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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comparación de tres métodos de inducción del incremento crónico de la presión intraocular en el cerdo (glaucoma experimental)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison of three methods of inducing chronic elevation of intraocular pressure in the pig (experimental glaucoma)]]></article-title>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0365-66912005001000004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0365-66912005001000004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0365-66912005001000004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Objetivo: Comparar tres métodos de inducción de glaucoma experimental en el cerdo adulto, basados en el aumento crónico de la presión intraocular (PIO). Material y métodos: En el presente estudio se emplearon un total de 16 cerdos adultos. En todos los casos se utilizaron los ojos derechos como control y los ojos izquierdos fueron operados. Dividimos los animales en tres grupos: 1) tres cerdos a los que se les cauterizó tres de las venas epiesclerales (período de seguimiento = 21 semanas), 2) seis animales a los que se les inyectó una solución que contenía fluoroesferas en la cámara anterior (período de seguimiento = 11 semanas) y 3) cuatro cerdos a los que se les inyectó una solución que contenía fluoroesferas junto con metil-celulosa en la cámara anterior (período de seguimiento = 11 semanas). Resultados: La cauterización de las venas epiesclerales resultó ser el único de los métodos que produjo un aumento mantenido de la PIO a lo largo de la mayor parte del periodo experimental. Además, el aumento de la PIO producido siguiendo este método resultó en una pérdida selectiva de células ganglionares de la retina (CGR), la cual afectó principalmente a la retina media y periférica y causó un aumento en el área media de las CGR supervivientes. Conclusiones: La cauterización de las venas epiesclerales provocó un aumento mantenido y significativo de la PIO así como una pérdida de CGR, en comparación con los otros dos métodos utilizados en el presente estudio, los cuales apenas modificaron la distribución de las CGR de cerdo. Por tanto, concluimos que la cauterización de las venas epiesclerales es el mejor de los métodos ensayados para inducir glaucoma experimental en cerdo.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Purpose: To compare three methods of inducing experimental glaucoma in the adult pig, based on achieving chronic elevation of the intraocular pressure (IOP). Methods: A total of 16 adult pigs were used in the present study. In all instances, the right eye was used as control and the left eye as the experimental eye. The animals were divided into three groups: 1) 3 pigs in which 3 episcleral veins were cauterized (experimental period = 21 weeks); 2) 6 animals in which the anterior chamber of the eye was injected with a solution containing latex fluorospheres (experimental period = 11 weeks); and 3) 4 pigs in which the anterior chamber of the eye was injected with a solution containing latex fluorospheres plus methylcellulose (experimental period = 11 weeks). Results: The episcleral vein cauterization was the only method which produced a sustained elevation of the IOP throughout most of the experimental period. Moreover, the elevation of the IOP achieved by this method resulted in selective retinal ganglion cell (RGC) loss that affected mainly the mid-peripheral and peripheral retina and caused an increase in the mean soma area of the remaining RGCs. Conclusions: Cauterization of the episcleral veins resulted in a significant and sustained elevation of the IOP and RGC loss when compared with the other two approaches tested in the present study, which barely modified the pig's RGC distribution. Thus, we conclude that the episcleral vein cauterization is the best of the methods tested to induce experimental glaucoma in the pig.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Glaucoma]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[células ganglionares de la retina]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <P align="right"><b>ARTÍCULO ORIGINAL</b> <hr>     <P align="center"><b><font size="4">COMPARACIÓN DE TRES MÉTODOS DE INDUCCIÓN DEL INCREMENTO CRÓNICO&nbsp;    <br>  DE LA PRESIÓN INTRAOCULAR EN EL CERDO (GLAUCOMA EXPERIMENTAL)</font></b>     <P align="center"><b>COMPARISON OF THREE METHODS OF INDUCING CHRONIC ELEVATION OF INTRAOCULAR PRESSURE&nbsp;    <br>  IN THE PIG (EXPERIMENTAL GLAUCOMA)</b>     <p align="center">RUIZ-EDERRA J<sup>1</sup>, GARCÍA M<sup>2</sup>, MARTÍN F<sup>3</sup>, URCOLA H<sup>4</sup>, HERNÁNDEZ M<sup>5</sup>,&nbsp;    <br>  ARAIZ J<sup>6</sup>, DURÁN J<sup>6</sup>, VECINO E<sup>7</sup>    <br>     <br> </p>     <p align="center">   <table border="0" width="100%">     <tr>       <td width="48%" valign="top">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=center><B>RESUMEN</P></B>     <P align=left><B>Objetivo:</B> Comparar tres métodos de inducción  de glaucoma experimental en el cerdo adulto, basados en el aumento crónico de la  presión intraocular (PIO).<B>    <br> Material y métodos:</B> En el  presente estudio se emplearon un total de 16 cerdos adultos. En todos los casos  se utilizaron los ojos derechos como control y los ojos izquierdos fueron  operados. Dividimos los animales en tres grupos: 1) tres cerdos a los que se les  cauterizó tres de las venas epiesclerales (período de seguimiento = 21 semanas),  2) seis animales a los que se les inyectó una solución que contenía  fluoroesferas en la cámara anterior (período de seguimiento = 11 semanas) y 3)  cuatro cerdos a los que se les inyectó una solución que contenía fluoroesferas  junto con metil-celulosa en la cámara anterior (período de seguimiento = 11  semanas).<B>    <br> Resultados:</B> La cauterización  de las venas epiesclerales resultó ser el único de los métodos que produjo un  aumento mantenido de la PIO a lo largo de la mayor parte del periodo  experimental. Además, el aumento de la PIO producido siguiendo este método  resultó en una pérdida selectiva de células ganglionares de la retina (CGR), la  cual afectó principalmente a la retina media y periférica y causó un aumento en  el área media de las CGR supervivientes.<B>    <br> Conclusiones:</B> La  cauterización de las venas epiesclerales provocó un aumento mantenido y  significativo de la PIO así como una pérdida de CGR, en comparación con los  otros dos métodos utilizados en el presente estudio, los cuales apenas  modificaron la distribución de las CGR de cerdo. Por tanto, concluimos que la  cauterización de las venas epiesclerales es el mejor de los métodos ensayados  para inducir glaucoma experimental en cerdo.</P><B>     <P align=left>Palabras clave:</B> Glaucoma,  células ganglionares de la retina, presión intraocular, muerte  celular.</P>       </td>       <td width="4%" valign="top"></td>       <td width="48%" valign="top"><B>     <P align=center>ABSTRACT</P></B>     <P align=left><B>Purpose:</B> To compare three methods of inducing  experimental glaucoma in the adult pig, based on achieving chronic elevation of  the intraocular pressure (IOP).<B>    <br> Methods:</B> A total of 16 adult  pigs were used in the present study. In all instances, the right eye was used as  control and the left eye as the experimental eye. The animals were divided into  three groups: 1) 3 pigs in which 3 episcleral veins were cauterized  (experimental period = 21 weeks); 2) 6 animals in which the anterior chamber of  the eye was injected with a solution containing latex fluorospheres  (experimental period = 11 weeks); and 3) 4 pigs in which the anterior chamber of  the eye was injected with a solution containing latex fluorospheres plus  methylcellulose (experimental period = 11 weeks).<B>    <br> Results:</B> The episcleral vein  cauterization was the only method which produced a sustained elevation of the  IOP throughout most of the experimental period. Moreover, the elevation of the  IOP achieved by this method resulted in selective retinal ganglion cell (RGC)  loss that affected mainly the mid-peripheral and peripheral retina and caused an  increase in the mean soma area of the remaining RGCs.<B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Conclusions:</B> Cauterization of  the episcleral veins resulted in a significant and sustained elevation of the  IOP and RGC loss when compared with the other two approaches tested in the  present study, which barely modified the pig's RGC distribution. Thus, we  conclude that the episcleral vein cauterization is the best of the methods  tested to induce experimental glaucoma in the pig <I>(Arch  Soc Esp Oftalmol 2005; 80: 571-580).</P></I><B>     <P align=left>Key words:</B> Glaucoma, retinal  ganglion cells, porcine, intraocular pressure, cell dead.</P>             <p>&nbsp;</td>     </tr>   </table>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p align="left"><font size="2"> Recibido: 9/12/04. Aceptado: 4/10/05.    <br> Departamento de Biología Celular e Histología. Facultad de Medicina y Odontología. Universidad del País Vasco. Vizcaya. España.    <br> 1 Doctor en Biología. Fundación Gangoiti Barrera.    <br> 2 Doctora en Biología.    <br> 3 Técnico de Laboratorio. Universidad de Salamanca.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 4 Licenciado en Medicina.    <br> 5 Licenciada en Biología. Ministerio de Ciencia y Tecnología.    <br> 6 Doctor en Medicina.    <br> 7 Doctora en Biología.    <br> Proyecto subvencionado por ONCE (III Convocatoria I+D), Fundaluce 1.<sup>er </sup> premio 2005 (Fundación Lucha Contra la Ceguera), The American Glaucoma Foundation (TGF); Ministerio de Ciencia y Tecnología (BFi 2003-07177); Universidad del País Vasco (15350/2003).    <br>     <br> Correspondencia:    <br> Elena Vecino    <br> Dpto. Biología Celular e Histología    <br> Facultad de Medicina. Universidad del País Vasco    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 48940 Leioa (Vizcaya)    <br> España    <br> E-mail: <a href="mailto:elena.vecino@ehu.es">elena.vecino@ehu.es</a></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><B>INTRODUCCIÓN</p> </B>     <P align=left>El estudio de los mecanismos implicados en la muerte  de las células ganglionares de la retina (CGR) durante patologías como el  glaucoma requiere el uso de modelos animales adecuados. Los animales pequeños,  como la rata, han sido los más utilizados para la investigación en oftalmología  debido a las ventajas metodológicas que presentan, sin embargo, las  características de estos animales se alejan demasiado de las del ser humano. En  cuanto a los mamíferos de gran tamaño, el mono, que representa el modelo  filogenéticamente más cercano al hombre, tiene un uso limitado en el laboratorio  debido a que presenta una serie de inconvenientes éticos y económicos. En los  últimos años, el cerdo ha sido utilizado en investigación oftalmológica como  modelo de estudio de enfermedades que afectan a la superficie ocular o en  enfermedades como la retinitis pigmentosa (1,2).</P>     <P align=left>En el presente trabajo se ha empleado el cerdo para  el desarrollo de un modelo de glaucoma experimental porque reúne una serie de  ventajas entre las que destacan: 1) La anatomía del ojo y la estructura de la  retina de cerdo son muy similares a la del ojo humano, permitiendo el uso de  herramientas utilizadas hoy en día en el diagnóstico en oftalmología (3-9). 2)  Su uso en el laboratorio presenta menos problemas de tipo ético y económico que  el uso de otros animales como los primates. 3) El sistema de salida del humor  acuoso del ojo de cerdo es similar al humano (5).</P>     <P align=left>Estudios previos de nuestro grupo de investigación  han demostrado una similar distribución de las CGR de cerdo y humano (10,18:  García et al., 2005). Esta información permitirá analizar los mecanismos  implicados en la muerte selectiva de las CGR en el transcurso del glaucoma, ya  que se ha descrito una mayor susceptibilidad de las CGR de gran tamaño como  consecuencia de esta patología (11-13).</P>     <P align=left>Los modelos de glaucoma experimental más utilizados  se basan en el aumento crónico de la presión intraocular (PIO). Este aumento se  induce mediante la interrupción del drenaje de humor acuoso por sellado de la  malla trabecular mediante fotocoagulación con láser (14), la inyección  intraocular de sustancias obturadoras de la malla trabecular (15), la  microinyección de solución hiperosmótica en las venas limbares (16) y la  cauterización de las venas epiesclerares (17).</P>     <P align=left>El objetivo del presente trabajo es establecer un  modelo de glaucoma en cerdo, a través de la inducción del aumento de la PIO, que  mimetice la progresión de esta patología ocular en humanos.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=center><B>SUJETOS, MATERIAL Y MÉTODOS</P>     <P align=left>Inducción de glaucoma</P></B>     <P align=left>En el presente estudio se emplearon 16 cerdos adultos  de 6 meses de edad. Toda la experimentación se llevó a cabo siguiendo la  normativa de ARVO para el uso de animales en la investigación. Las distintas  intervenciones fueron realizadas en los animales bajo condiciones de anestesia  general [inyección intramuscular de hidrocloruro de ketamina  (Ketolar<SUP>®</SUP>, Parke-Davis, Barcelona, España) y Diazepam (Valium Sol.  Iny.; Roche Farma, S. A.; Madrid, España) (20 mg/kg cada uno)], ventilación  asistida y control de las constantes vitales.</P>     <P align=left>Los animales se dividieron en cuatro grupos  experimentales, utilizándose en todos los casos los ojos izquierdos como  tratados y los derechos como control:</P>     <P align=left>1) <I>Epiescleral:</I> Tres animales a los que se les  cauterizaron tres de las venas epiesclerales de los ojos izquierdos, siguiendo  el método descrito por Shareef et al (17). Los animales se mantuvieron con vida  durante 21 semanas tras la intervención.</P>     <P align=left>2) <I>Fluoroesferas:</I> Seis animales a los que se  les inyectó en la cámara anterior del ojo, una solución de fluoroesferas de  látex de 10 µm de diámetro (Molecular Probes. Invitrogen, S. A.; Barcelona,  España) disueltas en medio acuoso estéril con NaCl 0,15M y 0,02% Tween-20  (Sigma-Aldrich, Madrid, España), siguiendo el método descrito en mono (15). El  volumen de cada inyección fue de unos 100 µl, con un total de 2-4x10<SUP>5</SUP>  fluoroesferas. La inyección de fluoroesferas se realizó a razón de una vez por  semana a un subgrupo de animales (n=3) y dos inyecciones por semana a otro  subgrupo (n=3), a lo largo de 11 semanas.</P>     <P align=left>3) <I>Fluoroesferas + metil-celulosa: </I>Cuatro  animales recibieron inyecciones de una mezcla de fluoroesferas y metil-celulosa  al 2% (Methocel) en la cámara anterior del ojo. El volumen de cada inyección fue  de unos 100 µl (50 µl de metil-celulosa y 50 µl de solución de fluoroesferas),  el cual contenía un total de 1-2 x 10<SUP>5</SUP> fluoroesferas. Las inyecciones  se repitieron semanalmente a lo largo de 11 semanas. Los animales se mantuvieron  con vida durante 11 semanas tras la primera inyección.</P>     <P align=left>4) Vehículo tamponado: Tres animales recibieron  inyecciones de 100 µl o vehículo tamponado (solución salina), carente de  sustancias obturadoras, en la cámara anterior del ojo a lo largo de 11  semanas.</P>     <P align=left><B>Análisis de la presión intraocular</P> </B>     <P align=left>La PIO se midió semanalmente en todos los animales  utilizando un tonómetro de aplanación manual (Tono-Pen, TM, XL). Las medidas se  realizaron siempre a la misma hora del día (11:00 horas) tras instilar unas  gotas de anestésico tópico en la superficie ocular. Se tomaron 10 medidas en los  ojos controles (derechos) y tratados, cada una de las cuales es el valor medio  de 4 medidas calculado de manera automática por el tonómetro. Se descartaron los  valores que ofrecían varianzas superiores al 5%, y se calculó la media de las  medidas de PIO válidas para cada ojo.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left><B>Análisis de la distribución de las CGR tras el  aumento de la PIO</P> </B>     <P align=left>Las CGR fueron trazadas mediante 3-4 inyecciones de  Fluorogold al 3% (Molecular Probes. Invitrogen, S. A.; Barcelona, España) en  solución salina con DMSO al 0,1% que fueron aplicadas con una aguja de 30 g en  las zonas dorsal, temporal y ventral del nervio óptico una vez disecado el mismo  bajo condiciones de anestesia general. Transcurridas 36 horas el animal fue  sacrificado, las retinas fueron aisladas, fijadas en paraformaldehido al 4% y  montadas en plano con la capa de las CGR hacia arriba (9). Para visualizar las  CGR se empleó un microscopio de fluorescencia y las imágenes fueron capturadas  con una cámara digital. Se captaron imágenes correspondientes al 1,4% del área  total de la retina y se capturaron un total de 100 campos/retina distribuidos de  forma homogénea por toda la retina. Las imágenes fueron tomadas de forma  sistemática, sirviéndonos del disco óptico como punto de referencia.</P>     <P align=left>Se analizó el número de CGR presentes por campo, así  como el área y la longitud del eje mayor del soma de cada célula. A partir de  estos valores, se calcularon la densidad de CGR, el área media del soma y el  porcentaje de los grupos de tamaños.</P>     <P align=left>La comparación de los distintos parámetros entre los  ojos tratados y los controles se realizó mediante el test de la t de Student  para muestras relacionadas, utilizando el programa informático SPSS v.8.0 para  Windows (SPSS Inc. Chicago, Illinois, USA). El nivel de significación se  consideró p &lt;0,05.</P>     <P align=center><B>RESULTADOS</P>     <P align=left>Incremento de la presión intraocular</P></B>     <P align=left>La cauterización de las venas epiesclerales fue el  método que produjo un incremento de la PIO más duradero y significativo. El  aumento de la PIO fue aparente a la 3.ª semana tras la cauterización de las  venas epiesclerales, siendo significativo las semanas 3, 16 y 21. Así, la PIO  media y la desviación estándar de la media (D.E.) en los ojos control fue de  15,0 D.E. 2,4 mmHg mientras que en los ojos tratados este valor fue  significativamente mayor (20,1 D.E. 1,8). Las diferencias llegaron a tener un  valor máximo en la semana 16 (13,1 D.E. 4,1 mmHg en los ojos control y 20,9 D.E.  1,3 mmHg en los ojos cauterizados, p&lt;0,05). El aumento de la PIO en los ojos  cauterizados se mantuvo a lo largo de la mayor parte del período experimental  (<a href="#f1">fig. 1</a>). Un estudio más amplio referente al método de cauterización de las  venas epiesclerales ha sido publicado (18).</P>     <P align=center> <a name="f1"><img border="0" src="/img/revistas/aseo/v80n10/f04-01.gif" width="580" height="358"></a>    <BR><font size="2"><i><B>Fig. 1.</B> Presión intraocular (PIO) media a lo largo de las distintas semanas de  estudio. Se muestran la PIO media de los ojos controles&nbsp;    <br>  y de los ojos sometidos  a la cauterización de las venas epiesclerales en las distintas semanas de  estudio. Los valores se expresan en mmHg&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  y son la media y la desviación estándar  de la media (D.E.). Los resultados del análisis estadístico están representados&nbsp;    <br> por * p&lt;0,05 diferencias significativas con respecto al control.</i></font></P>     <P align=left>La inyección de una solución tamponada, carente de  sustancias obturadoras en la cámara anterior no produjo modificaciones  apreciables en la PIO (<a href="#f2">fig. 2A</a>).</P>     <P align=left>Asimismo, tampoco se observaron incrementos en la PIO  tras la inyección semanal de fluoroesferas en la cámara anterior del ojo y,  aunque la aplicación de dos inyecciones por semana produjo incrementos  ligeramente superiores de la PIO, no se observaron diferencias significativas  con respecto a los valores obtenidos para los ojos inyectados con vehículo  tamponado (<a href="#f2">figs. 2 B y C</a>).</P>     <P align=left>Por último, la inyección conjunta de fluoroesferas y  metil-celulosa en la cámara anterior del ojo produjo un mayor incremento de la  PIO que la inyección de fluoroesferas. Además, la máxima PIO alcanzada con este  método fue superior a la observada en el grupo epiescleral. Este valor máximo de  la PIO (28 D.E. 0,1 mmHg) se alcanza en la semana 3 de estudio. A pesar de este  aumento, la inyección de fluoroesferas y metil-celulosa no produce una elevación  mantenida de la PIO, ya que a partir de la semana 4 de tratamiento la PIO de los  ojos tratados disminuyó drásticamente (<a href="#f2">fig. 2D</a>).</P>     <P align=center> <a name="f2"><img border="0" src="/img/revistas/aseo/v80n10/f04-02.gif" width="576" height="399"></a>    <BR><i><font size="2"><B>Fig. 2.</B> Presión intraocular (PIO) media a lo largo de las distintas semanas de  estudio. Se muestran la PIO media de los ojos controles&nbsp;    <br>  y de los ojos sometidos  a inyecciones repetidas de vehículo tamponado, carente de sustancias obturadoras  de la malla trabecular en la cámara anterior.&nbsp;    <br>  A. Inyección de vehículo  tamponado, carente de sustancias obturadoras. B. Inyecciones semanales de  fluoresferas. C. Inyecciones de fluoresferas a razón&nbsp;    <br>  de 2 inyecciones por  semana. D. Inyección semanas de fluoroesferas y metil-celulosa en la cámara  anterior. Los valores se expresan en mmHg y son la media&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  y la desviación  estándar de la media (D.E.).</font></i></P>     <P align=left></P><B>     <P align=left>Alteración en la distribución de CGR</P></B>     <P align=left>El análisis de la distribución de CGR en los ojos  controles de cerdo muestra que la densidad y el tamaño de dichas células varía  en función de la excentricidad. Así, se pueden distinguir tres grandes regiones  en la retina: en la zona dorsal al disco óptico encontramos una banda,  denominada banda visual, en la que se concentra el mayor número de CGR de la  retina, con una densidad media de 4.276 D.E. 148 CGR/mm<SUP>2</SUP>. Además, en  esta banda se encuentran principalmente células con un tamaño del soma pequeño y  mediano. A medida que nos desplazamos hacia la periferia de la retina, la  densidad de CGR disminuye y aumenta el área media del soma de dichas células.  Así, se encontró una zona extensa de la retina, la retina media, con una  densidad de CGR de 838 D.E. 34 CGR/mm<SUP>2</SUP> y una zona más periférica con  valores de densidad de 239 D.E. 28 CGR/mm<SUP>2</SUP>.</P>     <P align=left>La cauterización de las venas epiesclerales provocó  una pérdida media del 18,8 D.E. 8% de CGR. Esta pérdida fue más acusada en las  zonas de la retina media, con un 13 D.E. 7,1% de pérdida de CGR y en la retina  periférica, con un 21 D.E. 5,3% (<a href="#t1">tabla I</a>, <a href="#f3"> fig. 3</a>). Además, se observó que tras  la cauterización de las venas epiesclerales se produce un aumento en el área  media del soma de las CGR. Este aumento fue mayor en aquellas zonas con mayor  pérdida de CGR, es decir, en las regiones media, donde se observó un aumento del  4% en el área media del soma de las CGR, y en la periférica donde el aumento del  área media del soma es del 10% (<a href="#t2">tabla II</a>).</P>     <P align=center><a name="t1"><IMG height=204 src="/img/revistas/aseo/v80n10/t04-01.gif" width=631 border=0></a></P>     <P align=center> <a name="f3"><img border="0" src="/img/revistas/aseo/v80n10/f04-03.jpg" width="550" height="494"></a>    <BR><font size="2"><i><B>Fig. 3.</B> Imágenes representativas de la retina media de cerdo control (izquierda)  y sometido a glaucoma experimental mediante&nbsp;    <br>  la cauterización de las venas  epiesclerales (derecha). Las imágenes de ambos lados corresponden a zonas  equivalentes de la retina.&nbsp;    <br>  Las células ganglionares fueron trazadas de forma  retrógrada con Fluoro-Gold in vivo. La barra de escala representa 25  mm.</i></font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=center> &nbsp;</P>     <P align=left>La inyección de fluoroesferas en la cámara anterior  del ojo no produjo cambios significativos en la densidad de CGR en las retinas  tratadas (<a href="#t1">tabla I</a>), sin embargo, se observó una disminución del área media del  soma de las CGR en este grupo. Este descenso fue significativo en las zonas de  la banda visual, con un 37% de disminución y en la retina media, con un 24% de  disminución (<a href="#t2">tabla II</a>).</P>     <P align=center><a name="t2"><IMG height=248 src="/img/revistas/aseo/v80n10/t04-02.gif" width=659 border=0></a></P>     <P align=left>En cuanto a los ojos tratados con inyecciones  conjuntas de fluoroesferas y metil-celulosa, los resultados muestran que este  tratamiento no produce cambios significativos ni en la densidad ni en el tamaño  de las CGR (<a href="#t1">tabla I</a> y <a href="#t2">II</a>).</P>     <P align=center><B>DISCUSIÓN</P> </B>     <P align=left>La cauterización de las venas epiesclerales fue el  único de los métodos ensayados que produjo un incremento mantenido de la PIO. El  incremento de la PIO alcanzado en los ojos tratados con este método es del orden  de 1,6 veces sobre control. Este aumento es similar al descrito por otros  autores en rata (17). En cuanto a los otros métodos analizados, observamos que  la inyección de fluoroesferas no produce cambios significativos de la PIO. Sin  embargo, se ha descrito que este método de inducción de glaucoma produce un  aumento significativo de la PIO en el mono (15). Es posible que las diferencias  entre nuestros resultados y los observados en mono se deban, al menos en parte,  a la anatomía del canal de Schlemm. A diferencia del de los primates, el canal  de Schlemm de cerdo, denominado plexo angular, está compuesto por múltiples  canalículos (fig. <a href="#f4"> 4</a> y <a href="#f5">5</a>), y es posible que parte de los canalículos no se  obstruyan por las fluoroesferas, lo que compensaría la pérdida de drenaje de los  canales obturados. Otra posible explicación es que el pequeño diámetro de estos  canalículos no permita la correcta inserción de las fluoroesferas, ya que se ha  descrito que éstas tienden a formar agregados (15) cuyo tamaño podría ser  superior al de los canalículos del plexo angular del cerdo.</P>     <P align=center> <a name="f4"><img border="0" src="/img/revistas/aseo/v80n10/f04-04.jpg" width="321" height="500"></a>    <BR><i><font size="2"><B>Fig. 4.</B> Imágenes correspondientes a secciones de la malla trabecular&nbsp;    <br>  de los ojos  de cerdo (imagen superior) y humano (imagen inferior),&nbsp;    <br>  en las que se ve en  detalle el canal de Schlemm (asteriscos).&nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  Nótese que el canal de Schlemm en el  ojo de cerdo está constituido&nbsp;    <br>  por múltiples canalículos,en contraste con el  humano que está constituido por un único canal.&nbsp;    <br>  La barra representa 50  mm.</font></i></P>     <P align=center> &nbsp;</P>     <P align=center> <a name="f5"> <img border="0" src="/img/revistas/aseo/v80n10/f04-05.jpg" width="550" height="275"></a>    <BR><font size="2"><i><B>Fig. 5.</B> Fotomontaje donde se muestra una sección del ángulo iridocorneal del ojo  de cerdo que fue sometido&nbsp;    <br>  a glaucoma experimental mediante inyección de  fluoresferas en la cámara anterior.&nbsp;    <br>  Se aprecia como las fluoroesferas (verde  fluorescente) se localizan principalmente en torno a la entrada&nbsp;    <br>  de los  canalículos del plexo angular del canal de Schlemm (PA) donde forman agregados.&nbsp;    <br> También se observan fluoresferas en la zona del iris (I). Abreviaturas: C:  córnea; CC: cuerpo ciliar.</i></font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align=left>&nbsp;</P>     <P align=left>En cuanto a la inyección simultánea de fluoroesferas  de látex y metil-celulosa, este método produjo el mayor aumento de la PIO  durante las primeras semanas de tratamiento. Es posible que la metil-celulosa  sea capaz, en fases iniciales, de obstruir de manera eficaz los canalículos del  plexo angular, ya que no forma agregados como las fluoroesferas. Sin embargo, la  bajada brusca de la PIO de los ojos tratados a partir de la semana 4 sugiere que  la solución de fluoroesferas y metil-celulosa puede producir un ensanchamiento  de los canales del plexo angular de manera similar a lo propuesto por otros  autores. Éstos sugirieron que el aumento de la PIO producido inicialmente tras  la inyección de fluoroesferas, forzaba a éstas hacia el interior de la  trabécula, ensanchando los canalículos y haciendo que aumentara el flujo de  humor acuoso, siendo necesarias sucesivas inyecciones para conseguir taponar de  nuevo los canalículos ensanchados (15). Otra posible explicación es que en las  inyecciones de la mezcla de fluoroesferas y metil-celulosa, la concentración de  fluoroesferas es la mitad que la empleada en las inyecciones con sólo  fluoroesferas, y que a dicha concentración las fluoroesferas no logren obturar  los canalículos del plexo angular.</P>     <P align=left>Con respecto a la alteración en la distribución de  CGR observada con los diferentes modelos experimentales, la cauterización de las  venas epiesclerales fue el único de los métodos empleados que produjo una  pérdida de CGR. Los otros dos métodos no produjeron una disminución  significativa de la densidad de CGR, lo que se correlaciona con la ausencia de  un aumento en la PIO observada para ambos métodos.</P>     <P align=left>La cauterización de las venas epiesclerales produce  un patrón de pérdida de CGR semejante al observado en pacientes con glaucoma y  en modelos de glaucoma experimental, en los que se ha descrito una mayor pérdida  de visión o una mayor muerte de CGR en la zona correspondiente a la retina  periférica (19).</P>     <P align=left>Con respecto a este método se observó un aumento del  área media del soma de las CGR en las regiones más periféricas de la retina,  donde la pérdida de CGR es mayor. Otros autores, utilizando el método de  cauterización de las venas epiesclerales en la rata observaron también un  aumento del área del soma de las CGR (20). Se ha sugerido que las CGR que  sobreviven a la subida de presión, podrían verse estimuladas a ocupar la pérdida  de cobertura retiniana, aumentando el área del soma y/o del campo dendrítico  (20-22). De forma alternativa, el aumento del volumen del soma de las CGR previo  a la muerte podría representar una pérdida de la regulación osmótica, secundaria  al daño celular (23).</P>     <P align=left>En cuanto a la inyección de sustancias obturadoras en  la cámara anterior, este método no produjo cambios en la densidad de CGR. Sin  embargo, sí hemos observado una disminución significativa en el área media del  soma de las CGR tras la inyección de fluoroesferas en la cámara anterior. Este  resultado, que es contrario a lo observado en las CGR de las retinas  cauterizadas, podría explicarse por el estado del daño en el que se encuentra la  CGR en el momento de realizar el análisis. Así, teniendo en cuenta que en el  caso de la inyección de fluoroesferas no hemos encontrado una pérdida de CGR, la  disminución del área media del soma de estas células podría estar indicando una  fase temprana del daño glaucomatoso. Esta posibilidad ha sido propuesta por  otros autores utilizando un modelo de glaucoma basado en la fotocoagulación con  láser en mono (23).</P>     <P align=left>Se puede concluir que la cauterización de las venas  epiesclerales es el mejor de los 3 métodos empleados en este estudio para  producir un aumento de la PIO en el cerdo. Siguiendo este método se produce una  pérdida de CGR, así como un aumento en el área media del soma de las mismas,  principalmente en la zona más periférica de la retina.</P>     <P align=left>&nbsp;</P>     <P align=center><B>BIBLIOGRAFÍA</P> </B>       <!-- ref --><P align=left>1. Muller B, Boeck T, Hartmann C. Effect of excimer laser beam  delivery and beam shaping on corneal sphericity in photorefractive  keratectomy. J Cataract Refract Surg 2004; 30: 464-470. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867980&pid=S0365-6691200500100000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>2. Li ZY, Wong F, Chang JH, Possin DE, Hao Y, Petters RM, et al.  Rhodopsin transgenic pigs as a model for human retinitis pigmentosa. Invest  Ophthalmol Vis Sci 1998; 39: 808-819. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867981&pid=S0365-6691200500100000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>3. Prince JH, Diesem CD, Eglitis I, Ruskell GL. Anatomy and  histology the eye and orbit in domestic animals. In: Thomas CC. The pig.  Springfield: Charles C Thomas Publisher; 1960; 210-230. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867982&pid=S0365-6691200500100000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>4. Beauchemin ML. The fine structure of the pig´s retina. Albrecht  Von Graefes Arch Klin Exp Ophthalmol 1974; 190: 27-45. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867983&pid=S0365-6691200500100000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>5. McMenamin PG, Steptoe RJ. Normal anatomy of the aqueous humour  outflow system in the domestic pig eye. J Anat 1991; 178: 65-77. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867984&pid=S0365-6691200500100000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>6. Olsen TW, Sanderson S, Feng X, Hubbard WC. Porcine sclera:  thickness and surface area. Invest Ophthalmol Vis Sci 2002; 43: 2529-2532.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867985&pid=S0365-6691200500100000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>7. Hendrickson A, Hicks D. Distribution and density of medium- and  short-wavelength selective cones in the domestic pig retina. Exp Eye Res 2002;  74: 435-444. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867986&pid=S0365-6691200500100000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>8. Ruiz-Ederra J, Hitchcock PF, Vecino E. Two classes of astrocytes  in the adult human and pig retina in terms of their expression of high  affinity NGF receptor (TrkA). Neurosci Lett 2003; 337: 127-130. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867987&pid=S0365-6691200500100000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>9. Ruiz-Ederra J, Garcia M, Hicks D, Vecino E. Comparative study of  the three neurofilament subunits within pig and human retinal ganglion cells.  Mol Vis 2004; 10: 83-92. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867988&pid=S0365-6691200500100000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>10. García M, Ruiz-Ederra J, Hernandez-Barbachano H, Vecino E.  Topography of pig retinal ganglion cells. J Comp Neurol. 2005; 486: 361-372.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867989&pid=S0365-6691200500100000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>11. Glovinsky Y, Quigley HA, Pease ME. Foveal ganglion cell loss is  size dependent in experimental glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci 1993; 34:  395-400. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867990&pid=S0365-6691200500100000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>12. Vickers JC, Schumer RA, Podos SM, Wang RF, Riederer BM, Morrison  JH. Differential vulnerability of neurochemically identified subpopulations of  retinal neuron in a monkey model of glaucoma. Brain Res 1995; 680: 23-35. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867991&pid=S0365-6691200500100000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>13. Shou T, Liu J, Wang W, Zhou Y, Zhao K. Differential dendritic  shrinkage of alpha and beta retinal ganglion cells in cats with chronic  glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci 2003; 44: 3005-3010. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867992&pid=S0365-6691200500100000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>14. Quigley HA, Hohman RM. Laser energy levels for trabecular  meshwork damage in the primate eye. Invest Ophthalmol Vis Sci 1983; 24:  1305-1317. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867993&pid=S0365-6691200500100000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>15. 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Shareef SR, Garcia-Valenzuela E, Salierno A, Walsh J, Sharma SC.  Chronic ocular hypertension following episcleral venous occlusion in rats. Exp  Eye Res 1995; 61: 379-382. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=867996&pid=S0365-6691200500100000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align=left>18. Ruiz-Ederra J, Garcia M, Hernandez M, Urcola H,  Hernandez-Barbachano E, Araiz J, et al. The pig eye as a novel model of  glaucoma. 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