciones corneales severas por  álcalis, ha sido inducido experimentalmente en este estudio mediante el empleo  de NaOH (7). Nuestro modelo experimental, al igual que el de Ormerod, emplea  papeles de filtro embebidos en cáustico pero, a diferencia de aquél, aplica  dichos papeles no sólo sobre la córnea sino también sobre el limbo circundante  (8).</P>     <P align=left>El alotrasplante de limbo es el procedimiento  quirúrgico de elección para el reestablecimiento de una superficie ocular normal  en los casos de insuficiencia límbica bilateral (5). En este procedimiento, las  células primordiales son obtenidas de donante vivo (9,10) o de cadáver (5,11).  El momento óptimo para realizar el alotrasplante no debe de ser ni en la fase  aguda tras la causticación (en la que la isquemia limbar impediría el normal  funcionamiento del injerto), ni en la fase crónica (en la que se habrían  desarrollado alteraciones irreversibles en la superficie ocular) (12,13). En  nuestro estudio hemos decidido realizar el trasplante a la semana de la  causticación pues, en nuestra experiencia y sobre el modelo experimental  descrito, es el momento óptimo (14).</P>     <P align=left>La principal desventaja del alotrasplante frente al  autotrasplante estriba en la necesidad de inmunosupresión para la profilaxis del  rechazo. Además, existen dos factores que hacen del alotrasplante de limbo un  procedimiento con elevado riesgo de rechazo: la presencia de células de  Langerhans (presentadoras de antígeno) y el elevado componente vascular limbar  (5). Sin embargo, llama la atención que, en la práctica, la incidencia de  rechazo tras este procedimiento es menor de la que cabría espera (15). A este  hecho podría contribuir la falta de una definición clara de los signos de  rechazo (tortuosidad, ingurgitación vascular y aspecto hemorrágico del injerto)  (5,16). En nuestro estudio, algunos injertos han adquirido una apariencia  edematosa y hemorrágica, con importante componente neovascular, que ha  disminuido paulatinamente a lo largo del estudio (<a href="#f3">fig. 3</a>). Estos cambios podrían  corresponder a rechazos inmunológicos o bien a los fenómenos normales de  reparación tras el alotrasplante. Asimismo, hemos constatado que en el grupo 1  estos signos aparecían hacia el día 15 y habían desaparecido en el día 60 y que,  en el grupo 2, aparecían a partir del día 30, para desaparecer en el día 90.  Esta diferencia en el tiempo pudiera ser debida al empleo del corticoide en el  grupo 2.</P>     <P align=center><a name="f3"><img border="0" src="/img/aseo/v78n1/img/f07-03.jpg" width="473" height="305"></a>    <BR><i><font size="2">Fig. 3. Injerto  edematoso, con gran ingurgitación vascular&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  y aspecto hemorrágico (posible  rechazo).&nbsp;</font></i></P>     <P align=left>&nbsp;Las pautas de inmunosupresión  empleadas en la profilaxis del rechazo tras alotrasplante límbico son muy  variadas y se basan en los conocimientos existentes en el trasplante de córnea.  Los fármacos más empleados son la CsA sistémica (5,11,17,18), CsA tópica  (11,18), prednisolona tópica (16) y dexametasona tópica (5,11). El único estudio  que compara distintas pautas de inmunosupresión es el de Xu y cols., que  encuentra resultados similares con CsA tópica al 1% y sistémica (10 mg/kg), al  mes de realizar el trasplante (18). En nuestro estudio hemos evaluado durante 3  meses dos pautas de inmunosupresión tópica, obteniendo resultados favorables  desde un punto de vista general en ambos casos. Atendiendo al área de úlcera  corneal, los resultados han sido similares mediante ambas pautas, objetivándose  una reducción progresiva en ambos grupos. En lo que respecta al área de opacidad  estromal, si bien a largo plazo los resultados fueron similares en ambos grupos,  el grupo 2 presentó menor opacidad estromal mientras se administró el  corticoide. Atendiendo al área de neovascularización, se observa que los  neovasos se detectan a la semana de la causticación en ambos grupos, son más  importantes en el grupo 1 en torno al día 15, y en el grupo 2 en torno al día  60. Asimismo, se objetiva la ausencia de diferencias entre ambos grupos en el  día 90. Una posible explicación de este hecho consistiría en que el corticoide  mantendría un menor componente neovascular, pero su supresión daría como  resultado un incremento de los neovasos por efecto rebote. Al comparar ambas  pautas en relación a las variables histológicas, se observa que, si bien la  infiltración celular fue superior en el grupo que había recibido el corticoide,  no existieron diferencias estadísticas entre ambos grupos.</P>     <P align=left>Como conclusión cabría destacar que la administración  coadyuvante de corticoide tópico no mejora los resultados a largo plazo  alcanzados con CsA tópica. De cualquier forma, el corticoide sí parece ser  responsable de una mejor evolución clínica en las primeras fases. Por tanto, su  empleo en humanos tendría como principal finalidad el alivio de la  sintomatología en las fases precoces.</P>     <P align=center><b>ABREVIATURAS</b></P>     <P align=left>CsA: ciclosporina A, Fig: figura, kg: kilogramos, n:  tamaño muestral, N: normal, NaOH: hidróxido sódico, mg: miligramos, mm:  milímetros y p: probabilidad.</P>     <P align=left>&nbsp;</P>     <P align=center><b>BIBLIOGRAFÍA</b></P>     <!-- ref --><P align=left>1. Chen JJ, Tseng SC. Corneal epithelial wound healing in partial    limbal deficiency. Invest Ophthalmol Vis Sci 1990; 31: 1301-1314.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832712&pid=S0365-6691200300010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>2. Huang AJ, Tseng SC. Corneal epithelial wound healing in the    absence of limbal epithelium. Invest Ophthalmol Vis Sci 1991; 32: 96-105. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832713&pid=S0365-6691200300010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>3. Schermer A, Galvin S, Sun TT. Differentiation-related expression    of a major 64K corneal keratin in vivo and in culture suggests limbal location    of corneal epithelial stem cells. J Cell Biol 1986; 103: 49-62. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832714&pid=S0365-6691200300010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>4. Kenyon KR, Tseng SC. Limbal autograft transplantation for ocular    surface disorders. Ophthalmology 1989; 96: 709-723. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832715&pid=S0365-6691200300010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>5. Tsai RJF, Tseng SCG. Human allograft limbal transplantation for    corneal surface reconstruction. Cornea 1994; 13: 389-400. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832716&pid=S0365-6691200300010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>6. Pfister RR. Corneal stem cell disease: concepts, categorization    and treatment by auto- and homotransplantation of limbal stem cells. CLAO J    1994; 20: 64-72. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832717&pid=S0365-6691200300010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>7. Mendicute J, Aldazábal P, Saornil MA, Emparanza J, Ostolaza JI,    Durán JA. Diseño de un modelo experimental de causticación corneal con    compromiso límbico (grado III, Thoft). Arch Soc Esp Oftalmol 1997; 72: 49-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832718&pid=S0365-6691200300010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>8. Ormerod LD, Abelson MB, Kenyon KR. Standard models of corneal    injury using alkali-immersed filter discs. Invest Ophthalmol Vis Sci 1989; 30:    2148-2153. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832719&pid=S0365-6691200300010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>9. Kenyon KR, Rapoza PA. Limbal allograft transplantation for    ocular surface disorders. Ophthalmology 1995; 102 (Supl): 101-102. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832720&pid=S0365-6691200300010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>10. Rao SK, Rajagopal R, Sitalakshmi G, Padmanabhan P. Limbal    allografting from related live donors for corneal surface reconstruction.    Ophthalmology 1999; 106: 822-828. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832721&pid=S0365-6691200300010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>11. Tsubota K, Toda I, Saito H, Shinozaki N, Shimazaki J.    Reconstruction of the corneal epithelium by limbal allograft transplantation    for severe ocular surface disorders. Ophthalmology 1995; 102: 1486-1496. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832722&pid=S0365-6691200300010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>12. Tsai RJF, Tseng SCG. Effect of stromal inflammation on the    outcome of limbal transplantation for corneal surface reconstruction. Cornea    1995; 14: 439-449. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832723&pid=S0365-6691200300010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>13. Rao SK, Rajagopal R, Sitalakshmi G, Padmanabhan P. Limbal    autografting: comparision of results in the acute and chronic phases of ocular    surface burns. Cornea 1999; 18: 164-171. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832724&pid=S0365-6691200300010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>14. Mendicute J. El alotrasplante límbico en la regeneración de la    superficie ocular tras causticación experimental en el ojo del conejo. Bilbao:    Universidad del País Vasco. 1995. 317 pp. Thesis doctoralis. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832725&pid=S0365-6691200300010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>15. Tseng SCG, Prabhasawat P, Barton K, Gray T, Meller D. Amniotic    membrane transplantation with or without limbal allografts for corneal surface    reconstruction in patients with limbal stem cell deficiency. Arch Ophthalmol    1998; 116: 431-441. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832726&pid=S0365-6691200300010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>16. Swift GJ, Aggarwal RK, Davis GJ, Coster DJ, Williams KA.    Survival of rabbit limbal stem cell allografts. Transplantation 1996; 62:    568-574. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832727&pid=S0365-6691200300010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>17. Tan DTH, Ficker LA, Buckley RJ. Limbal transplantation.    Ophthalmology 1996; 103: 29-36. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832728&pid=S0365-6691200300010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>18. Xu KP, Wu Y, Zhou J, Zhang X. Survival of rabbit limbal stem    cell allografts after administration of cyclosporin A. Cornea 1999; 18:    459-465. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=832729&pid=S0365-6691200300010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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