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<journal-title><![CDATA[Cirugía Plástica Ibero-Latinoamericana]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Fracción vascular estromal de tejido adiposo: cómo obtener células madre y su rendimiento de acuerdo a la topografía de las áreas donantes: estudio preliminar]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Fração vascular estromal de tecido adiposo: como obter células-tronco e seu rendimiento de acordo com a topografia as áreas doadoras: nota prévia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Stromal vascular fraction from fat tissue: obtaining stem cells and their yield according to the topography of the donor areas: previous note]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The harvest of adipose tissue will be a promising labor marketing for plastic surgeons, since tissue banks will certainly choose fat as the easiest way to obtain a high-yield source of stem cells, as this type of tissue can produce al least five times more colony-forming units (CFUs) than bone marrow extracts. The aim of this study is to show what can be expected from fat tissues as an origin of adult stromal vascular fraction (SVF) cells, and to evaluate the best areas to be elected as donor sites within the human body, all obtained by liposuction. The routine to obtain SVF cells by collagenase digestion of human adipose tissue samples was described. At the time of harvest, these cells displayed a viability of 92+/- 1% based on Trypan Blue exclusion, SVF cells were counted after 48 hours culture in Dulbecco &acute;s modified Eagle medium (DMEM) in a Neubauer counting chamber. The average yield of SVF cells was 7,2 +/- 1,3 x 103 cells per milliliter of liposuctioned tissue. As a conclusion, best strategies to obtain SVF cells are an important challenge nowadays. This study, although preliminary, showed that SVF may be easily obtained From liposuction. Comparison among different donor sites showed a 22% higher yield of SVF cells when fat tissue had been obtained from the trunk regions, when confronted with limbs.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <table border="0" width="100%"> <tr> <td width="90%">     <p align="center"><font face="Arial Narrow" size="6"><b>Fracci&oacute;n vascular estromal de tejido adiposo: c&oacute;mo obtener c&eacute;lulas madre y su rendimiento de acuerdo a la topograf&iacute;a de las &aacute;reas donantes: estudio preliminar</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="5" face="Arial Narrow">Stromal vascular fraction from fat tissue: obtaining stem cells and their yield according to the topography of the donor areas: previous note</font></b></p> </td> <td width="10%"> <img src="/img/revistas/cpil/v34n1/71_foto_cirujano.jpg" width="118" height="169"></p>     <p><b><font size="2" face="Arial">Almeida, K. A.</font></b></p>     <p>&nbsp;</td> </tr> <tr> <td width="90%"><b><font face="Arial">Almeida, K. A.*, Campa, A.*, Alonso-Vale, M. I. C. **, Lima, F. B.**, Daud, E. D.***, Stocchero, I. N.****</font></b></td> <td width="10%">&nbsp;</td> </tr> </table>     <p>&nbsp;</p> <table border="0" width="100%"> <tr> <td width="48%">     <p align="right"><font size="5" face="Arial Narrow">Resumen</font></p> <hr color="#000000" size="1">     <p align="left"><font face="Arial" size="2">La obtenci&oacute;n de tejido adiposo supone un nuevo y prometedor mercado de trabajo para los cirujanos pl&aacute;sticos, ya que los bancos de tejidos escoger&aacute;n de forma acertada la grasa como el medio m&aacute;s f&aacute;cil para obtener fuentes de c&eacute;lulas madre de alto rendimiento, en la medida en que este tejido es capaz de producir al menos cinco veces m&aacute;s unidades formadores de colonias (UFCs) que la m&eacute;dula &oacute;sea. El objetivo del presente trabajo es mostrar lo que se puede esperar del tejido adiposo como origen de c&eacute;lulas adultas de fracci&oacute;n vacular estromal (FVE), y se&ntilde;alar las mejores &aacute;reas del cuerpo humano para ser elegidas como donantes de tejido adiposo, extra&iacute;do mediante liposucci&oacute;n.    <br>Describimos la rutina seguida para la obtenci&oacute;n de c&eacute;lulas de FVE mediante la digesti&oacute;n de las muestras de tejido adiposo humano con colagenasa. En el momento de su recolecci&oacute;n, esas c&eacute;lulas presentaban una viabilidad de 92+/- 1% basada en exclusi&oacute;n por Azul de Trypan. Las c&eacute;lulas de FVE recontadas despu&eacute;s de permanecer 48 horas en medio de cultivo de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM), dentro de una c&aacute;mara de Neubauer, tras lo cual el rendimiento medio de las c&eacute;lulas de FVE fue de 7,2 +/- 1,3 x 103 c&eacute;lulas por mililitro de tejido lipoaspirado.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>En conclusi&oacute;n, pensamos que supone un desaf&iacute;o en la actualidad el mejorar las estrategias para la obtenci&oacute;n de c&eacute;lulas de FVE. Este trabajo, por ahora preliminar, muestra que las c&eacute;lulas de FVE pueden ser f&aacute;cilmente obtenidas por medio de lipoaspiraci&oacute;n. La comparaci&oacute;n entre las diferentes &aacute;reas donantes, mostr&oacute; un rendimiento 22% m&aacute;s alto para las c&eacute;lulas de FVE cuando el tejido adiposo hab&iacute;a sido obtenido del tronco, en comparaci&oacute;n a cuando lo hab&iacute;a sido de los miembros.</font></td> <td width="4%">&nbsp;</td> <td width="48%" valign="top">     <p align="right"><font size="5" face="Arial Narrow">Abstract</font></p> <hr color="#000000" size="1">     <p align="left"><font face="Arial" size="2">The harvest of adipose tissue will be a promising labor marketing for plastic surgeons, since tissue banks will certainly choose fat as the easiest way to obtain a high-yield source of stem cells, as this type of tissue can produce al least five times more colony-forming units (CFUs) than bone marrow extracts.    <br>The aim of this study is to show what can be expected from fat tissues as an origin of adult stromal vascular fraction (SVF) cells, and to evaluate the best areas to be elected as donor sites within the human body, all obtained by liposuction.    <br>The routine to obtain SVF cells by collagenase digestion of human adipose tissue samples was described. At the time of harvest, these cells displayed a viability of 92+/- 1% based on Trypan Blue exclusion, SVF cells were counted after 48 hours culture in Dulbecco &acute;s modified Eagle medium (DMEM) in a Neubauer counting chamber.    <br>The average yield of SVF cells was 7,2 +/- 1,3 x 103 cells per milliliter of liposuctioned tissue.    <br>As a conclusion, best strategies to obtain SVF cells are an important challenge nowadays. This study, although preliminary, showed that SVF may be easily obtained    <br>From liposuction. Comparison among different donor sites showed a 22% higher yield of SVF cells when fat tissue had been obtained from the trunk regions, when confronted with limbs.</font></td> </tr> </table> <table border="0" width="100%"> <tr> <td width="50%">     <p align="center"> <table border="1"width="70%"> <tr> <td width="100%"><font face="Arial Narrow"><b>Palabras clave</b> C&eacute;lulas madre, Grasa, Tejido adiposo, Lipoaspiraci&oacute;n, Lipectom&iacute;a, Fracci&oacute;n vascular estromal</font></P>     <p><font face="Arial Narrow"><b>C&oacute;digo num&eacute;rico</b>19</font></p></td> </tr> </table> </td> <td width="50%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"> <table border="1"width="70%" id="AutoNumber5"> <tr> <td width="100%"><font face="Arial Narrow"><b>Key words</b> Stem cells, Fat, Adipose tissue, Liposuction, Lipectomy, Stromal vascular fraction.</font>     <p><font face="Arial Narrow"><b>Numeral Code</b> 19</font></p></td> </tr> </table> </td> </tr> </table>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Arial" size="2">* Departamento de An&aacute;lisis Cl&iacute;nicos y Toxicol&oacute;gicos, Facultad de Farmacia, Universidad de S&atilde;o Paulo, Brasil    <br>** Departamento de Fisiolog&iacute;a y Biof&iacute;sica, Instituo de Ciencias Biom&eacute;dicas, Universidad de S&atilde;o Paulo, Brasil    <br>*** Departamento de Cirug&iacute;a Pl&aacute;stica, Facultad de Medicina, Universidad de ABC, S&atilde;o Paulo, Brasil    <br>**** Jefe del Departamento de Cirug&iacute;a Pl&aacute;stica, Hospital Santa Catarina, S&atilde;o Paulo, Brasil</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Introducci&oacute;n</font><font face="Arial" size="2"></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">La Cirug&iacute;a Pl&aacute;stica, en su busca por la reparaci&oacute;n y la mejor&iacute;a est&eacute;tica, ha indagado en diversas fuentes a lo largo de los tiempos, en busca de las mejores soluciones, algunas todav&iacute;a en fases experimentales (1-3). Actualmente la investigaci&oacute;n en torno a las denominadas c&eacute;lulas madre adultas, muestra un camino prometedor en el campo de la Medicina y de la Cirug&iacute;a Reparadora. Las c&eacute;lulas de la fracci&oacute;n vascular estromal (FVE) humana ya fueron aisladas de la m&eacute;dula &oacute;sea, del periostio, del hueso trabecular, del tejido adiposo, de la sinovial, del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico y de la dentici&oacute;n decidual (4-7). En la actualidad, existen diversos m&eacute;todos para aislar FVE basados en sus caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas y f&iacute;sico-qu&iacute;micas, como por ejemplo, su adherencia a pl&aacute;sticos o a otros componentes de la matriz extracelular. Debido a su facilidad de aislamiento y a su extenso potencial de diferenciaci&oacute;n, se piensa que la FVE est&aacute; compuesta por tipos de c&eacute;lulas madre con buenas perspectivas para ser introducidas en breve en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica. La identificaci&oacute;n de varias FVE que mantiene su capacidad para diferenciarse en m&uacute;ltiples tipos de c&eacute;lulas, ha representado una etapa cr&iacute;tica en la obtenci&oacute;n de potenciales fuentes de c&eacute;lulas para la ingenier&iacute;a tisular.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">El tejido adiposo representa una fuente alternativa de c&eacute;lulas madre disponible de forma rutinaria en grandes cantidades (litros) a trav&eacute;s de liposucci&oacute;n. Los dep&oacute;sitos subcut&aacute;neos de tejido adiposo son accesibles, abundantes y reponibles, por lo que suponen una reserva potencial de c&eacute;lulas madre adultas en cada individuo. Muchos grupos de investigaci&oacute;n, trabajando de forma independiente, han demostrado que las c&eacute;lulas madre derivadas del tejido adiposo consiguen diferenciarse <i> in vitro</i> en m&uacute;ltiples linajes, entre los cuales encontramos adipocitos, condrocitos, hepatocitos y osteoblastos, adem&aacute;s de c&eacute;lulas endoteliales, epiteliales, hematopoy&eacute;ticas, neuronales y miog&eacute;nicas (8-12). Se han empleado muchos t&eacute;rminos para identificar las c&eacute;lulas de FVE, incluyendo los de c&eacute;lulas precursoras de adipocitos, preadipocitos, c&eacute;lulas tronco adultas derivadas del subcut&aacute;neo, c&eacute;lulas estromales derivadas del tejido adiposo, c&eacute;lulas estromales adherentes derivadas del tejido adiposo, c&eacute;lulas de lipoaspirado procesado y c&eacute;lulas tronco derivadas del tejido adiposo. En este trabajo emplearemos el t&eacute;rmino c&eacute;lulas de FVE.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Aunque algunos grupos hayan centrado su atenci&oacute;n exclusivamente en la subpoblaci&oacute;n expandida adherente al pl&aacute;stico en varios estad&iacute;os, otros han trabajado con la poblaci&oacute;n de c&eacute;lulas de FVE m&iacute;nimamente procesadas. Por tanto, la mayor parte del conocimiento actual ha evolucionado desde estudios que investigaron las propiedades de su progenie <i>in vitro</i>. Es m&aacute;s, grupos de esas c&eacute;lulas pueden ser inducidos a expresar el perfil bioqu&iacute;mico de muchos tipos de c&eacute;lulas, bajo condiciones apropiadas de cultivo <i> in vitro</i>. Despu&eacute;s de su expansi&oacute;n <i>in vitro</i>, est&aacute; descrito que el n&uacute;mero de FVE <i>in vivo</i> aument&oacute; de 10<sup>5</sup> a 10<sup>6</sup> su densidad original en el tejido adiposo. Por toro lado, los resultados var&iacute;an significativamente en muchas publicaciones, probablemente porque todav&iacute;a no se ha establecido ning&uacute;n protocolo est&aacute;ndar. En consecuencia, falta una estimaci&oacute;n m&aacute;s precisa del n&uacute;mero de FVE.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El objetivo del presente trabajo fue protocolizar un m&eacute;todo para el aislamiento, mantenimiento y rendimiento de FVE humanas obtenidas a partir de tejido adiposo de distintas regiones del tejido subcut&aacute;neo, mediante lipoaspiraci&oacute;n, dado que las c&eacute;lulas madre derivadas del tejido adiposo presentan ventajas potenciales para su aplicaci&oacute;n en ingenier&iacute;a tisular.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Material y m&eacute;todo</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Aislamos un total de 12 muestras de tejido adiposo humano (ginecomastia bilateral n=1, abdomen n=3, "cartucheras" n=3, flancos n=2, cara interna de los muslos n=1 y brazos n=2), obtenidas a partir de 21 &aacute;reas tratadas en 7 pacientes consecutivos (1 hombre y 6 mujeres) sometidos a cirug&iacute;a electiva (<a href="/img/revistas/cpil/v34n1/71_tabla1.jpg" target="_blank">Tabla I</a>). La edad media (media +/- desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DP)) fue de 45 +/- 13 a&ntilde;os, con un rango de 36 a 68 a&ntilde;os. El &iacute;ndice de masa corporal (IMC) fue de 24 +/-3, rango de 22 a 29. Ning&uacute;n paciente presentaba infecci&oacute;n, enfermedad o alteraci&oacute;n endocrina. Este estudio fue aprobado y se gui&oacute; por las orientaciones del Comit&eacute; de Etica de la Facultad de Farmacia de la Universidad de S&atilde;o Paulo, Brasil. Todos los pacientes fueron informados de los objetivos y procedimientos de la investigaci&oacute;n y firmaron su consentimiento por escrito.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b> Preparaci&oacute;n de los tejidos y aislamiento de las c&eacute;lulas</b>    <br>Utilizamos c&aacute;nulas con di&aacute;metro interno de 3 a 5 mm, conectadas a jeringa de aspiraci&oacute;n de 60 ml. (<a href="#f1">Fig. 1</a>), para los procedimientos de lipoaspiraci&oacute;n. El aislamiento de los adipocitos se hizo de acuerdo con Rodbell (13). Las muestras de tejido adiposo (20 ml) fueron fragmentadas con tijera fina e introducidas en frascos (4 g/ frasco), cada uno de ellos con un contenido de 20 ml. de DMEM est&eacute;ril, 5 mM de glucosa, 1% de alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina (ASB) fracci&oacute;n V, antibi&oacute;ticos (100 &mu;M/ml de Penicilina en 100 &mu;g/ml de Estrptomicina) y 1 mg/ml de Colagenasa tipo II, ph 7,4. La mezcla fue incubada en un agitador orbital a 150 rpm durante 30 minutos a 37º C.</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f1"><img src="/img/revistas/cpil/v34n1/71_fig1.jpg" width="347" height="174"></font></p></a>     <p align="center"><b><font size="2" face="Arial">Fig. 1. Grasa lipoaspirada. C&aacute;nula con di&aacute;metro interno de 5 mm    <br>conectada a jeringa de 60 ml empleada para la lipoaspiraci&oacute;n.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>Gordura lipoaspirada.</font></b></p>     <p><font face="Arial" size="2">El material digerido fue filtrado a trav&eacute;s de una malla pl&aacute;stica gruesa y, en seguida, de una malla pl&aacute;stica fina, siendo despu&eacute;s transferido a un tubo pl&aacute;stico c&oacute;nico de 50 ml. El filtrado resultante fue centrifugado a 300 G durante 5 minutos. Despu&eacute;s de la centrifugaci&oacute;n, hab&iacute;a 3 capas reconocibles: una capa blanca fluctuante compuesta por los adipocitos, el medio de digesti&oacute;n y un sedimento que conten&iacute;a las c&eacute;lulas FVE m&aacute;s los eritrocitos (<a href="#f2">Fig.2</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f2"><img src="/img/revistas/cpil/v34n1/71_fig2.jpg" width="122" height="212"></font></p></a>     <p align="center"><b><font size="2" face="Arial">Fig. 2. Capa blanca flotante constituida por adipocitos,    <br>el medio de digesti&oacute;n y un sedimento que contiene    <br> las c&eacute;lulas de FVE m&aacute;s eritrocitos.    <br>Uma camada branca flutuante constitu&iacute;da de adip&oacute;citos;    <br>o meio de digest&atilde;o; e o pellet contendo as c&eacute;lulas da FVE mais eritr&oacute;citos.</font></b></p>     <p><font face="Arial" size="2">El sedimento de FVE del fondo del tubo de centrifugado fue resuspendido en 6 ml de tamp&oacute;n; entre tanto, al&iacute;cuotas de 3 ml de la &uacute;ltima mezcla fueron colocadas en una placa de cultivo de 6 pozos. Las c&eacute;lulas fueron alimentadas con medio estromal compuesto de DMEM suplementado con 10% de suero fetal bovino (SFB) y 1% de soluci&oacute;n antibi&oacute;tica (100 &mu;U/ml de Penicilina y 100 &mu;g/ml de Estrptomicina) y mantenidas durante 48 horas en incubadora de CO2. Despu&eacute;s de este periodo, el medio de incubaci&oacute;n fue eliminado y la placa lavada cuatro veces, cada una de ellas con 3 ml de soluci&oacute;n salina est&eacute;ril tamponada con fosfato, a fin de eliminar cualquier c&eacute;lula noadherente. Las c&eacute;lulas adherentes (<a href="#f3">Fig.3</a>) fueron tripsinizadas, recolectadas, centrifugadas a 300 G y resuspendidas en 1 ml de DMEM con 10 % de SFB.</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f3"><img src="/img/revistas/cpil/v34n1/71_fig3.jpg" width="346" height="283"></p></a></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b><font size="2" face="Arial">Fig. 3. C&eacute;lulas adherentes de FVE. As c&eacute;lulas aderentes da FVE.</font></b></p>     <p><font face="Arial" size="2">Se contaron las c&eacute;lulas en una c&aacute;mara de Neubauer. En el momento de la recolecci&oacute;n, esas c&eacute;lulas presentaban una viabilidad de 92 +/- 1%, basada en exclusi&oacute;n con Azul de Trypan. Las c&eacute;lulas fueron vueltas a colocar en placas e incubadas por un periodo adicional de 21 a 28 d&iacute;as, hasta que se obtuvo confluencia (<a href="#f4">Fig.4</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f4"><img src="/img/revistas/cpil/v34n1/71_fig4.jpg" width="346" height="258"></font></a></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Arial">Fig.4. C&eacute;lulas colocadas en placas e incubadas durante un periodo de    <br> 21 a 28 d&iacute;as, hasta obtener confluencia.    <br>As c&eacute;lulas foram plaqueadas e incubadas por um per&iacute;odo de    <br> 21 a 28 dias, at&eacute; se obter a conflu&ecirc;ncia acima.</font></b></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Resultados</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Los lipoaspirados de tejido adiposo subcut&aacute;neo obtenidos de 21 &aacute;reas donantes (en un total de 7 pacientes sometidos a liposucci&oacute;n electiva) fueron divididos en 12 muestras y procesados a trav&eacute;s de digesti&oacute;n por colagenasa y centrifugaci&oacute;n diferencial.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El rendimiento medio de las c&eacute;lulas de FVE fue de 7,2 +/- 1,3 x 103 c&eacute;lulas por mililitro de tejido lipoaspirado (<a target="_blank" href="/img/revistas/cpil/v34n1/71_tabla1.jpg">Tabla I</a>). En la &eacute;poca de la recolecci&oacute;n, esas c&eacute;lulas presentaban una viabilidad de 92 +/- 1% basada en exclusi&oacute;n por Azul de Trypan.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial Narrow" size="5">Discusi&oacute;n</font><font face="Arial" size="2"></font></p>      <p><font face="Arial" size="2">Se acepta com&uacute;nmente que las c&eacute;lulas madre y las c&eacute;lulas precursoras est&aacute;n relacionadas con el mantenimiento continuo y la reparaci&oacute;n de la mayor&iacute;a de los tejidos. Teniendo en consideraci&oacute;n que las c&eacute;lulas madre tienen capacidad de autorrenovaci&oacute;n y de diferenciaci&oacute;n en m&uacute;ltiples linajes, &eacute;stas c&eacute;lulas son de primordial importancia para el organismo, no solo durante su desarrollo, sino tambi&eacute;n durante su madurez, con respecto a la homeostasis celular.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El medio &oacute;ptimo para la obtenci&oacute;n de c&eacute;lulas de FVE supone un importante desaf&iacute;o en la actualidad. Tras el estudio preliminar que hemos presentado, podemos sacar en conclusi&oacute;n que el rendimiento de las c&eacute;lulas obtenidas a partir del tronco humano (ginecomastia - 8,0; abdomen - 7,75; flancos - 7,5) representa una media final de 7,75 x 10<sup>3</sup> /ml de grasa lipoaspirada, mientras que en el caso de los miembros ("cartucheras" - 7,5; cara interna de los muslos - 6,0; brazos - 5,5), el rendimiento final fue de 6,3 x 103 /ml de grasa lipoaspirada.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Conclusiones</font></p>     <P><font face="Arial" size="2">De acuerdo con los datos obtenidos del estudio, las &aacute;reas donantes preferidas para obtener un rendimiento 22% mayor de c&eacute;lulas de FVE se localizan en el tronco, que representa ser por tanto una mejor fuente de c&eacute;lulas madre que los miembros.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Todos estos datos, aunque preliminares, ya han influido en nuestra elecci&oacute;n de &aacute;reas donantes de preferencia para la realizaci&oacute;n de lipoinjertos, corroborando de esta manera los hallazgos obtenidos. Continuamos realizando estudios con marcadores celulares para comprobar la descendencia de las c&eacute;lulas madre transferidas y su rendimiento a partir de diversos grupos de portadores de liposdistrofias, as&iacute; como el empleo de variadas metodolog&iacute;as, lo cual ser&aacute; objeto de presentaciones futuras.</font></p>     <P><font face="Arial" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Queremos agradecer a la Fundaci&oacute;n de Ayuda a la Investigaci&oacute;n del Estado de S&atilde;o Paulo (Fapesp) y al Consejo Nacional de Desarrollo Cient&iacute;fico y Tecnol&oacute;gico (CNPq) por su apoyo financiero. Tambi&eacute;n a Guilherme Flosi Stocchero, estudiante de cuarto a&ntilde;o de la Facultad de Medicina de la Universidad de S&atilde;o Paulo, por su ayuda en la revisi&oacute;n y redacci&oacute;n de este art&iacute;culo.</font></P>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Direcci&oacute;n del autor</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Dra. Katia Aparecida Almeida    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>Avda. Dr. Lineu Prestes 580-Bloco 17    <br>Laborat&oacute;rio de Bioqu&iacute;mica Cl&iacute;nica    <br>055080-900 S&atilde;o Paulo, Brasil    <br>e-mail: <a href="mailto:katiacidi@yahoo.com">katiacidi@yahoo.com</a></font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Bibliograf&iacute;a</font></p>     <!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">1. Mont&oacute;n J. Y Cols.: " Experiencia cl&iacute;nica en el empleo de factores de crecimiento aut&oacute;logos obtenidos de plasma rico en plaquetas". Cir. pl&aacute;st. iberolatinoam. 2007, 33 (3): 155.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372532&pid=S0376-7892200800010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">2. Planas J. Y Cols.: " Supervivencia a largo plazo de los injertos grasos". Cir. pl&aacute;st. iberolatinoam. 2006, 32 (1): 26</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372533&pid=S0376-7892200800010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">3. Serra Ren&oacute;n y Cols.: "Uso de Factores de Crecimiento Plaquetar unidos a injertos de grasa para lipofilling facial en ritidectom&iacute;a". Cir. pl&aacute;st. iberolatinoam. 2006, 32 (3): 191.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372534&pid=S0376-7892200800010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">4. Ogawa R., Mizuno H., Watanabe A., Migita M., Shimada T., Hyakusoku: " Osteogenic and chondrogenic differentiation by adipose-derived stem cells harvested from Gfp transgenic mice". Biochem. Biophys. Res. Commun 2004, 313: 871.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372535&pid=S0376-7892200800010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">5. Safford KM., Hicok KC., Safford SD.: " Neurogenic differentiation of murine and human adipose-derived stromal cells". Biochem. Biophys. Res. Commun 2002, 294: 371.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372536&pid=S0376-7892200800010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">6. Zuk PA.,Zhu M., Ashjian P., De Ugarte DA., Huang JI., Mizuno H., Alfonso ZC, Fraser JK., Benhaim P., Hedrick MH: " Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells". Mol. Biol. Cell 2002, 13: 4279.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372537&pid=S0376-7892200800010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">7. Zuk PA., Zhu M., Mizuno H., Huang J., Futrell JW., Katz AJ., Benhaim P., Lorenz HP., Hedrick MH.: "Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies". Tissue Eng. 2001, 7: 211.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372538&pid=S0376-7892200800010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">8. Gimble JM., Guilak F.: " Adipose-derived adult stem cells: isolation, characterization and differentiation potential". Cytotherapy 2003, 5: 362.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372539&pid=S0376-7892200800010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">9. Hauner H., Enterenmann G., Wabistch M., Gaillard D., Ailaud G., Negrel R., Pfeiffer EF.: " Promoting effect of flucocorticoids on the differentiation of human adipocyte precursor cells curtured in a chemically defined medium". J. Clin. Invest. 1989, 84: 1663.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372540&pid=S0376-7892200800010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">10. Katz AJ., Tholpady A., Tholpady SS.: " Cell surface and transcriptional characterization of human adipose-derived adherent stromal (Hadas) cells". Stem cells 2005, 23: 412.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372541&pid=S0376-7892200800010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">11. Miranville A., Heeschen C., Sengenes C., Curat CA., Busse R., Bouloumie A.: " Improvement of postnatal neovascularization by human adipose tissue-derived stem cells". Circulation 2004, 110: 349.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372542&pid=S0376-7892200800010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">12. Mitchel JB., Mcintosh K., Zvonic S., Garret S., Floyd ZE., Kloster A., Dihalvorsen Y., Storms RW., Goh B., Kilroy G., Wu X., Gimble JM.: " Immunophenotype of human adipose-derived cells: temporal changes in stromal-associated and stem cell-associated markers". Stem cells 2006, 24: 376.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372543&pid=S0376-7892200800010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">13. Rodbell M.: " Metabolism of isolated fat cells. Effects of hormones on glucose metabolism and lipolysis". J. Biol. Chem. 1964, 239: 357.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1372544&pid=S0376-7892200800010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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