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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio anatómico de la transferencia de los nervios accesorio y toracodorsal al nervio cubital en el gato]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A brachial plexus injury is one of the most severe pathologies of the upper limb, and also has severe sequels. In the actual state of the art, nerve transfers are being used as first line of therapeutic approach in the reconstruction of proximal functions of the upper limb. In this study 20 nerve transfers were made to the ulnar nerve of the cat, using the spinal accessory nerve (10 cases) or the thoracodorsal nerve (10 cases). The opposite side was used as control. During next year, reinnervation was assessed by electromyography, nerve and muscle histology and histochemical evaluation of the spinal cord. We found that motoneurons of both donor nerves are able to make partial reinervation of the ulnar nerve territory.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Estudio experimental]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <table border="0" width="100%"> <tr> <td width="90%">     <p align="center"><b><font face="Arial Narrow" size="6">Estudio anat&oacute;mico de la transferencia de los nervios accesorio y toracodorsal al nervio cubital en el gato</font></b>     <p align="center"><b><font face="Arial Narrow" size="5">Anatomic study of spinal accesory and thoracodorsal nerves transfer to ulnar nerve in cats</font></b></td> <td width="10%">     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><img src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_foto_cirujano.jpg" width="159" height="220">    <BR><b>Martínez-Méndez, J.R.</b></font></p> </td> </tr> <tr> <td width="90%"><font face="Arial" size="3"><b>Mart&iacute;nez-M&eacute;ndez, J.R.*, Isla Guerrero, A.**, P&eacute;rez Conde, C.***, Morales, C.****, Casado P&eacute;rez, C.*****</b></font></td> <td width="10%"></td> </tr> </table>     <p></p> <table border="0" width="100%"> <tr> <td width="48%">     <p align="right"><font size="5" face="Arial Narrow">Resumen</font></p> <hr size="1">     <p align="left"><font face="Arial" size="2">Las lesiones del plexo braquial son una de las patolog&iacute;as m&aacute;s graves y con mayor n&uacute;mero de secuelas del miembro superior. En el momento actual las transferencias nerviosas se encuentran en primera l&iacute;nea del armamento terap&eacute;utico para reconstruir funciones proximales del miembro superior. En el estudio que presentamos se realizaron 20 transferencias nerviosas al nervio cubital del gato com&uacute;n, tomando bien el nervio accesorio del espinal (10 casos) o bien el nervio toracodorsal (10 casos). Como grupo control se utiliz&oacute; el lado contralateral al intervenido. Durante el a&ntilde;o siguiente, se evalu&oacute; la reinervaci&oacute;n mediante estudios electromiogr&aacute;ficos, histol&oacute;gicos de nervio y m&uacute;sculo, as&iacute; como histoqu&iacute;micos de m&eacute;dula espinal. Tras el an&aacute;lisis de los resultados encontramos que las motoneuronas de ambos nervios donantes son capaces de conseguir reinervaciones parciales del territorio cubital.</font>     <p align="left">&nbsp;</td> <td width="4%"></td> <td width="48%" valign="top">     <p align="right"><font face="Arial Narrow" size="5">Abstract</font></p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">A brachial plexus injury is one of the most severe pathologies of the upper limb, and also has severe sequels. In the actual state of the art, nerve transfers are being used as first line of therapeutic approach in the reconstruction of proximal functions of the upper limb. In this study 20 nerve transfers were made to the ulnar nerve of the cat, using the spinal accessory nerve (10 cases) or the thoracodorsal nerve (10 cases). The opposite side was used as control. During next year, reinnervation was assessed by electromyography, nerve and muscle histology and histochemical evaluation of the spinal cord. We found that motoneurons of both donor nerves are able to make partial reinervation of the ulnar nerve territory.</font>     <p>&nbsp;</td> </tr> </table> <table border="0" width="100%"> <tr> <td width="50%">     <p align="center"> <table border="1" width="70%"> <tr> <td width="100%"></p><font face="Arial Narrow" size="3"><b>Palabras clave</b> Estudio experimental. Lesiones del plexo braquial. Transferencia nerviosa.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="3"><b>C&oacute;digo num&eacute;rico</b>  15821-3104-3220</font></p> </td> </tr> </table> </p> </td> <td width="50%">     <p align="center"> <table border="1" width="70%"> <tr> <td width="100%"></p><font face="Arial Narrow" size="3"><b>Key words</b> Experimental study. Brachial plexus injury. Nerve transfer.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="3"><b>Numeral Code</b> 15821-3104-3220</font></p> </td> </tr> </table> </p> </td> </tr> </table>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Arial" size="2">* M&eacute;dico Adjunto. Servicio de Cirug&iacute;a Pl&aacute;stica.    <br>** M&eacute;dico Adjunto. Servicio de Neurocirug&iacute;a.    <br>*** M&eacute;dico Adjunto. Servicio de Neurofisiolog&iacute;a.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>**** Jefe de Servicio. Servicio de Anatom&iacute;a Patol&oacute;gica.    <br>***** Jefe de Servicio. Servicio de Cirug&iacute;a Pl&aacute;stica. Hospital Universitario La Paz. Madrid. Espa&ntilde;a.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><B>Trabajo galardonado con el Premio Mentor de Residentes del XLI Congreso de la Sociedad Española de Cirugía Plástica, Reparadora y Estética (SECPRE), Pamplona, España, junio de 2007, y con el Primer Premio del Concurso de Residentes del XVII Congreso de la Federación Iberolatinoamericana de Cirugía Plástica (FILACP), Quito, Ecuador, junio de 2008.</B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="5" face="Arial Narrow">Introducci&oacute;n</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Las lesiones del plexo braquial constituyen una de las patolog&iacute;as m&aacute;s lesivas para el miembro superior, con una alta tasa de secuelas. Desde su descripci&oacute;n han constituido un problema de salud importante debido a las graves deficiencias funcionales, tanto motoras como sensitivas, que las caracterizan. Adem&aacute;s, en el momento actual suponen un problema epidemiol&oacute;gico muy serio; tal y como describen numerosos autores afectan a pacientes j&oacute;venes, m&aacute;s frecuentemente varones, en los que dejan secuelas muy incapacitantes para las actividades laborales y de relaci&oacute;n. Todos los autores han relacionado sus casos con accidentes de tr&aacute;fico, alcanzando cifras del 90%, siendo los accidentes de motocicleta los m&aacute;s frecuentemente asociados (1,2). En Espa&ntilde;a muy pocos autores han recogido la incidencia de estas lesiones, en concreto, Le&oacute;n (3) en 1990 recog&iacute;a todas las lesiones secundarias a traumatismos de alta energ&iacute;a tras accidente de motocicleta, encontrando una incidencia de lesiones en el miembro superior del 20%, de las que las lesiones del plexo braquial eran un 0,2%. Se estima que en Espa&ntilde;a existen unos 160 a 320 adultos al a&ntilde;o con lesi&oacute;n del plexo braquial (4).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Los mecanismos para explicar la lesi&oacute;n del plexo braquial son variados. En el a&ntilde;o 1993 Coene (5) estableci&oacute; su clasificaci&oacute;n en tres tipos fundamentales: en primer lugar los traumatismos directos sobre el cuello y el miembro superior; en segundo lugar la tracci&oacute;n del miembro superior, que se suele acompa&ntilde;ar de la flexi&oacute;n del cuello hacia el lado contralateral y es el mecanismo m&aacute;s frecuentemente implicado en los accidentes de motocicleta y en los relacionados con el deporte; en &uacute;ltimo lugar, la compresi&oacute;n del plexo mediante elementos del tejido adyacente al mismo. Todos estos mecanismos descritos pueden coexistir, teniendo la lesi&oacute;n en ese caso peor pron&oacute;stico.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En algunas ocasiones la tensi&oacute;n ejercida sobre el miembro superior es de tal magnitud que provoca la lesi&oacute;n m&aacute;s devastadora sobre el plexo braquial: la avulsi&oacute;n radicular. Esta patolog&iacute;a supone el arrancamiento de las ra&iacute;ces de la m&eacute;dula espinal y se clasifica en dos grupos en funci&oacute;n de la localizaci&oacute;n del ganglio espinal con relaci&oacute;n al extremo distal de la lesi&oacute;n: pre o postganglionar, siendo m&aacute;s frecuente la primera (6).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">La reparaci&oacute;n del nervio perif&eacute;rico se basa en la reparaci&oacute;n de su continuidad mediante la aproximaci&oacute;n de ambos cabos, y cuando esto no es posible, mediante la interposici&oacute;n de un injerto. Pero estos m&eacute;todos de reparaci&oacute;n son inadecuados cuando la lesi&oacute;n implica la desconexi&oacute;n de las ra&iacute;ces nerviosas de la m&eacute;dula espinal. Para resolver estas situaciones Carlstedt public&oacute; sus resultados con la reconexi&oacute;n de las raicillas (7,8), sin embargo a d&iacute;a de hoy sus t&eacute;cnicas no han encontrado un lugar en el armamento terap&eacute;utico para la reconstrucci&oacute;n del plexo braquial.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Las lesiones del plexo por avulsi&oacute;n son situaciones complejas, que requieren exploraci&oacute;n y en muchas ocasiones, la fibrosis instaurada durante el tiempo que transcurre desde la lesi&oacute;n hasta la cirug&iacute;a hace especialmente dif&iacute;cil la reparaci&oacute;n. Por tanto, en aquellos casos en los que se produce la avulsi&oacute;n de las ra&iacute;ces espinales se considera de primera elecci&oacute;n la reconstrucci&oacute;n de la funci&oacute;n del miembro superior mediante la transferencia nerviosa, utilizando nervios que proceden de niveles no afectados por el mecanismo que caus&oacute; la lesi&oacute;n, bien pertenecientes al plexo (intraplexuales) o bien ajenos a &eacute;l (extraplexuales).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">En el tratamiento de las avulsiones del plexo braquial se establecen una serie de prioridades. En el caso de las lesiones totales del plexo, el primer objetivo es la restauraci&oacute;n de la estabilizaci&oacute;n del hombro, abducci&oacute;n del hombro y flexi&oacute;n del codo (9). Tal y como recoge Merrel en el &uacute;nico metan&aacute;lisis publicado hasta el momento sobre plexo braquial, existe una gran variabilidad en la presentaci&oacute;n cl&iacute;nica de las lesiones de plexo, as&iacute; como en los abordajes terap&eacute;uticos. Sin embargo encuentra que los resultados publicados hasta el a&ntilde;o 2001 son mejores utilizando intercostales para la flexi&oacute;n del codo y el nervio accesorio del espinal para la abducci&oacute;n del hombro (10).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Se ha trabajado mucho con lesiones del plexo braquial de origen obst&eacute;trico. En estos casos las lesiones son m&aacute;s frecuentes en las ra&iacute;ces altas, sin embargo en torno al 15% de las mismas afectan a la mano por implicaci&oacute;n de las ra&iacute;ces bajas (11). Las lesiones provocadas son similares a las que se observan en los adultos, sin embargo el potencial regenerativo de los ni&ntilde;os as&iacute; como la menor distancia que deben recorrer los axones, ha provocado que algunos autores hayan realizado t&eacute;cnicas para la reconstrucci&oacute;n de la mano en estos casos. Gilbert sugiere que siempre se debe intentar restaurar la funci&oacute;n de la mano (12), puesto que se alcanzan buenos resultados en un 76% de los casos en la mejor de las series (13). Posteriormente, se han publicado otros resultados como los de Pondaag (14) en 2006, que alcanza unos resultados de grado 3 de Raimondi para la funci&oacute;n de la mano en el 69% de los casos con injerto entre los cabos de las ra&iacute;ces y en el 33% de los casos con neurotizaci&oacute;n extraplexual. Sus resultados son tan alentadores que entre sus conclusiones dice que en los casos de lesi&oacute;n braquial obst&eacute;trica la mano debe ser el primer objetivo. Sin embargo los resultados en los casos de adultos son muy pobres. Los mejores resultados publicados son los de Terzis, que alcanza un 35% de pacientes en los que consigue flexi&oacute;n de dedos tras la cirug&iacute;a sobre el plexo y t&eacute;cnicas quir&uacute;rgicas paliativas (15). Los m&eacute;todos descritos hasta el momento que obtienen buenos resultados son fundamentalmente t&eacute;cnicas basadas en las transferencias tendinosas que palian el d&eacute;ficit motor distal, utilizando unidades m&uacute;sculo-tendinosas funcionales prescindibles, bien sean axiales o libres.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Existen diferentes m&eacute;todos para valorar la reinervaci&oacute;n motora, como son: la electromiograf&iacute;a, la valoraci&oacute;n cl&iacute;nica o los estudios histol&oacute;gicos de biopsias musculares o incluso nerviosas. Se han descrito otros m&eacute;todos que se pueden utilizar en el campo experimental, como es el uso de la peroxidasa de r&aacute;bano o fluorocromos. Estos m&eacute;todos son muy efectivos para valorar la regeneraci&oacute;n a trav&eacute;s de conexiones nerviosas en animales de experimentaci&oacute;n gracias a su transporte retr&oacute;grado desde el Sistema Nervioso Perif&eacute;rico hacia la m&eacute;dula espinal (16,17), lo que pondr&iacute;a de manifiesto las neuronas implicadas en la inervaci&oacute;n de un territorio, diferenci&aacute;ndolas de las que inervan otros miotomos dentro del total de motoneuronas que se encuentran en el asta anterior.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El objetivo de nuestro trabajo es el evaluar la reinervaci&oacute;n anat&oacute;mica del territorio cubital mediante la transferencia directa infraclavicular del nervio accesorio del espinal o el toracodorsal en el gato, comparando ambos. Para ello nos apoyamos en la electromiograf&iacute;a (EMG), en el estudio anatomopatol&oacute;gico de la biopsia de nervio y m&uacute;sculo del territorio reinervado y en el estudio del asta anterior medular tras el transporte retr&oacute;grado de la peroxidasa de r&aacute;bano (HRP).</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Material y m&eacute;todo</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Previamente al estudio experimental confirmamos mediante disecci&oacute;n en cad&aacute;ver, que la transferencia dise&ntilde;ada en el gato era t&eacute;cnicamente posible en humano en condiciones similares y realizamos el mismo protocolo quir&uacute;rgico en 3 cad&aacute;veres frescos en el Servicio de Anatom&iacute;a Patol&oacute;gica, confirmando la viabilidad anat&oacute;mica del dise&ntilde;o.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Dise&ntilde;o y t&eacute;cnica quir&uacute;rgica</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El estudio experimental se realiz&oacute; con 20 gatos (<i>felis domesticae</i>) de ambos sexos y con pesos de 2 a 4 Kg. Se dividieron los gatos en 2 grupos de caracter&iacute;sticas similares y de forma controlada para evitar sesgos, que constituir&iacute;an los grupos experimentales. Los grupos control se formaron con los lados contralaterales a los operados. Todas las intervenciones quir&uacute;rgicas se realizaron bajo anestesia general, reuniendo las condiciones de asepsia quir&uacute;rgica necesarias y bajo la ayuda de un microscopio quir&uacute;rgico (Leyca <sup>&reg;</sup>). Se realiz&oacute; una premedicaci&oacute;n anest&eacute;sica con Ketamina (10 mg/Kg), Diazep&aacute;n (1 mg/Kg) y Atropina (0,05 mg/Kg). La inducci&oacute;n se realiz&oacute; mediante Isofluorano al 3% vaporizado junto con ox&iacute;geno y prot&oacute;xido en proporci&oacute;n 1:1. Tras intubaci&oacute;n orotraqueal, se mantuvo al animal bajo respiraci&oacute;n artificial controlada por presi&oacute;n (7-8 cm de agua), con un cociente de inspiraci&oacute;n-espiraci&oacute;n de 0,75:3 segundos y mantenida con Isofluorano al 2,5%. En el per&iacute;odo postoperatorio se utilizaron analg&eacute;sicos (Ketorolaco 0,25 mg/Kg dos veces al d&iacute;a) y antibi&oacute;ticos (Cefazolina 30 mg/Kg tres veces al d&iacute;a) durante las primeras 24 horas. Los gatos se mantuvieron en jaulas individuales con acceso libre a la comida y al agua (18).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El grupo I se cre&oacute; con 10 gatos a los que se realiz&oacute; la anastomosis quir&uacute;rgica entre el nervio accesorio del espinal y el nervio cubital. El grupo II se constituy&oacute; con 10 gatos en los que se realiz&oacute; la transferencia del nervio toracodorsal al nervio cubital, en el mismo punto que en el grupo anterior. Para ello se practic&oacute; la neurolisis externa del nervio cubital utilizando el acceso que describe Ploncard en su t&eacute;cnica (19). La identificaci&oacute;n del nervio se confirm&oacute; mediante estimulaci&oacute;n intraoperatoria seccion&aacute;ndose el cubital en su origen del fasc&iacute;culo medial.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Para localizar el nervio accesorio se realiz&oacute; una incisi&oacute;n paralela al borde medial del m&uacute;sculo esternocleidomastoideo, se seccion&oacute; el m&uacute;sculo platisma y se separ&oacute;, identific&aacute;ndose a continuaci&oacute;n las fibras motoras del nervio accesorio mediante estimulaci&oacute;n intraoperatoria. Seguidamente, se realiz&oacute; la disecci&oacute;n de la rama nerviosa para el m&uacute;sculo trapecio del nervio accesorio llegando lo m&aacute;s distal posible sobre la grasa supraescapular y posteriormente se llev&oacute; esta rama a la regi&oacute;n axilar. La localizaci&oacute;n del nervio toracodorsal se realiz&oacute; utilizando el mismo abordaje que para el nervio cubital. Se disec&oacute; el tejido linfograso de la regi&oacute;n axilar, abordando la inserci&oacute;n del tend&oacute;n conjunto dorsal ancho-redondo mayor sobre el h&uacute;mero. En la cara anterior de este tend&oacute;n se localizaba el paquete vasculonervioso toracodorsal, permitiendo su identificaci&oacute;n precisa mediante electroestimulaci&oacute;n directa.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">Utilizando un microscopio quir&uacute;rgico, realizamos la neurolisis de los nervios identificados previamente. Se seccion&oacute; el nervio cubital justo en su salida del fasc&iacute;culo medial, el nervio accesorio del espinal en su punto de entrada al m&uacute;sculo trapecio (<a href="#f1">Fig. 1</a>), y el nervio toracodorsal a 4 cm de su salida del cord&oacute;n medial (<a href="#f2">Fig. 2</a>). Se realizaron dos suturas epineurales con Nylon 10-0 entre ambos cabos para mantener la tensi&oacute;n, y se rode&oacute; la sutura con gel de fibrina (Tissucol <sup>&reg;</sup>). La inmovilizaci&oacute;n postquir&uacute;rgica no fue necesaria puesto que la sutura se realiz&oacute; en abducci&oacute;n m&aacute;xima y la movilidad pasiva del miembro superior no produc&iacute;a tensi&oacute;n excesiva en la sutura. Todos los pasos en la cirug&iacute;a se realizaron tras una cuidadosa hemostasia utilizando electrocauterizaci&oacute;n bipolar y monopolar.</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f1"><img border="0" src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_fig1.jpg" width="549" height="323"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><b>Fig. 1. Esquema de la anastomosis del nervio accesorio del espinal y el nervio cubital    <br>en el Grupo I.Fotograf&iacute;a durante la intervenci&oacute;n en un animal del grupo experimental,    <br>tras la realizaci&oacute;n de la anastomosis entre ambos nervios, previa al uso de gel de fibrina.</b></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f2"><img src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_fig2.jpg" width="590" height="277"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><b>Fig. 2. Esquema de la anastomosis directa del nervio toracodorsal al nervio cubital    <br>en la regi&oacute;n axilar. Fotograf&iacute;a de la anastomosis previa al uso de gel de fibrina.</b></font></p>     <p></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Estudio neurofisiol&oacute;gico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">Realizamos registros electromiogr&aacute;ficos convencionales cada dos meses en cada uno de los gatos del grupo experimental. Para ello colocamos un electrodo de aguja conc&eacute;ntrico en la musculatura intr&iacute;nseca medial de la garra y en el <i>flexor carpi ulnaris</i>, dependiente del nervio cubital. Registramos en reposo la actividad anormal espont&aacute;nea (fibrilaciones y ondas positivas en m&aacute;s de 3 puntos) y los potenciales de unidades motoras tras movimientos reflejos bajo sedaci&oacute;n suave (Isofluorano 1,5% vaporizado en una mezcla de ox&iacute;geno y aire 1:1) a est&iacute;mulos nociceptivos sobre la pata ipsilateral. El electromiograma se monitoriz&oacute; entre 7 y 12 meses. Los gatos del grupo control recibieron al menos dos registros de electromiograf&iacute;a. Los niveles de alteraci&oacute;n se graduaron utilizando la versi&oacute;n modificada de la escala de Dumitru y Wilbourn (20) en tres grados: leve, medio y grave. Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico agrupamos los valores de denervaci&oacute;n medio y grave dentro de una misma categor&iacute;a.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Estudio histol&oacute;gico</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Durante la &uacute;ltima intervenci&oacute;n obtuvimos las muestras para el estudio histol&oacute;gico; todas fueron enviadas al Servicio de Anatom&iacute;a Patol&oacute;gica y codificadas con un n&uacute;mero propio del Departamento, sin relaci&oacute;n alguna con el del estudio. De este modo el estudio de las biopsias se pod&iacute;a realizar de forma ciega.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Las muestras musculares se obtuvieron en fresco, de 1 cm de grosor, tomadas de la musculatura epitroclear y fueron procesadas en Isopentano enfriado con Nitr&oacute;geno l&iacute;quido. Estas muestras se cortaron en un criostato en secciones transversales de 10 mm de grosor que se procesaron posteriormente para tinci&oacute;n de Hematoxilina-Eosina y estudio de la actividad histoqu&iacute;mica de Adenosina Trifosfatasa miofribrilar (ATPasa) tras incubaci&oacute;n a pH de 9,4; 4,6 y 4,3. El criterio histol&oacute;gico para asumir la reinervaci&oacute;n fue la presencia de grupos de fibras del mismo tipo (21).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">La biopsia del nervio cubital (1 cm de longitud) se tom&oacute; distal a la anastomosis. Los nervios se distend&iacute;an suavemente sobre un soporte de madera, para despu&eacute;s ser fijados sobre una soluci&oacute;n de formol tamponada. Se realizaron secciones transversas de 10 mm de grosor, que posteriormente fueron fijadas en parafina y te&ntilde;idas mediante Hematoxilina-Eosina y Tricr&oacute;mico de Masson. El grosor y la densidad subjetiva de fibras miel&iacute;nicas eran comparados con el nervio contralateral de forma ciega.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Estudio neuroanat&oacute;mico</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Un a&ntilde;o despu&eacute;s de ser intervenidos inicialmente y bajo las mismas condiciones de anestesia previamente descritas, se realiz&oacute; el trazado neuronal con HRP en 4 gatos del grupo I y 4 gatos del grupo II, seleccionados al azar entre los que hab&iacute;an resultado positivos en el electromiograma. Para ello disecamos 2 cm. del nervio cubital, distales al punto de anastomosis microquir&uacute;rgica. Sobre el extremo proximal del nervio cortado previamente aplicamos durante una hora 6 mL de una soluci&oacute;n en agua bidestilada de HRP al 25% (Tipo VI; Sigma Chemical Co., St Louis, MO) en el interior de un tubo de laboratorio. El extremo nervioso se disec&oacute; completamente del lecho y se retrajo el epineuro levemente, seccion&aacute;ndolo longitudinalmente unos mil&iacute;metros.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El grupo control estaba compuesto por el lado contralateral al operado de 12 gatos seleccionados al azar, divididos en 3 grupos de 4: un grupo para control del cubital, otro para control del accesorio del espinal y finalmente el &uacute;ltimo para control del nervio toracodorsal. Sobre el extremo proximal del nervio seccionado, se aplic&oacute; una soluci&oacute;n de Peroxidasa al 25% bajo las mismas condiciones anteriores.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Dejamos al gato en las condiciones habituales durante 72 horas. Para la perfusi&oacute;n y fijaci&oacute;n de los tejidos escogimos un m&eacute;todo de sacrificio compatible con el art&iacute;culo 2 de la Directiva del Consejo Europeo del 24 de noviembre de 1986. Utilizamos la inducci&oacute;n a sue&ntilde;o profundo mediante la aplicaci&oacute;n de Pentobarbital intraperitoneal. La fijaci&oacute;n de los tejidos se consigui&oacute; mediante el m&eacute;todo de Karnovsky modificado por Llamas, Reinoso y Mart&iacute;nez-Moreno (22) que consisti&oacute; en la perfusi&oacute;n con 500 ml. de suero salino a trav&eacute;s de un cat&eacute;ter introducido en el ventr&iacute;culo izquierdo para exanguinar al animal y lavar los vasos, continuando con 3 l. de una mezcla de Paraformaldehido 1% y Glutaraldehido 1,25%, en tamp&oacute;n fosfato 0,1M a 4ºC y pH 7,4 durante 45 minutos; la baja temperatura de fijaci&oacute;n permite retrasar la degradaci&oacute;n enzim&aacute;tica de la Peroxidasa. Para finalizar la perfusi&oacute;n y dar crioprotecci&oacute;n al tejido medular, lavamos el exceso de soluci&oacute;n de fijaci&oacute;n mediante disoluciones de sacarosa a 5% (1L en 15 minutos), 10% (1L en 15 minutos) y 20% (500mL en 15 minutos) bajo las mismas condiciones de pH y temperatura. La impulsi&oacute;n de las soluciones se realiz&oacute; mediante una bomba perist&aacute;ltica de flujo variable (Cole-Palmer Mod. 7521-00) con cabeza Masterflex.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Posteriormente se expuso la m&eacute;dula espinal mediante laminectom&iacute;a e incisi&oacute;n de la duramadre por v&iacute;a dorsal y tomamos 12 cm. de m&eacute;dula rostrales a T1. Para evitar la desnaturalizaci&oacute;n enzim&aacute;tica, mantuvimos el fragmento en una disoluci&oacute;n de sacarosa 30% y pH 7,4 durante 48 horas a 4º. A continuaci&oacute;n realizamos cortes longitudinales de 50 &#181;m. de grosor mediante un microtomo de deslizamiento (Reichert <sup>&reg;</sup>). Uno de cada tres cortes se prepar&oacute; para el an&aacute;lisis histoqu&iacute;mico utilizando Tetrametilbenzidina (TMB, Sigma <sup>&reg;</sup>) como sustrato. Otro corte de cada tres se utiliz&oacute; para la tinci&oacute;n de Nissl utilizando Cresil Violeta al 0,5%. La &uacute;ltima serie se mantuvo en reserva para el estudio de una zona determinada.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">Los cortes te&ntilde;idos se estudiaron al microscopio de luz convencional, campo oscuro y luz polarizada (Leitz Dialux 22; Leica Microsistemas, S.A. Barcelona, Espa&ntilde;a). El contorno de las secciones y la localizaci&oacute;n de cada neurona marcada se introdujo en un sistema de digitalizaci&oacute;n (MD2 <sup>&reg;</sup>; Minnesota Datametrics, St. Paul, MN) y se imprimi&oacute; en papel. Poste</font><font face="Arial" size="2">riormente se realiz&oacute; el recuente de cuerpos neuronales marcados en los cortes medulares.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Estudio estad&iacute;stico</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Para la realizaci&oacute;n del estudio estad&iacute;stico utilizamos el programa inform&aacute;tico SPSS 14.0 para Windows (SPSS Inc., Chicago, Illinois). Para la comparaci&oacute;n de los resultados electromiogr&aacute;ficos empleamos el test de chi de Pearson corregido y el test exacto de Fisher. Para el estudio del recuento neuronal, debido al bajo n&uacute;mero de individuos en cada grupo, utilizamos tests no param&eacute;tricos para la comparaci&oacute;n de sus medias (U de Mann Whitney). Las diferencias estad&iacute;sticas fueron consideradas como significativas cuando la p fue menor de 0,05.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Resultados</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Electrofisiol&oacute;gicos</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">La reinervaci&oacute;n de la musculatura cubital en el grupo I se alcanz&oacute; entre los meses quinto a noveno (7,3 meses de media), mientras que en el grupo II ocurri&oacute; entre los meses cuarto a octavo (6,8 meses de media). La reinervaci&oacute;n fue objetivada mediante electromiograf&iacute;a en 8 de los 10 casos del grupo I y en 9 de los 10 casos del grupo II (<a href="#f3">Fig. 3</a>). Al estratificar el resultado de acuerdo a la escala de Dumitru, encontramos denervaciones leves en el 10% de los gatos del grupo I frente a un 70% en el grupo II. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico de los resultados neurofisiol&oacute;gicos muestra que existen diferencias significativas a favor de la reinervaci&oacute;n lograda con la transferencia del nervio toracodorsal, frente al grupo I (p=0,022).</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f3"><img src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_fig3.jpg" width="518" height="428"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><b>Fig. 3. Registro EMG en la musculatura intr&iacute;nseca de la mano. Arriba: trazado    <br>originado por la contracci&oacute;n refleja del m&uacute;sculo en reinervaci&oacute;n formado por un    <br>potencial de unidad motora que bate a alta frecuencia. Abajo: actividad de    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>denervaci&oacute;n en reposo (fibrilaciones y ondas positivas).</b></font></p>     <p></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Histol&oacute;gicos</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El estudio de la biopsia del nervio cubital en el grupo experimental mostr&oacute; una densidad de fibras miel&iacute;nicas muy variable, aunque encontramos paso de axones en 8 de cada 10 casos del grupo I y en todas las muestras del grupo II.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">El estudio histol&oacute;gico de las muestras musculares encontr&oacute; claramente agrupaciones de fibras musculares, con escasas fibras atr&oacute;ficas en 8 de cada 10 casos del grupo I y en 9 de cada 10 casos del grupo II. Estos casos coinciden con los obtenidos en la electromiograf&iacute;a y en el estudio histol&oacute;gico de las muestras de nervio cubital (<a href="#f4">Fig. 4</a>). En las muestras de los controles se encontr&oacute; una distribuci&oacute;n aleatoria de las fibras tipo I y II. No se calcul&oacute; la proporci&oacute;n de fibras tipo I y II, puesto que este caso no constituye un criterio de reinervaci&oacute;n.</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f4"><img src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_fig4.jpg" width="425" height="305"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><b>Fig. 4. Imagen histol&oacute;gica del paso de axones procedentes de    <br>motoneuronas del nervio accesorio del espinal por una secci&oacute;n del    <br>nervio cubital (derecha). Imagen histol&oacute;gica 25X de una secci&oacute;n    <br>transversal de la biopsia de la musculatura epitroclear del gato, te&ntilde;ida    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>mediante las t&eacute;cnicas descritas en Material y M&eacute;todo (izquierda).</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En los casos en los que no se encontr&oacute; evidencia de reinervaci&oacute;n ni electromiogr&aacute;fica ni histol&oacute;gica, realizamos revisi&oacute;n de la zona de la anastomosis. En los casos del grupo I encontramos una ruptura de la anastomosis y la separaci&oacute;n de ambos cabos. En el caso del grupo II encontramos un neuroma en continuidad.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Trazado neuronal</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Las motoneuronas que enviaban sus axones a trav&eacute;s del nervio cubital se concentraban en la mitad lateral del asta anterior de los segmentos C7 a T1. La media de motoneuronas que se ti&ntilde;eron mediante marcaje retr&oacute;grado con HRP en el grupo control del nervio Cubital fue 511,75 &plusmn; 162,6. En cambio aquellas motoneuronas cuyos axones formaban la rama para el m&uacute;sculo trapecio del nervio accesorio del espinal se localizaban en los segmentos C5 a C7, en un n&uacute;mero medio de 144,3 &plusmn; 24,8 y en posici&oacute;n m&aacute;s dorsal que en el grupo anterior. En el grupo I tras 12 meses de evoluci&oacute;n, al aplicar la HRP en el extremo del nervio cubital 2-3 cm distal a la anastomosis, se marcaron abundantes neuronas (48,5 &plusmn; 14,3) en el segmento cervical de la m&eacute;dula espinal (<a href="img/revistas/cpil/v34n3/original1_tabla1.jpg" target="_blank">Tabla I</a>, <a href="#f5">Fig. 5-7</a>). Su localizaci&oacute;n coincide en su distribuci&oacute;n tridimensional con la del grupo control del nervio accesorio del espinal.</font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><a name="f5"><img src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_fig5.jpg" width="346" height="263"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><b>Fig. 5. Imagen obtenida por microscop&iacute;a en campo oscuro    <br>40X de las motoneuronas marcadas mediante la aplicaci&oacute;n de HRP    <br>en el nervio cubital y correspondientes al nervio accesorio del espinal.</b></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><img src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_fig6.jpg" width="495" height="692"></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><b>Fig. 6. Esquema de las motoneuronas que aparecen marcadas en los cortes    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>de la m&eacute;dula espinal. 1. Neuronas marcadas del nervio cubital en el    <br>grupo control. Las motoneuronas se agrupan en los niveles bajos (C7-C8)    <br>fundamentalmente y en las regiones m&aacute;s ventrales. 2. Neuronas marcadas del    <br>Nervio accesorio del espinal en gatos del grupo control. Se observa que las    <br>motoneuronas se localizan en cortes m&aacute;s dorsales del asta anterior y en    <br>niveles algo m&aacute;s altos (C6- C7). 3. Neuronas marcadas tras la anastomosis    <br>directa de ambos nervios en gatos del grupo experimental. La distribuci&oacute;n    <br>sigue el patr&oacute;n del grupo anterior, con neuronas de niveles C6-C7, y en    <br>cortes m&aacute;s dorsales, aunque en menor n&uacute;mero que en el grupo control (p&gt;0,05).</b></font></p>     <p align="center"><font face="Arial" size="2"><img src="/img/revistas/cpil/v34n3/original1_fig7.jpg" width="449" height="325"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="Arial" size="2"><b>Fig. 7. Esquema del marcaje de motoneuronas en el asta anterior    <br>mediante el transporte retr&oacute;grado de HRP inyectado distal a la    <br>anastomosis en el nervio cubital. Las neuronas marcadas del nervio    <br>cubital en el grupo control se agrupan en los niveles bajos (C7-C8)    <br>fundamentalmente, mientras que las del grupo control del nervio toracodorsal se    <br>localizan fundamentalmente en los niveles C6-7, pero algo m&aacute;s altas que las    <br>del grupo cubital. Se observa como la distribuci&oacute;n tras la anastomosis sigue el    <br>mismo patr&oacute;n que en el grupo control del nervio t&oacute;racodorsal.</b></font></p>     <p align="center"></p>     <p><font face="Arial" size="2">Las motoneuronas marcadas con HRP en el grupo control del nervio Toracodorsal se situaban en los niveles metam&eacute;ricos C6-C7, en su porci&oacute;n m&aacute;s dorsal y en n&uacute;mero medio de 204,8 &plusmn; 43,3. En cambio el grupo II, tras 12 meses de evoluci&oacute;n, marcaba 170,8 &plusmn; 37,9 motoneuronas, con la misma localizaci&oacute;n espacial en el asta anterior que en el grupo control Toracodorsal.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">El estudio estad&iacute;stico del recuento neuronal encontr&oacute; diferencias significativas entre ambos grupos experimentales a favor del grupo II (p=0,29). Igualmente exist&iacute;an diferencias significativas entre el grupo I y los grupos controles cubital y accesorio del espinal (p=0,21 y p=0,29). En cambio no exist&iacute;an diferencias significativas entre el grupo II y el grupo control toracodorsal, aunque s&iacute; con respecto al grupo control cubital.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Discusi&oacute;n</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Para el estudio de las lesiones del plexo braquial y de su reparaci&oacute;n mediante neurotizaci&oacute;n, escogimos el gato dom&eacute;stico como modelo experimental debido a su anatom&iacute;a conocida, al tama&ntilde;o de su plexo asequible a la manipulaci&oacute;n quir&uacute;rgica y a su potencial de regeneraci&oacute;n, similar al de otros mam&iacute;feros superiores (23); para evitar posibles sesgos en cuanto a edad, sexo o peso, homogeneizamos los grupos. Sin embargo, no hemos encontrado ning&uacute;n estudio que indique la existencia de diferencias significativas en cuanto al n&uacute;mero de motoneuronas o a la capacidad de reinervaci&oacute;n motora en funci&oacute;n de las variables citadas. Tampoco estudios acerca de la lateralidad hemisf&eacute;rica cerebral en el gato, que traduzcan dominancia y que por tanto indiquen la posible existencia de m&aacute;s fibras en un lado que en el otro. Este hecho adem&aacute;s se confirma en el humano, gracias a la publicaci&oacute;n de Malessy tras la transferencia de intercostales a musculocut&aacute;neo (24).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Cuando ocurre una lesi&oacute;n severa de las ra&iacute;ces cervicales, como es la avulsi&oacute;n de las ra&iacute;ces de la m&eacute;dula espinal, las opciones terap&eacute;uticas que se plantean son escasas y las posibilidades de reparaci&oacute;n quir&uacute;rgica a nivel medular son m&iacute;nimas. En estos casos es necesario encontrar otra fuente de axones motores que procedan de neuronas que no pertenezcan a los niveles implicados en la lesi&oacute;n. En este sentido la bibliograf&iacute;a muestra diferentes nervios que han sido utilizados como "donantes", tal es el caso de peque&ntilde;as ramas del plexo cervical, el nervio fr&eacute;nico, nervios intercostales y el nervio accesorio del espinal. La elecci&oacute;n de cu&aacute;l de esos nervios donantes es el m&aacute;s indicado para cada situaci&oacute;n es hoy por hoy controvertida. Hattori (25) concluye que la selecci&oacute;n depende de la funci&oacute;n que se pretenda reconstruir, siendo el accesorio del espinal el id&oacute;neo para musculatura de gran potencia y r&aacute;pida y los intercostales para musculatura postural y de gran resistencia a la fatiga. De igual modo debemos darle prioridad a las funciones proximales, sabiendo que algunas t&eacute;cnicas abandonaron ya el grupo de las cirug&iacute;as experimentales para estar dentro del armamento terap&eacute;utico frente a este tipo de lesiones (10).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Sin embargo la elecci&oacute;n del nervio donante no parece tan clara cuando la plexopat&iacute;a es completa, puesto que muchos de esos nervios no est&aacute;n disponibles. La transferencia del nervio accesorio del espinal puede generar secuelas graves, puesto que el m&uacute;sculo trapecio podr&iacute;a ser uno de los pocos m&uacute;sculos &uacute;tiles tras una lesi&oacute;n panplexual. Sin embargo, la transferencia del nervio accesorio del espinal se realiza utilizando la porci&oacute;n distal del nervio, de forma que la parte central del trapecio se conserva y la parte proximal del mismo tiene una inervaci&oacute;n mixta con ramas del plexo cervical (26).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En el caso del nervio toracodorsal, su transferencia implica la denervaci&oacute;n del m&uacute;sculo dorsal ancho, que en m&uacute;ltiples ocasiones se utiliza para la cirug&iacute;a paliativa como transferencia muscular (24). Sin embargo, la transferencia de este nervio se ha realizado con &eacute;xito por diferentes autores; Novak lo utiliz&oacute; para reconstruir 6 b&iacute;ceps, con resultado de 1 caso de M5 y 4 casos de M4 sin secuelas de debilidad para la adducci&oacute;n o rotaci&oacute;n interna del brazo (27). Posteriormente, Samardzic lo utiliz&oacute; en casos similares para la reconstrucci&oacute;n del nervio musculocut&aacute;neo en 12 casos y del nervio axilar en 15 casos, consiguiendo un 94% de funci&oacute;n &uacute;til (mayor de M3) (28). Por tanto su uso estar&iacute;a justificado en los casos en los que la funci&oacute;n a recuperar es m&aacute;s &uacute;til que la del m&uacute;sculo que inerva. Bas&aacute;ndonos en estos principios el uso de estos nervios podr&iacute;a estar justificado si pretendemos recuperar funciones distales perdidas.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">La efectividad de la anastomosis del nervio accesorio con ramas del plexo braquial ha sido cuestionada hasta hace pocos a&ntilde;os. Nuestros resultados muestran que los axones motores del nervio donante pueden alcanzar el extremo distal de nervios tan largos como el cubital. En cualquier caso, la comparaci&oacute;n del n&uacute;mero de neuronas encontradas con HRP en los grupos control y los grupos experimentales, muestra que existen diferencias significativas entre ambos. Creemos que se deben a diferentes factores biol&oacute;gicos y t&eacute;cnicos que pueden afectar a la efectividad de la t&eacute;cnica.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En primer lugar, existen diferencias obvias en el tama&ntilde;o entre los nervios donantes utilizados y el nervio cubital y por tanto, en el n&uacute;mero de fibras. En el caso de los humanos, el nervio accesorio contiene aproximadamente 3.000 fibras motoras, frente a las 12.000-15.000 de los nervios musculocut&aacute;neo, mediano, radial o cubital. Aunque en el gato no se ha determinado esta proporci&oacute;n, el aspecto macrosc&oacute;pico ya apunta en la misma direcci&oacute;n. Adem&aacute;s, la denervaci&oacute;n provoca la p&eacute;rdida progresiva de motoneuronas en el nervio da&ntilde;ado, empeorando el pron&oacute;stico (29). Por &uacute;ltimo, la atrofia y fibrosis muscular que se instauran en un per&iacute;odo corto de tiempo, empeora en estos casos debido a la suma del tiempo pre-cirug&iacute;a y el tiempo que tardan en crecer los axones, disminuyendo as&iacute; de forma significativa las posibilidades de &eacute;xito de la cirug&iacute;a (30, 31).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En segundo lugar, encontramos relaci&oacute;n con la t&eacute;cnica quir&uacute;rgica. Teniendo en cuenta que la transferencia de un nervio donante a un nervio desconectado en el plexo braquial se ha descrito en la literatura de tres modos diferentes: la sutura del nervio donante a una rama del plexo braquial en la axila con un injerto de nervio sural (32); sutura directa del nervio donante a un tronco del plexo braquial da&ntilde;ado por encima de la clav&iacute;cula (33) y la anastomosis por debajo de la clav&iacute;cula (19), elegimos la &uacute;ltima de ellas puesto que la conexi&oacute;n de ambos nervios a nivel de la axila implica una conexi&oacute;n m&aacute;s distal evitando la p&eacute;rdida de axones por direcciones equivocadas y logrando una disminuci&oacute;n en la distancia que deben recorrer los axones a trav&eacute;s del nervio receptor.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En tercer lugar, la tensi&oacute;n en la sutura puede influir en el resultado. Driscoll encontr&oacute; que sobre un nervio sano, sin suturas previas, la elongaci&oacute;n de un 15% de su longitud provocaba la disminuci&oacute;n del flujo microvascular y que tras una hora de relajaci&oacute;n, se manten&iacute;a una reducci&oacute;n del 30% de la velocidad de conducci&oacute;n (34).Hoy sabemos que los efectos moderados de la tensi&oacute;n estimulan la secreci&oacute;n de factores de crecimiento neurotr&oacute;picos y que la tensi&oacute;n impide la regeneraci&oacute;n a partir de un umbral de entre 0,39 a 0,56 Newtons. En nuestro estudio, encontramos una mayor tasa de denervaciones leves en el grupo II (70%) que en el grupo I (10%), con diferencias estadísticamente significativas. Estos resultados a su vez se corresponden de forma directa con los obtenidos en la histología; a pesar de que durante la cirugía la anastomosis no presentaba tensión alguna en el grupo I, el recuento neuronal bajo, estadísticamente significativo respecto al control del nervio accesorio, las diferencias electromiográficas, así como la presencia de dos dehiscencias de la anastomosis, hablan a favor de la presencia de fuerzas de distracción sobre los cabos de la anastomosis. En cambio en el grupo II el recuento neuronal no era estadísticamente diferente respecto al grupo control del nervio toracodorsal, lo que junto a la ausencia de dehiscencias de la sutura, nos reafirma acerca de las mejores condiciones anatómicas para la transferencia de este nervio al plexo braquial a nivel infraclavicular.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">La t&eacute;cnica microquir&uacute;rgica en la sutura nerviosa ha de ser precisa para disminuir al m&iacute;nimo la agresi&oacute;n sobre los tejidos, evitando el exceso de material de sutura. La aparici&oacute;n de los geles de fibrina ha supuesto una revoluci&oacute;n en la sutura nerviosa puesto que carecen de efecto inhibitorio sobre la regeneraci&oacute;n axonal (36), alcanzando resultados similares en menos tiempo (37, 38), hasta el punto de que consiguen menor fibrosis que las suturas, mejor regeneraci&oacute;n axonal (39) y mayor velocidad de conducci&oacute;n y amplitud de onda en los estudios neurofisiol&oacute;gicos (40). Por estas razones utilizamos la sutura epineural con nylon 10-0 de aproximaci&oacute;n, junto con el sellado de la anastomosis mediante gel de fibrina en todos los casos.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">La t&eacute;cnica de tinci&oacute;n de motoneuronas mediante el transporte axonal retr&oacute;grado de Peroxidasa de r&aacute;bano, es un m&eacute;todo muy conocido y muy utilizado en los estudios neuroanat&oacute;micos. Existen m&uacute;ltiples factores que influyen en el transporte axonal, sin embargo sabemos que para nuestros casos eran necesarios 2-3 d&iacute;as para que se alcanzara el soma neuronal. El recuento manual de las motoneuronas marcadas en el asta anterior es un tema discutido; s&oacute;lo se contaron aquellas neuronas en las que se visualizaba el soma y el n&uacute;cleo de la misma, para evitar sobreestimar las neuronas marcadas al contar dendritas primarias de la misma neurona. El m&eacute;todo subestima el recuento, puesto que se pueden visualizar neuronas cuyo n&uacute;cleo quede en un corte que no se ha te&ntilde;ido con la t&eacute;cnica para el revelado del HRP, o bien que no se visualicen neuronas te&oacute;ricamente marcadas. Esto implica que los resultados presentan cierto sesgo cuantitativo, sin embargo este sesgo es aceptable, puesto que el objetivo del estudio es evaluar el resultado de la t&eacute;cnica quir&uacute;rgica y no el de valorar la cantidad de motoneuronas que neurotizan un territorio.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En los cortes de m&eacute;dula espinal se evidencia como las neuronas que componen el nervio cubital neurotizado proceden de las regiones correspondientes al nervio donante. Adem&aacute;s, estas motoneuronas del nervio accesorio del espinal se localizan en n&uacute;cleos distintos a las del nervio cubital, por lo que podr&iacute;an ser &uacute;tiles en pacientes con lesiones de plexo braquial. Sin embargo se plantea un problema en el grupo experimental II que es la superposici&oacute;n del nivel C8 en ambos territorios. En nuestros casos encontramos que las fibras que componen el nervio toracodorsal en el gato, provienen de los niveles C7-C8 fundamentalmente, mientras que el nervio cubital se forma de los niveles C8-T1. Por tanto, en los casos de avulsi&oacute;n baja del plexo braquial el nervio toracodorsal ipsilateral estar&iacute;a parcialmente lesionado, de forma que no contar&iacute;amos con todas sus motoneuronas.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">La transferencia del nervio accesorio del espinal tal y como se plantea en el estudio aporta la d&eacute;cima parte de las neuronas necesarias para el nervio cubital, frente al toracodorsal que aporta entre el 33 y el 50%. Sin embargo potencialmente ser&iacute;an capaces de reinervar entre el 30 y el 60% del territorio. Aunque existen diferencias estad&iacute;sticamente significativas en el n&uacute;mero de neuronas, probablemente esta cantidad ser&iacute;a suficiente para conseguir restaurar la mayor parte de la movilidad del territorio. Ahora bien, para establecer la utilidad de esta reinervaci&oacute;n ser&iacute;a necesario realizar estudios a m&aacute;s largo plazo, evaluando la habilidad y la fuerza con la que los sujetos utilizan la garra.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Conclusiones</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Tras evaluar nuestros resultados, podemos concluir que las motoneuronas de los nervios accesorio del espinal y toracodorsal son capaces de alcanzar territorios distales, consiguiendo reinervaciones eficaces. Sin embargo, cuando se realizan transferencias a grandes nervios como el cubital, s&oacute;lo son capaces de conseguir recuperaciones parciales, siendo los resultados mejores con el nervio toracodorsal.</font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Direcci&oacute;n del autor</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">Dr. Jos&eacute; Ram&oacute;n Mart&iacute;nez-M&eacute;ndez    <br>Servicio de Cirug&iacute;a Pl&aacute;stica. Hospital Universitario La Paz    <br>Paseo de la Castellana, 261    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>28046 Madrid    <br>e-mail:<a href="mailto:josermartinez77@gmail.com"> josermartinez77@gmail.com</a></font></p>     <p><font face="Arial Narrow" size="5">Bibliograf&iacute;a</font></p>     <!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">1. Choi P. D., Novak C. B., Mackinnon S. E. and Kline D. G. "Quality of life and functional outcome following brachial plexus injury". J Hand Surg &#091;Am&#093;. 1997; 22 (4):605.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367549&pid=S0376-7892200800030000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">2. Midha R. "Epidemiology of brachial plexus injuries in a multitrauma population". Neurosurgery. 1997; 40 1182.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367550&pid=S0376-7892200800030000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">3. Le&oacute;n C. "An&aacute;lisis de las lesiones sufridas por motociclistas." Departamento de Cirug&iacute;a. Universidad Complutense. Madrid. 1990</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367551&pid=S0376-7892200800030000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">4. Garc&iacute;a L&oacute;pez A. and L&oacute;pez-Dur&aacute;n L. "Tema de actualizaci&oacute;n SECOT: Cronolog&iacute;a en el tratamiento de las lesiones del plexo braquial." Rev Ortop Traumatol. 2003; 47 : 73.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367552&pid=S0376-7892200800030000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">5. Coene L. N. "Mechanisms of brachial plexus lesions." Clin Neurol Neurosurg. 1993; 95 Suppl 24</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367553&pid=S0376-7892200800030000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">6. Chuang D. C. "Adult brachial plexus injuries".En Plastic Surgery. VII. Mathes S. J. Ed.Saunders Elsevier, Philadelphia, 2006. Pp: 515-538</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367554&pid=S0376-7892200800030000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">7. Carlstedt T., Grane P., Hallin R. G. and Noren G. "Return of function after spinal cord implantation of avulsed spinal nerve roots". Lancet. 1995; 346 (8986):1323.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367555&pid=S0376-7892200800030000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">8. Carlstedt T., Halin R., Hedstr&ouml;m K. and Nilson-Rernahi I. A. M. "Functional recovery in primates with brachial plexus injury after spinal cord implantation of avulsed ventral roots". Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 1993; 56: 649.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367556&pid=S0376-7892200800030000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">9. Tung T. H. H. and Mackinnon S. E. "Brachial plexus injuries". Clinics in Plastic Surgery. 2003; 30: 269.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367557&pid=S0376-7892200800030000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">10. Merrell G. A., Barrie K. A., Katz D. L. and Wolfe S. W. "Results of nerve transfer techniques for restoration of shoulder and elbow function in the context of a meta-analysis of the English literature". Journal of Hand Surgery (Am). 2001; 26 (2):303.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367558&pid=S0376-7892200800030000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">11. Bager B. "Perinatally acquired brachial plexus palsy- a persisting challenge." Acta Paediatr. 1997; 86 1214.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367559&pid=S0376-7892200800030000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">12. Gilbert A. "Long-term evaluation of brachial plexus surgery in obstetrical palsy". Hand Clin. 1995; 11 (4):583; discussion 594.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367560&pid=S0376-7892200800030000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">13. Haerle M. and Gilbert A. "Management of complete obstetric brachial plexus lesions." J Pediatr Orthop. 2004; 24: 194.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367561&pid=S0376-7892200800030000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">14. Pondaag W. and Malessy M. J. A. "Recovery of hand function following nerve grafting and transfer in obstetric brachial plexus lesions." J Neurosurg (1 Suppl Pediatrics). 2006; 105: 33.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367562&pid=S0376-7892200800030000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">15. Terzis J. K., Vekris M. D. and Soucacos P. N. "Outcomes of brachial plexus reconstruction in 204 patients with devastating paralysis". Plast Reconstr Surg. 1999; 104: 1221.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367563&pid=S0376-7892200800030000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">16. Cheng H., Shoung H. M., Wu Z. A., Cheng K. C. and Lee L. S. "Functional connectivity of the transected brachial plexus after intercostal neurotization in monkeys". The Journal of Comparative Neurology. 1997; 380 (2):155.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367564&pid=S0376-7892200800030000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">17. Schieber M. H. and Deuel R. K. "Primary motor cortex reorganization in a long-term monkey amputee." Somatosensory and Motor Research. 1997; 14: 157.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367565&pid=S0376-7892200800030000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">18. Flecknell P. A. "Laboratory animal anesthesia: a practical introduction for research workers and technicians."Hardcover,1996.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367566&pid=S0376-7892200800030000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">19. Ploncard P. "A new approach to the intercosto-brachial anastomosis in the treatment of brachial plexus paralysis due to root avulsion: late results". Acta Neurochirurgica. 1982; 61: 281.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367567&pid=S0376-7892200800030000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">20. Tsai Y. A., Chuang T. Y., Yen Y. S., Huang M. C., Lin P. H. and Cheng H. "Electrophysiologic findings and muscle strength grading in brachioplexopathies." Microsurgery. 2002; 22 (1):11</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367568&pid=S0376-7892200800030000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">21. Dubowitz V. "Pathology of experimentally re-innervated skeletal muscle." J Neurol Neuosurg Psychiatry. 1967; 30 (2):99</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367569&pid=S0376-7892200800030000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">22. Llamas A., Reinoso-Suarez F. and Mart&iacute;nez-Moreno E. "Projections to the gyrus proreus from the brain stem tegmentum (locus coeruleus, raphe nuclei) in the cat, demostrated by retrograde transport of horseradish peroxidase." Brain Res. 1975; 89 (2):331.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367570&pid=S0376-7892200800030000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">23. Hoffmann C. F., Marani E., Van Dijk J. G., vd Kamp W. and Thomeer R. T. W. M. "Reinnervation of avulsed and reimplanted ventral rootlets in the cervical spinal cord of the cat." J Neurosurg. 1996; 84 (2):234.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367571&pid=S0376-7892200800030000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">24. Malessy M. J. and Thomeer R. T. W. M. "Evaluation of intercostal to musculocutaneous nerve transfer in reconstructive brachial plexus surgery." J Neurosurg. 1998; 88 (2):266.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367572&pid=S0376-7892200800030000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">25. Hattori Y., Doi K., Fuchigami Y., Abe Y. and Kawai S. "Experimental study on donor nerves for brachial plexus injury: comparison between the spinal accessory nerve and the intercostal nerve". Plastic and Reconstructive Surgery. 1997; 100: 900.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367573&pid=S0376-7892200800030000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">26. Samardzic M., Rasulic L., Grujicic D. and Milicic B. "Results of nerve transfers to the musculocutaneous and axillary nerves". Neurosurgery. 2000; 46: 93</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367574&pid=S0376-7892200800030000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">27. Novak C. B., Mackinnon S. E. and Tung T. H. H. "Patient outcome following a thoracodorsal to musculocutaneous nerve transfer for reconstruction of elbow flexion." Br J Plast Surg. 2002; 55 (5):416.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367575&pid=S0376-7892200800030000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">28. Samardzic M., Grujicic D., Rasulic L. and Milicic B. "The use of thoracodorsal nerve transfer in restoration of irreparable C5 and C6 spinal nerve lesions." Br J Plast Surg. 2005; 58 (4):541.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367576&pid=S0376-7892200800030000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">29. Madison R. D., Archibald S. J. and Brushart T. M. "Reinnervation accuracy of the rat femoral nerve by motor and sensory neurons". 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"Contributing factor to poor functional recovery after delayed nerve repair: Prolonged denervation". Journal of Neuroscience. 1995; 15: 3886.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367579&pid=S0376-7892200800030000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">32. Millesi H. "Indications et traitement des l&eacute;sions nerveuses dans les paralysis traumatiques du plexus brachial". Revue de Chirurgie Orthop&eacute;dique. 1977; 63: 82.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367580&pid=S0376-7892200800030000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">33. Narakas A. "Neurotization or nerve transfer for brachial plexus lesions". Annales de Chirurgie de la Main. 1982; 1: 101.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367581&pid=S0376-7892200800030000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">34. Driscoll P. J., Glasby M. A. and Lawson G. M. "An in vivo study of peripheral nerves in continuity: biomechanical and physiological responses to elongation". J Orthop Res. 2002; 20 (2):370.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367582&pid=S0376-7892200800030000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">35. Sunderland I. R., Brenner M. J., Singham J., Rickman S. R., Hunter D. A. and Mackinnon S. E. "Effect of tension on nerve regeneration in rat sciatic nerve transection model." 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Ornelas L., Padilla L., Di Silvio M., Schalch P., Esperante S., Infante R. L., Bustamante J. C., Avalos P., Varela D. and Lopez M. "Fibrin glue: an alternative technique for nerve coaptation- Part II. Nerve regeneration and histomorphometric assessment." J Reconstr Microsurg. 2006; 22 (2):123.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367587&pid=S0376-7892200800030000100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">40. Ornelas L., Padilla L., Di Silvio M., Schalch P., Esperante S., Infante R. L., Bustamante J. C., Avalos P., Varela D. and Lopez M. "Fibrin glue: an alterantive technique for nerve coaptation- Part I. Wave amplitud, conduction velocity and plantar-lenght factors". J Reconstr Microsurg. 2006; 22 (2):119.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1367588&pid=S0376-7892200800030000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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