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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estimación del grosor de la capa lipídica lagrimal mediante colores interferenciales en distintos tipos de ojo seco]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Measure of the fatty layer thickness of precorneal tear film by interference colours in different types of dry eye]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Purpose: Measure the thickness of lacrimal fatty layer in several pathologies with ocular dryness , by the study of interferencial colours. Methods: A prospective study of 100 patients (50 males and 50 females), divided in ten groups was performed. The first nine groups had dry eye pathology, the other one was the control group of healthy patients. We measured with the slit lamp the fatty layer thickness by the study of interferencial colours. Results: We found a greater thickness of the fatty layer in patients with pathologies like seborrheic blepharitis, keratoconjunctivitis sicca, chronic blepharitis and contact lens wear, compared with the control group. Patients with climatic and ambiental dry eye had a thin fatty layer compared with the control group. We didn’t find statisticaly significative differences between control group and the patients with chronic conjunctivitis or atopic conjunctivitis. Conclusions: The thickness of the fatty layer changes in different dry eye pathologies. Interferencial colours study is a semiquantitative and non invasive method to measure the thickness of fatty layer of precorneal tear film. It´s easy to perform and interprete, so we must include this as a part of the dry eye diagnostic study.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Colores interferenciales]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <B>           <P align=right><STRONG>ARTÍCULO        ORIGINAL</STRONG></P>       <hr>     <p align=center><font size="4">ESTIMACIÓN DEL GROSOR DE LA CAPA LIPÍDICA    <br> LAGRIMAL MEDIANTE  COLORES INTERFERENCIALES    <br> EN DISTINTOS TIPOS DE OJO SECO</font></p>     <p align=center>MEASURE OF THE FATTY LAYER THICKNESS OF PRECORNEAL    <br> TEAR FILM  BY INTERFERENCE COLOURS IN DIFFERENT    <br> TYPES OF DRY EYE</B></p>     <p align=center>LÓPEZ GARCÍA JS<sup>1</sup>, GARCÍA LOZANO I<sup>1</sup>, MARTÍNEZ GARCHITORENA J<sup>2</sup></p> <table border="0" width="100%">   <tr>     <td width="48%" valign="top"> <B>     <P align=center>RESUMEN</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>Objetivo:</B> Estimar el grosor  de la capa lipídica de la lágrima en distintas patologías que cursan con  sequedad ocular, mediante el estudio de los colores interferenciales.<B>    <br> Métodos:</B> Hemos realizado un  estudio prospectivo en 100 pacientes (50 varones y 50 mujeres) divididos en diez  grupos. Nueve de estos grupos presentaban patología de ojo seco, mientras que el  otro es un grupo control de pacientes sanos. Bajo exploración en lámpara de  hendidura se realizan estimaciones del grosor de la capa lipídica mediante el  estudio de los colores interferenciales.<B>    <br> Resultados:</B> Encontramos un  mayor grosor de la capa lipídica, en comparación con el grupo control, en  patologías como blefaritis seborreica, conjuntivitis seca, blefaroconjuntivitis  crónica, conjuntivitis infecciosa y portadores de lentes de contacto. En  patologías como ojo seco climático y ojo seco ambiental encontramos un menor  grosor de la capa lipídica en comparación al grupo control. No encontramos  diferencias estadísticamente significativas entre el grupo control y pacientes  con conjuntivitis crónica simple y conjuntivitis atópica.<B>    <br> Conclusiones:</B> El grosor de la  capa lipídica se altera en distintas situaciones clínicas que cursan con ojo  seco. El estudio de los colores interferenciales es un método semicuantitativo,  y no invasivo, que nos permite estimar de una forma sencilla el grosor de la  capa lipídica de la película lagrimal. Por su fácil realización e interpretación  creemos que debería incorporarse como un elemento más de estudio en el  diagnóstico de ojo seco.</P>       <B>     <P align=left>Palabras clave:</B> Colores interferenciales, interferometría, grosor capa lipídica, ojo seco.</P>     </td>     <td width="4%" valign="top"></td>     <td width="48%" valign="top"><B>     <P align=center>SUMMARY</P>     <P align=left>Purpose:</B> Measure the  thickness of lacrimal fatty layer in several pathologies with ocular dryness ,  by the study of interferencial colours.<B>    <br> Methods:</B> A prospective study  of 100 patients (50 males and 50 females), divided in ten groups was performed.  The first nine groups had dry eye pathology, the other one was the control group  of healthy patients. We measured with the slit lamp the fatty layer thickness by  the study of interferencial colours.<B>    <br> Results:</B> We found a greater  thickness of the fatty layer in patients with pathologies like seborrheic  blepharitis, keratoconjunctivitis sicca, chronic blepharitis and contact lens  wear, compared with the control group. Patients with climatic and ambiental dry  eye had a thin fatty layer compared with the control group. We didn’t find  statisticaly significative differences between control group and the patients  with chronic conjunctivitis or atopic conjunctivitis.<B>    <br> Conclusions:</B> The thickness of  the fatty layer changes in different dry eye pathologies. Interferencial colours  study is a semiquantitative and non invasive method to measure the thickness of  fatty layer of precorneal tear film. It´s easy to perform and interprete, so we  must include this as a part of the dry eye diagnostic study <I>(Arch Soc Esp Oftalmol 2003; 78: 257-264).</P>       </I><B>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>Key words: </B>Interference colours, interferometry, fatty layer thickness, dry eye.</P>           <p>&nbsp;</td>   </tr> </table>     <p align=left>    <br> </p> <hr width="30%" align="left">     <P align=left><font size="2">Recibido: 14/8/02. Aceptado: 10/4/03.    <br> Hospital General de Cruz Roja. Madrid. España.    <br> <sup>1</sup> Licenciado en Medicina.    <br> <sup>2</sup> Doctor en Medicina.    <br> Comunicación presentada parcialmente en el LXXVI Congreso de la S.E.O. (Madrid 2000).    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Correspondencia:&nbsp;    <br> J.S. López García    <br> Servicio de Oftalmología    <br> Hospital Central de Cruz Roja    <br> Avenida Reina Victoria, 26    <br> 28003 Madrid</font></P> <FONT  face=Arial> <HR> </FONT>     <P align=center><B>INTRODUCCIÓN</B></P>    <P align=left>El síndrome de sequedad ocular incluye una gran  variedad de alteraciones oculares de diversas etiologías que tienen como común  denominador una afectación de la superficie ocular producida por un déficit  funcional de lágrima. De acuerdo con los criterios de Madrid, podemos clasificar  el síndrome de sequedad ocular atendiendo a su gravedad, subsistema glandular  afectado y etiología (1). La observación y estudio de la lágrima es esencial  para entender la fisiopatología de las alteraciones que ocurren en el síndrome  de ojo seco (2).</P>     <P align=left>La triestratificación de la película lagrimal se  conoce desde 1892 gracias a los trabajos de Terson (3), aunque es Wolff en 1946,  quien establece la existencia de un estrato lipídico, una fase acuosa y una fase  mucínica. En la actualidad se considera que la lágrima es un gel de mucina, en  la que ésta es más abundante en las inmediaciones de la córnea, con una capa  lipídica sobre ella. El grosor de la lágrima ha sido estudiado por varios  autores que empleando distintos métodos de estudio encuentran valores que  oscilan entre 3 y 40 micras (4-10). La capa mucínica es la más profunda. Se  produce fundamentalmente por las células mucíparas y se adhiere al glycocalyx  epitelial. Su grosor medido mediante microscopia electrónica es de 0,5 micras  (11), aunque otros autores utilizando interferometría encuentran valores más  elevados (5,6). La capa acuosa supone el componente más abundante de la lágrima.  Se produce por la secreción de las glándulas lagrimales principal y accesorias.  El estrato graso se produce principalmente en las glándulas de Meibomio, y está  compuesto en su mayoría (80-90%) por lípidos de baja polaridad (ésteres de cera,  colesterol y triglicéridos) que se sitúan en la parte más externa, y un 10-20%  por lípidos de alta polaridad (ácidos grasos libres, glicolípidos, lecitinas y  fosfolípidos) que se sitúan en la parte mas profunda orientando su grupo polar  hidrófilo a la fase acuosa (12-15). La principal función de la fase lipídica es  evitar la evaporación de la fase acuosa (16).</P>     <P align=left>El grosor de la capa lipídica (GCL) puede estimarse  mediante la observación con lámpara de hendidura de los colores interferenciales  (CI) (17-19). La existencia de un patrón de CI y su relación con el grosor de la  superficie que atraviesa una luz fue ya descrita por Newton. Klein en 1949  relaciona el patrón de CI observado en la superficie ocular con el GCL. Norn en  1979 y Hamano en 1980 aplican el estudio de los CI al diagnóstico de patología  lagrimal (18,20). En 1997, Guillon clasifica los distintos patrones  interferenciales según el GCL (21). Los CI pueden observarse directamente en la  lámpara de hendidura (17-19), o bien mediante el empleo de microscopio  interferencial biodiferencial, fotoqueratoscopia, microscopia especular,  interferometría, videograbadora especular de reflexión, reflectometría o  lipodacrioscopios interferenciales que nos proporcionan una imagen simultánea de  toda la película lagrimal precorneal (2,10,20,22,23). Según el sistema de  medición empleado, el grosor del estrato lipídico varía entre 40 y 100 nm  (17,18,23).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>Cuando una luz blanca incide perpendicular sobre la  cornea, atravesando la película lagrimal, se puede observar en la superficie  corneal un patrón de CI que variará dependiendo del grosor de la fase lipídica.  Cuando la capa lipídica tiene un espesor de 100-130 nm, la luz reflejada de su  superficie anterior (lípido-aire) interfiere con el haz de luz reflejado de su  superficie posterior (lípido-acuosa). La luz azul, con longitud de onda de 400  nm, está en fase opuesta y es por tanto eliminada, mientras la luz roja,  longitud de onda de 800 nm, está en cofase y es por tanto visible, obteniéndose  como resultado la aparición de un patrón de color entre marrón y rojo (24). Si  el GCL es de 180-200 nm, se anulan los rayos de mayor longitud de onda (rojos)  que coinciden en oposición de fase, observándose ahora un patrón de color  azul-violáceo (21). El GCL así medido en humanos normales es de 68 nm (18,24),  siendo éste independiente del BUT y la presencia de espuma (25). Estas medidas  se modifican si utilizamos luz monocromática en lugar de luz visible. Olsen  utilizando un reflectómetro fotométrico y empleando longitudes de onda de 500 y  700 nm encontró en sujetos normales un GCL de 40 nm (23).</P>     <P align=left>Son muchas la causa que pueden provocar en clínica un  ojo seco lipodeficiente. La alteración de la fase lipídica provoca un aumento de  la evaporación de la fase acuosa (16,26), así como una invasión del lago  lagrimal por grasas de la piel (27). La alteración de la capa lipídica puede ser  tanto cualitativa como cuantitativa. La causa más frecuente de ojo seco  lipodeficiente en clínica es la blefaritis en sus distintas etiologías, donde se  produce una alteración tanto cualitativa como cuantitativa del estrato lipídico  (28). Esta alteración en la normal composición de la fase lipídica puede  explicar los cambios observados en la exploración de estos pacientes (29,30).  Otras veces el trastorno sobre la fase lipídica es producido por distintos  agentes (bacterias, contaminantes, conservantes, agentes físicos, etc.) que  actúan sobre todo modificando su composición (19).</P>     <P align=left>Varios autores han encontrado un aumento del grosor  de la capa lipídica en pacientes con ojo seco (2,18,19,22,31), encontrando  relación entre el GCL y la severidad del cuadro clínico (2,22), así como con  otras pruebas diagnósticas (22). En este trabajo pretendemos estimar el GCL en  distintas patologías que cursan con ojo seco observando mediante lámpara de  hendidura el patrón de colores interferenciales.</P>     <P align=center><B>MATERIAL Y MÉTODO</B></P>     <P align=left>Hemos estudiado el GCL mediante el estudio de CI en  100 pacientes, divididos en 10 grupos de 10 individuos por grupo. No se ha  tenido en cuenta ni edad ni sexo a la hora de hacer los grupos ya que estos  parámetros no parecen influir en el GCL (32). Nueve de estos grupos presentaban  algún tipo de patología relacionada con ojo seco, mientras que el otro es un  grupo control de personas normales (N). Los grupos con patología están formados  por pacientes con blefaritis seborreica (BS), queratoconjuntivitis seca (QCS),  conjuntivitis infecciosa (CI), blefaroconjuntivitis crónica (BCC), portadores de  lentes de contacto (PLC), conjuntivitis crónica simple (CCS), ojo seco ambiental  (OSA), ojo seco climático (OSC) y conjuntivitis atópica (CA).</P>     <P align=left>Para la exploración, se sitúa al paciente en posición  normal de exploración en la lámpara de hendidura (Haag-Streit). A continuación  se dirige el haz de luz blanca perpendicular al plano corneal de tal forma que  el ángulo de incidencia y de reflexión coincida entre ellos y con el ángulo de  observación, finalmente se enfoca sobre la película lagrimal y se observa al  lado de la proyección del filamento incandescente de la lámpara la aparición, o  no, de CI (figs. <a href="#f1"> 1</a> y <a href="#f2">2</a>). Los CI aparecen cuando la capa lipídica presenta un  espesor de al menos 134 nm. En este caso observamos un patrón de CI marrón-  rojizo (<a href="#f3">fig. 3</a>). Si aparece un patrón azul-violáceo el grosor de la capa es de  160-180 nm (<a href="#f4">fig. 4</a>). En condiciones normales no se observan CI por lo que para  estimar el grosor de la fase lipídica se debe proceder, según el método de Norn,  a cerrar progresivamente el párpado (18,24) (figs. <a href="#f5">5</a>-<a href="#f7">7</a>). Si los CI aparecen con  un cierre del 50% de la hendidura palpebral, el GCL será de 134 x 0,50= 67. Si  los CI aparecen con un cierre de la hendidura del 80 %, el grosor será de 134 x  0,2= 16,8. Se ha de tener especial cuidado en no manipular excesivamente los  párpados, para evitar la expresión de las glándulas de Meibomio, lo que  aumentaría la cantidad de lípidos en la lágrima (32). En una persona normal los  CI se empiezan a observar cuando se cierra la hendidura palpebral en un  50%.</P> <FONT  face=Arial>     <P align=center><a name="f1"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-01.jpg" width="497" height="333"></a>&nbsp;<FONT size=1>    <BR></FONT></FONT> <i><font size="2">Fig. 1. Preparación. Se enfoca un fino haz de  luz sobre la córnea, de tal forma que el haz    <br> de luz incidente y el reflejado  coincidan entre ellos y con el ángulo de observación.</font></i></P>     <P align=center>&nbsp;</P> <FONT  face=Arial>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=center>&nbsp;<FONT size=1><a name="f2"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-02.jpg" width="518" height="353"></a>    <BR></FONT></FONT> <i><font size="2">Fig. 2. Preparación. Máximo aumento de la  lámpara Haag-Streit (40x). Enfocando sobre el    <br> reflejo del filamento  incandescente que se proyecta sobre la película lagrimal observamos la    <br> aparición de un patrón de interferencias azul.</font></i></P>     <P align=center>&nbsp;</P> <FONT  face=Arial>     <P align=center><a name="f3"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-03.jpg" width="454" height="319"></a>&nbsp;<FONT size=1>    <BR></FONT></FONT> <i><font size="2">Fig. 3. Paciente con blefaritis seborreica. Se  aprecia un patrón de interferencia rojizo    <br> que nos indica un grosor aproximado de  130 nm.</font></i></P>     <P align=center>&nbsp;</P> <FONT  face=Arial>     <P align=center><a name="f4"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-04.jpg" width="449" height="305"></a>&nbsp;<FONT size=1>    ]]></body>
<body><![CDATA[<BR></FONT></FONT> <i><font size="2">Fig. 4. Paciente con blefaritis seborreica.  Patrón de interferencias marronáceo con    <br> algunos trazos azules que nos indican un  grosor aproximado de 160 nm. Nótese la    <br> distribución vertical de las bandas de  interferencia propias de los cuadros que cursan    <br> con aumento del grosor de la  capa lipídica.</font></i></P>     <P align=center>&nbsp;</P> <FONT  face=Arial>     <P align=center>&nbsp; &nbsp; <a name="f5"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-05.jpg" width="506" height="347"></a>&nbsp;</P>     <P align=center><a name="f6"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-06.jpg" width="506" height="339"></a></P>     <P align=center><a name="f7"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-07.jpg" width="468" height="322"></a><FONT size=1>    <BR></FONT></FONT> <i><font size="2">Figs. 5, 6  y 7. Secuencia fotográfica de  colores interferenciales utilizando el dorso del    <br> espejo de la lámpara de  hendidura Haag-Streit (40x). Se trata de un paciente del grupo    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> control al que de  forma progresiva se le va disminuyendo la hendidura palpebral con lo    <br> que aumenta  el GCL, pasando de un patrón rojizo que nos indica un GCL de unos 130 nm,    <br> a un patrón azul que nos indica un grosor de unos 160 nm. En la parte inferior de la    <br> fotografía se aprecia el patrón de CI en el menisco lagrimal. En el último caso  debido al    <br> cierre de la hendidura palpebral se aprecia también el mismo efecto en  el menisco superior.    <br> </font></i></P>     <P align=left>Para simplificar las medidas hemos utilizado la  siguiente tabla de valores:</P> <UL>       <LI>       <P align=left>Patrón interferencial azul con hendidura normal:    160 nm. </P>       <LI>       ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>Patrón interferencial marrón con hendidura normal:    130 nm. </P>       <LI>       <P align=left>Patrón interferencial marrón con 80% de hendidura:    110 nm. </P>       <LI>       <P align=left>Patrón interferencial marrón con 60% de hendidura:    80 nm. </P>       <LI>       <P align=left>Patrón interferencial marrón con 50% de hendidura:    65 nm. </P>       <LI>       <P align=left>Patrón interferencial marrón con 40% de hendidura:    40 nm. </P>       <LI>       ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>Patrón interferencial marrón con 20% de hendidura:    20 nm. </P></LI>    </UL>     <P align=left>Los datos obtenidos han sido analizados  estadísticamente utilizando un programa informático (SPSS 8.0 para windows). Los  resultados, entre distintos grupos clínicos, son comparados utilizando el test  ANOVA unifactorial con corrección posterior mediante el test HSD de Tukey de  comparaciones múltiples, para una significación estadística de  p&lt;0,05.</P>     <P align=center><B>RESULTADOS</P> </B>     <P align=left>Estudiando los CI mediante exploración directa con  lámpara de hendidura observamos en distintas patologías, que cursan con clínica  de ojo seco, una alteración en el GCL. Los resultados globales pueden observarse  en la <a href="/img/aseo/v78n5/img/t05-01.gif"> tabla I</a> y <a href="#f8"> figura 8</a>. Se encontró un aumento significativo del GCL en  comparación al grupo control en pacientes con blefaritis seborreica,  befaroconjuntivitis crónica y queratoconjuntivitis seca, ojo seco ambiental y  ojo seco climático. En pacientes con conjuntivitis infecciosas y en pacientes  portadores de lentes de contacto se evidenció un notable aumento del GCL, en  comparación con el grupo control, pero éste no alcanza la significación  estadística deseada. No se han encontrado diferencias entre pacientes con  clínica de conjuntivitis crónica simple y pacientes con conjuntivitis atópica en  comparación con el grupo control. Los datos relativos al grado de significación  estadística entre el grupo control y el resto de grupos se encuentran reflejados  en la <a href="/img/aseo/v78n5/img/t05-02.gif"> tabla II</a>.</P> <FONT  face=Arial>     <P align=center><a name="f8"><img border="0" src="/img/aseo/v78n5/img/f05-08.jpg" width="600" height="375"></a>&nbsp;<FONT size=1>    <BR></FONT></FONT> <i><font size="2">Fig. 8. Representación gráfica de los  resultados obtenidos para cada grupo.</font></i></P>     <P align=center><B>DISCUSIÓN</B></P>     <P align=left>Aunque la base teórica del estudio de los CI mediante  la exploración con lámpara de hendidura esta sujeta a no pocas críticas (2,23),  lo cierto es que se trata de un método semicuantitativo y de fácil realización  en la práctica clínica para estimar el GCL de la película lagrimal. Se trata de  una prueba diagnóstica que se afecta muy poco, si se realiza correctamente, por  la propia exploración, al contrario de lo que sucede con otros tests  diagnósticos (22,32). Para ello es importante no ejercer presiones sobre el  párpado y no realizar las exploraciones en las horas siguientes al descanso  nocturno o después de instilar colirios o pomadas en el ojo (24). Los CI pueden  observarse directamente sobre el filamento incandescente de la lámpara reflejado  en la córnea o bien utilizando el dorso del espejo de la lámpara de hendidura  Haag Streit (figs. <A HREF="#f3">3</A>-<A HREF="#f7">7</A>). De esta segunda forma se obtendrá una imagen más amplia  y difuminada más fácil de fotografiar que cuando observamos directamente sobre  el filamento incandescente (<A HREF="#f2">fig. 2</A>). La misma imagen difuminada se puede también  obtener interponiendo ante la luz un filtro polaroid o una placa de vidrio  (24,33). En la práctica habitual utilizamos el método de exploración directa  sobre el reflejo del filamento incandescente de la lámpara en la córnea, ya que  los colores se ven más nítidos, permite un enfoque más preciso y es más rápido,  ya que no hay que modificar la estructura de la lámpara de hendidura.</P>     <P align=left>Varios autores han encontrado un aumento del GCL en  pacientes con clínica de ojo seco (2,18,19,20,22). Yokoi encuentra un aumento  del GCL a mayor severidad del cuadro clínico, así como una correlación  estadísticamente significativa entre el aumento del GCL y otras pruebas  diagnósticas como tinción con fluoresceína o rosa de bengala, y la alteración  del tiempo de ruptura lagrimal (22).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>Desde antiguo se conoce la existencia de ojos seco  lipodeficientes. Las alteraciones cuantitativas y cualitativas de la fase  lipídica de la lágrima están en la base de no pocos trastornos habituales en la  consulta oftalmológica diaria (27,29). En nuestro estudio el mayor GCL se  encontró en pacientes con blefaritis seborreica (130 nm); ésta es la causa más  frecuente de lágrima grasa. La blefaroconjuntivitis crónica es otra causa de  blefaritis que cursa con aumento del grosor de la capa lipídica (112 nm). En  estos casos casi siempre existe una alteración cualitativa de la lágrima  provocada por la acción de las lipasas de algunas bacterias que hidrolizan los  ácidos grasos. Algo parecido ocurre en las conjuntivitis infecciosas (99 nm).  Más difícil es la explicación del aumento del grosor de la fase lipídica en la  queratoconjuntivitis seca (112 nm), aunque podría deberse a que una disminución  en la eliminación normal de la lágrima, motivada por la menor producción de fase  acuosa, resultaría en una especie de estancamiento lagrimal con acúmulos de  detritos grasos en suspensión. En el caso de los portadores de lentes de  contacto (90 nm), parece que las lentes producirían una irritación en el borde  palpebral estimulando la producción de sebo meibomiano. En casos de conjuntivits  crónica simple (74,5 nm) y conjuntivitis atópica (66,5 nm) no parece haber una  repercusión, al menos inicialmente, sobre las dacrioglándulas lipídicas, por lo  que encontramos cifras parecidas de GCL a las observadas en el grupo control. En  casos de ojo seco climático (39 nm) y ojo seco ambiental (35 nm), sería la  acción de distintos contaminantes que al actuar sobre la lágrima produjesen una  alteración de ésta. Agentes ambientales derivados de la combustión de motores  como óxido nítrico, dióxido de azufre, anhídrido sulfuroso etc, tienen actividad  lipolítica directa sobre la lágrima, lo mismo ocurre con algunos gases derivados  de determinadas industrias. Esto puede verse incrementado con la utilización de  cosméticos o colirios que contiene como conservante el cloruro de benzalconio.  En el caso de ojo seco ambiental, son lugares cerrados con productos químicos  como CO2 y CO, productos de limpieza, polvo, humo de tabaco, sistemas de aire  acondicionado y un importante grado de sequedad ambiental.</P>     <P align=left>Si comparamos nuestros resultados con los obtenidos  por Norn (18), después de aplicar sobre ellos el índice de refracción de la capa  lipídica (23,24), encontramos valores muy similares en sujetos normales,  conjuntivitis alérgica y queratoconjuntivitis seca (70, 66,5 y 112 nm frente a  68, 63 y 110 nm de Norn, respectivamente). En pacientes con BCC nosotros  obtenemos cifras de 112 nm, mientras que Norn obtiene 86 nm. Esta diferencia  puede ser atribuida a que nosotros en este grupo incluimos a pacientes con  meibomitis, mientras que Norn parece incluir a pacientes con blefaritis  eccematosa. También existen diferencias en el caso de la conjuntivitis aguda  infecciosas. Norm obtiene valores de 130 nm, mientras que en nuestra serie se  obtienen valores de 99 nm. Creemos que esta diferencia puede ser debida a la  mayor o menor gravedad del cuadro infeccioso. Norn encuentra también un mayor  GCl en pacientes portadores de lentes de contacto duras (125 nm) y blandas (98  nm). Nosotros encontramos valores de 90 nm, pero no hemos tenido en cuenta el  tipo de lente de contacto. En cuanto al ojo seco ambiental, Franck (19),  comunica también valores disminuidos de la capa lipídica en pacientes con  síndrome de edificio enfermo sobre todo si usan maquillaje de ojos.</P>     <P align=left>Para finalizar, recomendamos la realización rutinaria  de la estimación del GCL mediante el estudio de los colores interferenciales en  la práctica clínica habitual, ya que se trata de una prueba no invasiva y de  fácil realización. Es especialmente útil en casos de blefaritis de distintas  etiologías y en casos de ojo seco ambiental y climático puede ser la única  manifestación diagnóstica. El estudio de los CI puede ser valorado también de  forma dinámica. Si una vez enfocados sobre la capa grasa mandamos parpadear al  paciente, podremos observar como se distribuye la capa lipídica por la  superficie corneal observando el patrón de distribución de los CI. Así en  pacientes normales los colores se distribuyen siguiendo un patrón horizontal,  mientras que en caso de aumento del GCL estos siguen un patrón de distribución  más vertical. Con todo, hemos de tener en cuenta que, una alteración del GCL no  es sinónimo de patología, siendo más importantes desde el punto de vista  fisiopatológico las alteraciones cualitativas de la capa lipídica que su grosor  (27).</P>     <P align=left>&nbsp;</P>     <P align=center><B>BIBLIOGRAFÍA</P> </B>       <!-- ref --><P align=left>1. Murube J. Clasificación clínica del ojo seco. In Murube J. Ojo    seco-Dry eye. Soc Española de Oftalmología. Madrid: Tecnimedia editorial S.L.    1997; 39-44. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836850&pid=S0365-6691200300050000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>2. Danjo Y, Hamano T. Observation of precorneal tear film in    patients with Sjogren’s syndrome. Acta Ophthalmol Scand 1995; 73: 501-505.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836851&pid=S0365-6691200300050000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>3. Terson A. Notes sur les glandes acineuses de la conjonctive et    sur les glandes lacrymales orbitopalpébrales. Arch Ophtalmol (Paris) 1892; 12:    745-770. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836852&pid=S0365-6691200300050000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>4. King-Smith PE, Fink BA, Fogt N, Nichols KK, Hill RM, Wilson GS.    The thickness of the human precorneal tear film: evidence from reflection    spectra. Invest Ophthalmol Vis Sci 2000; 41: 3348-3359. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836853&pid=S0365-6691200300050000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>5. Prydal JI, Artal P, Woon H, Campbell FW. Study of human    precorneal tear film thickness and structure using laser interferometry.    Invest Ophthalmol Vis Sci 1992; 33: 2006-2011. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836854&pid=S0365-6691200300050000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>6. Prydal JI, Campbell FW. Study of precorneal tear film thickness    and structure by interferometry and confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis    Sci 1992; 33: 1996-2005. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836855&pid=S0365-6691200300050000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>7. Benedetto DA, Shah DO, Kaufman HE. The instilled fluid dynamics    and surface chemestry of polymers in the preocular tear film. Invest    Ophthalmol 1975; 14: 887-902. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836856&pid=S0365-6691200300050000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>8. Mishima S. Some physiological aspects of the precorneal tear    film. Arch Ophthalmol 1965; 73: 233. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836857&pid=S0365-6691200300050000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>9. Green DG, Frueh BR, Shapiro JM. Corneal thickness measured by    interferometry. J Opt Soc Am 1975; 65: 119. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836858&pid=S0365-6691200300050000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>10. Doane MG. An instrument for in vivo tear film interferometry.    Optom Vis Sci 1989; 66: 383-388. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836859&pid=S0365-6691200300050000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>11. Nichols BA, Chiappino ML, Dawson CR. Demostration of the mucous    layer of the tear film by electron microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci 1985;    26: 464-473. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836860&pid=S0365-6691200300050000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>12. Murube JM, ChenZhuo. Anatomía y fisiología. In Murube J. Ojo    seco- Dry eye. Soc Española de Oftalmología. Madrid: Tecnimedia editorial S.L.    1997; 15-36. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836861&pid=S0365-6691200300050000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>13. Nicolaides N, Kaitaranta JK, Rawdah TN, Macy JI, Boswell FM,    Smith RE. Meibomian gland studies: comparison of steer and human lipid. Invest    Ophthalmol Vis Sci 1981; 20: 522-536. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836862&pid=S0365-6691200300050000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>14. Jester JV, Nicolaides N, Smith RE. Meibomian gland studies    histological a ultraestructural investigations. Invest Ophthalmol Vis Sci    1981; 20: 537-547. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836863&pid=S0365-6691200300050000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>15. Tiffany JM, Marsden RG. The Meibomian lipis of the rabbit II.    Detailed composition of the principal esters. Exp Eye Res 1982; 34: 601-608.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836864&pid=S0365-6691200300050000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>16. Mathers WD. Ocular evaporation in meibomian gland dysfuntion and    dry eye. Ophthalmology 1993; 100: 347-351. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836865&pid=S0365-6691200300050000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>17. McDonal JE. Surface phenomena of the tear film. Am J Ophthalmol    1969; 67: 56-64. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836866&pid=S0365-6691200300050000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>18. Norn MS. Semiquantitative interference study of fatty layer of    precorneal tear film. Acta Ophthalmol (Copenh) 1979; 57: 766-774. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836867&pid=S0365-6691200300050000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>19. Franck C. Fatty layer of the precorneal film in the «office eye    syndrome». Acta Ophthalmol (Copenh) 1991; 69: 737-743. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836868&pid=S0365-6691200300050000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>20. Hamano H, Hori M, Kawabe M, Umeno M, Mitsunaga S, Ohnishi Y et    al. Clinical applications of biodifferential interference microscope. Contact    Intraocul Lens Med J 1980; 6: 229-235. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836869&pid=S0365-6691200300050000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>21. Murube J, Chen Zhuo. Exploración fentobiomicroscópica del ojo    seco. In Murube J. Ojo seco- Dry eye. Soc Española de Oftalmología. Madrid.    Tecnimedia editorial S.L. 1997; 123-34. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836870&pid=S0365-6691200300050000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>22. Yokoi N, Takehisa Y, Kinoshita S. Correlation of tear lipid    layer interference patterns with the diagnosis and severity of dry eye. Am J    Ophthalmol 1996; 122: 818-824. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836871&pid=S0365-6691200300050000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>23. Olsen T. Reflectometry of the precorneal film. Acta Ophthalmol    (Copenh) 1985; 63: 432-438. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836872&pid=S0365-6691200300050000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>24. Norn MS. Diagnóstico del ojo seco. In MA Lemp and R. Marquardt.    El ojo seco 2. Barcelona: Springer-Verlag Ibérica. 1994; 160-163. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=836873&pid=S0365-6691200300050000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>25. Nor M. Foam in the external part of the eye. 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