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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Protocolo de actuación forense ante la sospecha de meningitis bacteriana y shock séptico fulminante]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[One of the main duties of medical-legal institutions is to collaborate with authorities to recognise and prevent risks to public health. One such risk is meningoceal infection, wich can progress rapidly and fataly, causing sudden death. In such cases, it is urgent to identify "Neisseria meningitidis" urgently in order to assure the appropiate treatment of people who have come into contact. This agent is a leading cause of bacterial meningitis and septicemia in children and young adults. Due to the rapid development of such infections, ante-mortem cultures sometimes are not taken, making the forensic diagnosis essential. Although post-mortem findings are often typical of the Waterhouse-Friderichsen syndrome, they may sometimes be overlooked or caused by other organisms. For these reasons, a microbiological forensic diagnosis is crucial. This article presents a forensic procedure to diagnose the etiology of fulminant bacterial meningitis or septic shock. The aseptic sampling should include blood, sera, LCR, pleural effusions, urine and fresh tissues. These samples can be submitted to the Instituto Nacional de Toxicología y Ciencias Forenses for their early analyses. Antigenic tests are performed as screening techniques, and real-time PCR assays are also done to detect meningococcus and identify its serogroup. The results of these analyses are reported in 3 hours. Bacterial cultures are also performed. Additional PCR may be performed to diagnose other fragile bacteria that are difficult to recover post-mortem. The collaboration within all legal institutions and between those and health authorities is essential to best deal with this issue.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Muerte súbita infecciosa]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p><font face="Arial"><b><font size=5>Protocolo de actuación forense ante la sospecha de    <br>meningitis bacteriana y shock séptico fulminante    <br> </font></b><font size="4"><i>Protocol for the forensic action with regard to the suspicion of    <br>bacterial meningitis and fulminant septicemia</i></font></font></p> <hr>     <p><b><font face="Arial" size="3">A. Fernández-Rodríguez<sup>1</sup> y B. Morentin Campillo<sup>2</sup></font></b></p> <hr>   <table border="0" width="100%">     <tr>       <td width="48%" valign="top"><b><font face="Arial" size="2">RESUMEN</font>         </b>             <p><b> <font face="Arial" size="2"> Una importante tarea de las instituciones médico-legales es la colaboración con  las autoridades sanitarias en la prevención de riesgos para la salud pública.  Uno de ellos es la infección meningocócica, que puede cursar rápidamente y con  evolución fatal, causando muerte súbita. Neisseria meningitidis es la principal  causa de meningitis bacteriana y septicemia en niños y adultos jóvenes. Su  temprana detección es de extrema urgencia, ya que permite el adecuado  tratamiento de los contactos. El rápido desarrollo de estas infecciones  imposibilita en ocasiones el diagnóstico antemortem, resultando imprescindible  el diagnóstico forense. Aunque los hallazgos postmortem suelen ser los del  síndrome de Waterhouse-Friderichsen, estos, a veces, pueden pasar  desapercibidos, o estar causados por otras bacterias. Todo ello hace necesario  un diagnóstico microbiológico forense.    <br> Este artículo presenta un protocolo forense de actuación ante la sospecha de  meningitis bacteriana y shock séptico fulminante. La toma de muestras para  microbiología debe ser aséptica e incluir sangre, suero, LCR, líquido pleural,  tejidos en fresco y orina. Estas muestras pueden remitirse al Instituto Nacional  de Toxicología y Ciencias Forenses, donde se realizarán análisis específicos,  que incluyen un screening antigénico y un diagnóstico de confirmación mediante  PCR a tiempo real que identifica meningococo y su serogrupo. Los resultados de  estas técnicas son informados 3 horas tras el inicio del análisis. También se  realiza el cultivo bacteriano y PCR adicionales para detectar otras bacterias  difíciles de aislar postmortem. La colaboración entre las distintas  instituciones médico-legales y entre estas y las autoridades sanitarias es  esencial para el adecuado manejo de estas graves infecciones.</font>         </b>             <p><b><font face="Arial" size="2">Palabras clave: Muerte súbita infecciosa, meningococo,         PCR, diagnóstico  forense.</font></b></td>       <td width="4%"></td>       <td width="48%" valign="top"><b> <font face="Arial" size="2"> ABSTRACT</font>         </b>             <p> <font face="Arial" size="2"> One of the main duties of medical-legal institutions is to collaborate with  authorities to recognise and prevent risks to public health. One such risk is  meningoceal infection, wich can progress rapidly and fataly, causing sudden         death. In such cases, it is urgent to identify "Neisseria meningitidis" urgently  in order to assure the appropiate treatment of people who have come into contact.  This agent is a leading cause of bacterial meningitis and septicemia in children  and young adults. Due to the rapid development of such infections, ante-mortem  cultures sometimes are not taken, making the forensic diagnosis essential.  Although post-mortem findings are often typical of the Waterhouse-Friderichsen         syndrome, they may sometimes be overlooked or caused by other organisms. For  these reasons, a microbiological forensic diagnosis is crucial.     <br> This article presents a forensic procedure to diagnose the etiology of fulminant  bacterial meningitis or septic shock. The aseptic sampling should include blood,         sera, LCR, pleural effusions, urine and fresh tissues. These samples can be  submitted to the Instituto Nacional de Toxicología y Ciencias Forenses for their  early analyses. Antigenic tests are performed as screening techniques, and  real-time PCR assays are also done to detect meningococcus and identify its         serogroup. The results of these analyses are reported in 3 hours. Bacterial  cultures are also performed. Additional PCR may be performed to diagnose other  fragile bacteria that are difficult to recover post-mortem. The collaboration  within all legal institutions and between those and health authorities is  essential to best deal with this issue.</font>             ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font face="Arial" size="2">Key words: Sudden death; meningococcal         infection; meningitis; meningococcus, PCR; forensic microbiology.</font></b></td>     </tr>   </table>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <div align="center">       <center>   <table border="0" width="100%">     <tr>       <td width="33%"><b><font face="Arial" size="2">Fecha de recepción</font></b><font face="Arial" size="2">: 31.MAR.05</font></td>       <td width="33%"></td>       <td width="34%"><b><font face="Arial" size="2">Fecha de aceptación</font></b><font face="Arial" size="2">: 16.MAY.05</font></td>     </tr>   </table>   </center> </div>     <p><b><font size="2" face="Arial">Correspondencia</font></b><font size="2" face="Arial">: A. Fernández-Rodríguez. Servicio de Biología. Instituto Nacional de Toxicología y  Ciencias Forenses.    <br> C/ Luis Cabrera nº 9 28002 Madrid. Tel. 91-562-91-90. Fax 563-69-24. E.mail: <a href="mailto:">a.fernandez@mju.es.</a>    <br>     <br> <sup> 1</sup> Especialista en Microbiología Clínica. Doctora en Farmacia. Facultativo del  Instituto Nacional de Toxicología y Ciencias Forenses. Servicio de Biología.  Departamento de Madrid.     <br> <sup> 2</sup> Médico Forense. Doctor en Medicina. Servicio de Patología Forense de Bizkaia.  Instituto Vasco de Medicina Legal.</font></p>      <p>&nbsp;</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2"><b>1.- INTRODUCCIÓN:</b></font></p>      <p><font size="2" face="Arial">Aunque el principal deber de la patología forense es auxiliar a la  administración de justicia, no podemos olvidar las obligaciones que como médicos  tenemos con los familiares del fallecido y con la comunidad a la que servimos.  La investigación basada en autopsias ofrece información útil y fiable en  estudios sobre prevención y epidemiología en diversas áreas de la medicina. Esta  información sobre las causas de la muerte es esencial en el desarrollo de  políticas de salud nacional e internacional para la prevención y control de las  enfermedades. Por otro lado, mediante la autopsia se pueden identificar  enfermedades hereditarias de las que la familia debería ser informada para el  oportuno consejo genético (por ejemplo, determinadas miocardiopatías y síndromes  arrítmicos primarios), y enfermedades infecto-contagiosas. Estas últimas exigen  la rápida instauración de medidas preventivas en los contactos cercanos para  evitar casos secundarios. Se trata de patologías de indudable interés sanitario  que se consideran enfermedades de declaración obligatoria.</font></p>      <p><font size="2" face="Arial"> La meningitis bacteriana y el shock séptico primario son las enfermedades  infecciosas que tienen mayor trascendencia en patología forense, ya que pueden  manifestarse como muerte súbita e inesperada &#091;1&#093;. Otro posible interés  médico-legal es la investigación pericial ante una denuncia por mala praxis, en  el caso de que el fallecido haya sido atendido por sintomatología infecciosa en  un centro asistencial previamente a la muerte. Además de su interés médico-legal  y sanitario, son enfermedades que siempre provocan gran impacto social, e  incluso amplia repercusión en los medios de comunicación; tal fue el caso de la  epidemia de 1996 y 1997, que dio lugar a diferentes campañas de vacunación  durante esos años, y supuso la introducción en el calendario vacunal infantil de  la vacuna conjugada frente a meningococo C.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> La modernización de las ciencias forenses implica la incorporación de nuevas  tecnologías diagnósticas; algunas de ellas previamente introducidas en la rutina  de la medicina clínica, que habrá que adaptar y optimizar para su uso forense.  En la última década, el desarrollo de la tecnología del ADN y el empleo  generalizado de la PCR (reacción en cadena de la polimerasa) como herramienta  básica en el laboratorio han supuesto una revolución en el mundo de la  criminalística. De igual manera, la aplicación de estas técnicas a la  microbiología puede aportar nuevas herramientas en la investigación forense. En  este sentido, la puesta a punto de métodos estandarizados que permitan  identificar a aquellos patógenos que provoquen infecciones responsables de la  causa de muerte puede ser de gran utilidad en la práctica forense.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> El propósito de este artículo es presentar un protocolo de actuación ante la  sospecha de una muerte por meningitis bacteriana o shock séptico fulminante (<a href="#fig1">figura 1</a>). Puesto que la detección de una infección meningocócica implica la  necesidad de comunicarlo a las autoridades sanitarias para organizar el  tratamiento de los contactos, el principal objetivo será confirmar o excluir la  presencia de esta bacteria con la mayor rapidez posible. Este protocolo incluye  pautas de intervención precisas y rápidas que permitan la respuesta coordinada  inmediata de los distintos profesionales (médicos forenses, patólogos,  microbiólogos y médicos de Sanidad) e instituciones implicadas (Institutos de  Medicina Legal, Instituto Nacional de Toxicología y Ciencias Forenses (INTCF),  Consejerías de Sanidad y centros asistenciales).</font></p>     <p align="center"><a name="fig1"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura1.jpg" width="664" height="547"></a></p>      <p><font size="2" face="Arial"> El INTCF ha asumido la realización de estos análisis microbiológicos en muestras  forenses por diversas razones: 1) en el contexto de muerte súbita infecciosa no  suele existir un diagnóstico clínico ante-mortem ni cultivos ante-mortem; 2)  estas muestras requieren un análisis especializado y, en ocasiones, diferente  del de las muestras clínicas que se manejan en hospitales; 3) ante una posible  denuncia por presunta mala praxis no parece conveniente desde el punto de vista  médico-legal que sea el propio centro afectado el que realice el análisis  microbiológico. El INTCF efectúa análisis microbiológicos específicos de forma  eficaz y rápida, incluyendo entre otras, técnicas moleculares.</font></p>     <p><b><font face="Arial" size="2">2.- ETIOLOGÍA Y EPIDEMIOLOGÍA:</font></b></p>     <p><font size="2" face="Arial">Los microorganismos más frecuentemente involucrados en la meningitis aguda  bacteriana y/o shock séptico son <i> Neisseria meningitidis</i> (meningococo) y <i>  Streptococcus pneumoniae</i> (neumococo) &#091;2&#093;. Clásicamente se ha defendido que el  primero predomina en niños y adultos jóvenes y el segundo en adultos. No  obstante, la introducción en el año 2000 de la vacuna conjugada frente a <i> N.  meningitidis</i> serogrupo C en el calendario de vacunación infantil (así como las  campañas de vacunación específicas efectuadas con esta vacuna), ha hecho que el  patrón de presentación de esta enfermedad esté cambiando, observándose en los  últimos años una disminución importante de la incidencia y las defunciones en  niños &#091;3&#093;. La mayoría de las infecciones meningocócicas en España se deben a los  serogrupos B y C &#091;4&#093;, siendo mayor la tasa de mortalidad en pacientes con  serogrupo C que en aquéllos con serogrupo B &#091;5&#093;. Además, existen otras posibles  bacterias causantes de meningitis, siendo las más frecuentes <i> Haemophilus  influenzae</i> tipo b (que suele presentarse entre el período neonatal y los 6  años), <i> Streptococcus agalactiae</i> (estreptococo &#946;-hemolítico  del grupo B), que afecta al neonato, y <i> Listeria monocytogenes</i>.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Según los datos del Centro Nacional de Epidemiología, en el año 2003 la tasa de  enfermedad meningocócica en España fue de 2,4 casos por 100.000 habitantes, con  una letalidad del 8,8%. Sin embargo, en la Comunidad Autónoma del País Vasco, la  tasa fue sensiblemente más alta (5,2 casos por 100.000). En la mayoría de países  europeos la incidencia presentó valores comprendidos en un rango de 0,5 y 3  casos por 100.000 habitantes &#091;6&#093;.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font face="Arial" size="2">3.- CARACTERÍSTICAS CLÍNICAS DE LA INFECCIÓN:</font></b></p>     <p><font size="2" face="Arial">La meningitis bacteriana suele tener un comienzo rápido, con deterioro  progresivo en el plazo de horas o escasos días. En ocasiones, en los días  previos ha habido un síndrome febril, generalmente por infección de las vías  respiratorias superiores. La tríada clínica clásica está compuesta por fiebre  elevada, cefalea intensa y rigidez de nuca. Otros síntomas frecuentes son las  náuseas y los vómitos. También suele haber alteraciones del nivel de conciencia  (somnolencia, obnubilación, letargo, coma). En esta forma de presentación  habitual, la meningitis suele ser diagnosticada en vida y los casos mortales  suelen ocurrir en el ámbito hospitalario.</font>     <p><font face="Arial"><font size="2"> Ocasionalmente la evolución de la infección es atípica y especialmente agresiva;  el paciente en muy pocas horas evoluciona hacia el coma, shock o muerte, antes  de que los síntomas clínicos sean obvios y sin dar tiempo a un diagnóstico en  vida. Un cuadro especialmente virulento es la sepsis meningocócica, cuya  mortalidad es incluso mayor que la de la meningitis. Característicamente  aparecen petequias cutáneas y el paciente evoluciona al shock en horas. Debido a  esta presentación súbita, inesperada y atípica es requerida una autopsia  médico-forense.    <br>    <br></font><b> <font size="2">4.- CARACTERÍSTICAS PATOLÓGICAS DE LA INFECCIÓN:</font></b></font>     <p><font face="Arial" size="2">Los cambios observados en el encéfalo de las personas que han fallecido por  meningitis piógena o shock séptico van a depender del tiempo de evolución de la  infección. En las formas fulminantes (con muy pocas horas de supervivencia) el  diagnóstico macroscópico en encéfalo es muy difícil y la inflamación meníngea  puede no ser aparente. Suele existir congestión meníngea y edema marcado.  Microscópicamente se puede ver marginación de polimorfonucleares en las  arteriolas de las leptomeninges. En estas formas fulminantes el shock séptico  (síndrome de Waterhouse-Friderichsen) se manifiesta con hemorragia suprarrenal  bilateral (<a href="#fig2">figura 2</a>), coagulación intravascular diseminada e hígado de shock.  Puede haber afectación por la infección en el corazón (<a href="#fig3">figura 3</a>), pulmones o bazo (esplenitis). La muerte puede ser tan precoz que se produzca antes de que  la meningitis se desarrolle.     <br></font>     <p align="center"><a name="fig2"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura2.jpg" width="514" height="419"></a></p>     <p align="center"><a name="fig3"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura3a.jpg" width="544" height="445"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura3b.jpg" width="546" height="448"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">En las formas agudas con más de 24-48</font> <font face="Arial" size="2">horas de supervivencia el exudado purulento meníngeo suele ser visible  macroscópicamente (<a href="#fig4">figura 4</a>), si bien a veces la inflamación meníngea puede ser  mucho más sutil (<a href="#fig5">figura 5</a>), e incluso no ser aparente en la inspección visual.  Por ello, se recomienda siempre el estudio histopatológico. Microscópicamente  destaca el exudado inflamatorio agudo con presencia de polimorfonucleares en el  espacio subaracnoideo (<a href="#fig6">figura 6</a>). En los casos menos severos la inflamación se  localiza principalmente alrededor de los vasos sanguíneos. El edema cerebral  puede ser tan intenso que, por aumento de la presión intracraneal, produzca  herniación cerebral y hemorragia de Duret secundaria a enclavamiento. Además, la  inflamación se puede extender hasta los ventrículos (ventriculitis purulenta) y  hacia el parénquima cerebral (cerebritis focal).</font></p>      <p align="center">    <br><a name="fig4"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura4.jpg" width="314" height="434"></a></p>     <p align="center"><a name="fig5"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura5.jpg" width="544" height="455"></a></p>     <p align="center"><a name="fig6"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura6.jpg" width="542" height="459"></a></p>      <p><font face="Arial" size="2">4.1.- ¿CUÁNDO DEBE EL FORENSE SOSPECHAR UNA SEPSIS MENINGOCÓCICA?</font></p>     <p><font size="2" face="Arial">Frente a cualquier muerte fulminante con presencia de cuadro febril (aunque sea  de horas de evolución), presencia de petequias cutáneas y hemorragia  suprarrenal, el forense debe informar de inmediato a las autoridades sanitarias  de la sospecha de una sepsis meningocócica y actuar como recomienda este trabajo (<a href="#fig1">figura 1</a>). Una vez se conozcan los resultados del análisis microbiológico, se  volverá a llamar a las autoridades sanitarias competentes para informar de un  resultado positivo o negativo, con objeto de que aquéllas tomen las decisiones  más adecuadas para el tratamiento de los contactos.</font></p>     <p><font face="Arial"><font size="2">De acuerdo a la experiencia de los autores, es este cuadro de sepsis  meningocócica, y no el de meningitis, el más frecuentemente observado en los  casos forenses.    <br></font>    <br> <font size="2">4.2.- RECOMENDACIONES EN EL ESTUDIO HISTOPATOLÓGICO</font></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2"> Se recomienda un estudio histopatológico de todos los órganos. Con el fin de  caracterizar lo más precozmente la naturaleza del posible exudado inflamatorio  de la meninge se puede realizar con una torunda (y en acondiciones de asepsia)  un frotis del mismo para estudio citológico (<a href="#fig7">figura 7</a>), cuyos resultados pueden  ser casi inmediatos en el mismo Servicio de Patología. También se puede hacer en  el momento una tinción de Gram con muestra de LCR. No obstante, sea cual sea el  resultado de estos análisis, este no exime del posterior análisis  microbiológico. Se recomienda fijar el encéfalo completo para su estudio  neuropatológico, si bien previamente se pueden coger 2 ó 3 pequeñas secciones  (de unos 2x2 cm) de la parte superficial del cerebro (incluyendo meninges) para  su rápida fijación (24 horas) y posterior procesamiento y tinción de H/E lo más  precoz posible (resultados en 48-72 horas tras la autopsia si son procesados en  el Instituto de Medicina Legal).    <br></font></p>     <p align="center"><a name="fig7"><img src="/img/revistas/cmf/n37/art01_figura7.jpg" width="575" height="507"></a></p>  <font face="Arial">    <br><b><font size="2"> 5.- MICROBIOLOGÍA:</font></b></font>     <p><font face="Arial"> 5.1.- ¿CUÁNDO HAY QUE REALIZAR UN ESTUDIO MICROBIOLÓGICO?</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> En las autopsias con sospecha clínica o morfológica de meningitis o infección  fulminante primaria sin origen conocido se debería siempre solicitar un estudio  microbiológico.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Las razones para ello son varias:</font></p>     <blockquote>     <p><font size="2" face="Arial"> 1) Varios microorganismos pueden causar el mismo cuadro clínico y los mismos  hallazgos histopatológicos &#091;7&#093;;</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> 2) el exudado purulento puede no ser detectado durante el examen macroscópico de  autopsia, e incluso en las formas fulminantes, tal y como se ha comentado, el  exudado inflamatorio agudo puede no ser evidente en el estudio microscópico;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial"><font size="2"> 3) Por las repercusiones en la salud pública es esencial determinar la identidad  del organismo responsable y en el caso de la meningitis meningocócica también  del serogrupo. Este diagnóstico va a determinar la quimioprofilaxis y la posible  vacunación (no existe vacuna frente al serogrupo B) de los contactos expuestos.    <br> </font> </font></p> </blockquote>     <p><font face="Arial"> 5.2.- PROTOCOLO DE ESTUDIO: MUESTRAS NECESARIAS Y ENVÍO.</font></p>     <p><font face="Arial"><font size="2" face="Arial"> Las principales muestras necesarias para enviar al laboratorio son: sangre,  suero, LCR, orina y vísceras en fresco (<a href="#fig1">Figura 1</a>). Además, si existe efusión  pleural o cualquier otro exudado, es conveniente analizarlo. Como regla general,  en microbiología forense, se considera conveniente la detección del mismo  microorganismo en más de un tejido o fluido corporal. Por este motivo se  aconseja disponer siempre del mayor número posible de muestras. Todas las  muestras deben tomarse en recipientes estériles y su envío debe ser inmediato  desde la toma. Las muestras para estudios antigénicos y moleculares deben  refrigerarse, mientras que se recomienda mantener a temperatura ambiente en vez  de en refrigeración las muestras destinadas a cultivo.     <br> </font>     <br> <font size="2"> 5.2.1.- <u> SANGRE Y SUERO</u></font></font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> De acuerdo a las recomendaciones publicadas en la literatura especializada, la  sangre se debe tomar por punción intracardiaca transcutánea a tórax cerrado y  tras la desinfección de la piel, o mediante punción directa del ventrículo  derecho a tórax abierto. En este último caso, se debe aplicar una espátula al  rojo sobre el miocardio. También es posible extraer la sangre, en idénticas  condiciones de asepsia, de aorta o vena cava inferior. Sin embargo, según la  experiencia de los autores también se consiguen resultados válidos con muestras  recogidas mediante punción directa de una vía periférica (vena axilar o  femoral), previa exposición de la misma en las mejores condiciones posibles de  asepsia.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Se recomienda tomar, al menos, 4 tubos de sangre de 3 ó 5 ml: tres de ellos se  van a destinar al estudio microbiológico:</font></p>     <blockquote>     <p><font size="2" face="Arial"> - Un tubo se destinará al cultivo bacteriológico; se recomienda que este lleve  polianetol sulfonato sódico (SPS) como anticoagulante, o citrato trisódico (TCS).  No se recomienda que este tubo lleve fluoruro sódico como conservante o EDTA  como anticoagulante, ya que ambos son tóxicos para muchos microorganismos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Arial"> - Un tubo se destinará a técnicas moleculares, que deberá contener EDTA sódico  como anticoagulante.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> - Un tubo con activador del coágulo se destinará a la recogida de suero; este  tubo permite que, tras la centrifugación, el suero se separe directamente antes  de llegar al laboratorio.</font></p>     <p><font face="Arial"><font size="2"> - El cuarto tubo, que se reservará para los análisis químicos-toxicológicos,  deberá contener oxalato potásico como anticoagulante y fluoruro sódico como  conservante.</font></font></p> </blockquote>     <p><font size="2" face="Arial"> 5.2.2.- <u>LCR</u>.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Siempre que exista sospecha de meningitis es conveniente la extracción de LCR,  que se hará mediante punción en la cisterna magna (entre los hemisferios  cerebelosos) con aguja larga desde la parte posterior del cuello. Se coloca al  cuerpo en decúbito prono y se inserta la aguja en la línea media bajo la base  del hueso occipital y dirigida levemente hacia arriba &#091;8&#093;. Habrá que manipular  con cuidado para evitar la hemorragia de los pequeños vasos de la zona. Si no se  consigue de esta manera, se podría intentar mediante aspiración a través de  agujero espinal entre L1 y L2.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> La zona de piel donde se va a realizar la punción lumbar se desinfecta con lugol-povidona  al 10 % y se deja secar, procediéndose a la extracción de la mayor cantidad  posible de líquido.     <br>     <br> 5.2.3.- <u> TEJIDOS Y ÓRGANOS EN FRESCO</u></font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Se recomienda el estudio de bazo, hígado, pulmón, miocardio, cerebro, riñón y  glándulas suprarrenales. Se requiere solo una pequeña cantidad de muestra (una  cuña) de cada uno de estos tejidos, que se introduce en un vial estéril. Se  cauteriza una superficie amplia con espátula al rojo y con ayuda de instrumental  estéril se toma un bloque de tejido de 1 cm<sup>3</sup>, empleando un equipo para cada  muestra.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> 5.2.4.- <u>ORINA</u></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial"><font size="2"> Se recoge por punción de la vejiga. Es una muestra útil para el estudio de  antígenos bacterianos, especialmente ante la sospecha de <i> S. pneumoniae</i>.    <br>     <br> </font> 5.3.- ESTUDIO MICROBIOLÓGICO: TÉCNICAS DE LABORATORIO.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> El protocolo microbiológico ante una sospecha de infección meningocócica o de  shock séptico fulminante se realiza sistemáticamente desde 2001 en el  Departamento de Madrid del INTCF, al que se pueden enviar las muestras antes  indicadas desde cualquier punto del país (<a href="#fig1">Figura 1</a>). Este protocolo consta de  las siguientes fases:    <br>     <br> 5.3.1.- <u> DETECCIÓN DE ANTÍGENOS BACTERIANOS</u></font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Investiga la presencia de las bacterias que más frecuentemente son responsables  de infecciones fulminantes (meningitis y shock séptico) mediante la detección de  sus antígenos en suero, LCR, exudado pleural y orina.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Se trata de unas técnicas rápidas (1/2 hora), sensibles y que no suelen  presentar falsos positivos. Su carácter es presuntivo, por lo que se deben  confirmar mediante análisis moleculares y/o cultivo bacteriano. Estas técnicas  son:</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> 5.3.1.1.- <b> Aglutinación en látex</b>, que detecta antígenos polisacarídicos  capsulares de <i> N. meningitidis</i> serogrupos A, B, C, Y y W135, <i> S. pneumoniae</i>, <i> H.  influenzae</i> serotipo b, <i> Streptococcus</i> &#946; hemolítico del  grupo B (<i>S. agalactiae</i>) y <i> Escherichia coli</i> K12 &#091;9&#093;. Esta técnica se ha validado  en muestras forenses y ha demostrado su utilidad para el diagnóstico de  infecciones fulminantes por estos agentes. &#091;1,10&#093;. El protocolo del INTCF  incluye el empleo conjunto de dos kits comerciales diferentes, lo que permite  confirmar tanto los resultados positivos como los negativos. Las muestras  necesarias son suero, LCR y orina.</font></p>     <p><font face="Arial"><font size="2"> Aunque en general esta técnica no tiene una sensibilidad muy alta, en el caso de  infecciones fulminantes con evolución fatal suele existir una alta concentración  de antígenos circulantes, por lo que la sensibilidad es mayor que en muestras  clínicas de individuos vivos. Además, cuando las muestras forenses se hallan en  buen estado de conservación, se suele obtener una adecuada correlación con la  PCR &#091;10&#093;.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font>     <br> <font size="2"> 5.3.1.2.- <b> Inmunocromatografía</b>. Esta técnica se aplica a la detección de  antígenos capsulares de S. pneumoniae, siendo el LCR la muestra de elección.    <br>     <br> 5.3.1.3.- <b> Inmunoensayo para detección de antígeno de Streptococcus pyogenes</b> (&#946; hemolítico  del grupo A).</font></font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Este método, inicialmente diseñado para los exudados faríngeos &#091;11&#093;, también ha  sido aplicado satisfactoriamente por los autores a la detección de infección  fulminante por S. pyogenes en suero, líquido pleural y LCR.    <br>     <br> 5.3.2.- <u> DIAGNÓSTICO MOLECULAR.</u></font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Consiste en la detección de genes específicos de los microorganismos patógenos  con la técnica de PCR. La presencia de ADN de patógenos en muestras forenses  consideradas estériles (sangre, LCR, líquido pleural...) se considera  diagnóstica. Se trata de técnicas muy específicas y sensibles, que permiten la  detección de algunos microorganismos lábiles cuyo crecimiento en medios de  cultivo a partir de muestras forenses es difícil (<i>N. meningitidis</i>, <i> S. pneumoniae</i>  etc.). Por este motivo y por su rapidez (3 horas), esta tecnología presenta  grandes ventajas frente al cultivo. Se trata de técnicas no comerciales, basadas  en estudios de diversos Centros de Referencia de Microbiología (Instituto  Nacional de la Salud Pública de Manchester, CDC e Instituto Pasteur) &#091;12,13,14&#093;  y que han sido validadas en el INTCF para su empleo forense.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> Las muestras que se pueden analizar son sangre, suero, LCR, líquido pleural y  tejidos y órganos en fresco (corazón, pulmón, bazo, hígado, riñón, suprarrenales  y cerebro). Excepcionalmente se podrían analizar cortes de parafina de muestras  fijadas con formol mediante técnicas de PCR; sin embargo, el rendimiento de  estas técnicas es mucho menor que cuando se aplican a muestras en fresco, ya que  el tratamiento con formol fragmenta y altera el ADN.</font></p>     <p><font size="2" face="Arial"> En el INTCF la detección de material genético se realiza mediante ensayos de PCR  a tiempo real con oligonucleótidos y sondas Taq-Man MGB diseñados para  amplificar regiones específicas de cada una de las especies estudiadas. Esta  técnica permite cuantificar la cantidad del producto de amplificación obtenido,  correlacionándolo con unas medidas de fluorescencia que se monitorizan  automáticamente, por lo que también se le denomina PCR cuantitativa. En el  supuesto de meningitis bacteriana y/o shock séptico fulminante, se analizan los  siguientes agentes:</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<blockquote>     <p><font size="2" face="Arial"> 1.- Investigación de <i> N. meningitidis</i> mediante detección del gen ctr-A, común a  todas los serogrupos de esta especie.    <br>     <br> 2.- Detección de los serogrupos B, C, W135 e Y de <i> N. meningitidis</i> mediante el  análisis del gen siaD.    <br>     <br> 3.- Investigación de <i> S. pneumoniae</i> mediante detección del gen de la pneumolisina  ply.    <br>     <br> 4.- Investigación de <i> H. influenzae</i> mediante detección del gen bex-A que codifica  la exportación del polisacárido capsular.</font></p> </blockquote>     <p><font size="2" face="Arial">     <br> Concretamente, aunque existen otras técnicas basadas en la PCR, consideramos que  la PCR a tiempo real es la más adecuada para aplicar a muestras forenses ante el  supuesto de shock séptico o meningitis meningocócica, dada la necesidad de  detectar o excluir con la mayor rapidez posible la presencia de N. meningitidis,  puesto que esta permite obtener un resultado fiable solo en unas horas desde el  inicio del análisis.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> 5.3.3.- <u>CULTIVO BACTERIOLÓGICO</u></font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> En microbiología clínica el cultivo bacteriano es la técnica de referencia o "gold  standard"; no obstante, en microbiología forense no siempre se ha considerado  como útil, dado el elevado grado de contaminación de las muestras, que se suele  deber a la falta de asepsia durante la toma. Otra razón de su menor utilidad es  que aquellos microorganismos más lábiles pueden no crecer en los medios de  aislamiento, ocasionando falsos negativos. No obstante, un resultado positivo en  el aislamiento de bacterias patógenas no ofrece dudas acerca de su  interpretación, aportando siempre datos claves para establecer la etiología de  la causa de muerte &#091;15&#093;. Por ello, consideramos que en microbiología forense no  se debe prescindir del cultivo, sino que este debe complementarse con otras  técnicas como las antigénicas y moleculares &#091;16&#093;.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Ante la sospecha de una meningitis bacteriana o un shock séptico fulminante,  aunque las técnicas moleculares permiten la detección específica, rápida y  sensible de los patógenos investigados, es conveniente realizar también un  cultivo para aislar la bacteria responsable de la muerte. Este tendría dos  objetivos fundamentales: confirmar los resultados moleculares y antigénicos, y  caracterizar la cepa de la bacteria aislada con fines epidemiológicos. Estos  resultados se suelen obtener entre 24 y 72 horas.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> El cultivo bacteriológico se puede efectuar en sangre (hemocultivos), LCR,  líquido pleural y tejidos y órganos en fresco, pudiendo realizarse una tinción  de Gram en el LCR como técnica de screening previo &#091;9&#093;.</font> </p>     <p><b><font face="Arial" size="2">6.- RECOMENDACIONES SANITARIAS:</font></b> </p>     <p><font face="Arial"> 6.1.- INFORMACIÓN A LAS AUTORIDADES SANITARIAS COMPETENTES.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Las meningitis bacterianas son enfermedades de declaración obligatoria. Ante su  sospecha se debe realizar una declaración urgente a la Unidad de Vigilancia  Epidemiológica de la Dirección Territorial de Sanidad (Consejería de Salud). En  el caso de infección meningocócica, una vez conocido el serogrupo se deberá  comunicar con la mayor rapidez posible para valorar la necesidad de vacunación  de los contactos no vacunados. Tras aislar la cepa, esta deberá ser analizada  para su tipado.    <br>     <br> </font><font face="Arial"> 6.2.- MANEJO DE LOS CONTACTOS.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2"> La recomendación de quimioprofilaxis a los contactos estrechos en un caso de  enfermedad meningocócica deberá realizarse tan pronto como sea posible,  idealmente en las primeras 24 horas después del diagnóstico. Si por alguna razón  no se hubiera podido detectar antes, incluso se podría iniciar hasta un plazo de  10 días después de los síntomas; no obstante, su eficacia es dudosa pasado dicho  tiempo. Para la instauración temprana de las medidas preventivas es importante  un diagnóstico precoz. En los casos debidos a serogrupos para los que se dispone  de vacuna, se recomienda su administración para evitar los casos secundarios  tardíos, ya que su efecto se produce tras 10-15 días de su administración.    <br>     <br> </font><font face="Arial"> 6.3.- RECOMENDACIONES PARA EL PERSONAL SANITARIO.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Aquel personal sanitario que ha realizado maniobras de resucitación boca a boca,  se considera con riesgo de enfermedad alto y se recomienda quimioprofilaxis. Por  el contrario, para el personal sanitario sin exposición directa a las  secreciones orales del paciente la quimioprofilaxis no es recomendada al  considerarse de riesgo bajo.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> En el caso del personal sanitario de autopsias no existen unas instrucciones  claras sobre profilaxis. Con relación a la vacuna conjugada frente al  meningococo C, esta es muy eficaz, de larga duración (teóricamente y por los  estudios realizados hasta el momento, confiere inmunidad para toda la vida,  aunque hay que señalar que dichos estudios no tienen más de 5 años) y poco  reactógena, por lo que podría estar recomendada al personal sanitario de  autopsias, si bien el número de casos detectados es bajo. Por este motivo, no se  han definido líneas de actuación al respecto. Otra posibilidad, es la vacunación  o profilaxis de este personal una vez que se ha detectado el caso y se ha  identificado el serogrupo responsable en el laboratorio. Por otro lado, debido  al potencial riesgo de contagio durante la autopsia, se recomiendan medidas de  protección durante esta y durante el tratamiento posterior de las muestras en  laboratorio, como son el empleo de guantes, mascarilla, gafas, así como la  manipulación de las muestras en campana de seguridad biológica de tipo II y su  centrifugación en tubos cerrados empleando centrífugas con tapa de seguridad.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> <b>AGRADECIMIENTOS:</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Este artículo no sería posible sin la inestimable colaboración de Mª Paz Suárez-Mier  y Beatriz Aguilera Tapia, patólogas del Servicio de Histopatología del  Departamento de Madrid del INTCF, cuya gran experiencia en los estudios de  muerte súbita ha sido de gran valía para los autores.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> También queremos resaltar la inapreciable ayuda prestada por todos los  profesionales que participan en la aplicación a la rutina diaria del protocolo  de trabajo aquí presentado: técnicos especialistas de laboratorio del Servicio  de Biología del Departamento de Madrid del INTCF y del Servicio de Patología de  Bizkaia (en particular la de Mª José Burguete García y Esther Espinosa de los  Monteros en Madrid y Aida Larrañaga en Bizkaia), así como los auxiliares de  autopsia de Bizkaia (Jon Txomin Martín, Kontxi Moreno; Ricardo Ballesteros,  Itziar Turienzo; Juan Ojanguren, Diego Burón y Jose Ignacio Raño).<font face="Wingdings">q</font></font></p>      <p>    <br><font face="Arial" size="2"><b>BIBLIOGRAFÍA:</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">1.- Challener RC, Morrissey AM, Jacobs MR: Postmortem diagnosis of meningococcemia by detection of capsular polysaccharides. J. Forensic Sci. 1988; 33: 336-346.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549766&pid=S1135-7606200400030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">2.- McGee ZA, Baringer JR. Acute meningitis. En: Mandell GL, Douglas RG, Bennett JE. Principles and Practice of Infectious Diseases, 3rd edition, Churchill Livingstone, New York, 1990. pp. 741-755.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549767&pid=S1135-7606200400030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">3.- Enfermedad meningocócica. Informe de la temporada 2002-03. Boletín epidemiológico de la Comunidad de Madrid. Vol 10, nº 3, marzo 2004.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549768&pid=S1135-7606200400030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">4.- Vázquez JA: Enfermedad meningocócica y vacunación: un nuevo escenario. Vacunas 2001; 2, Supl. 2:1-4.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549769&pid=S1135-7606200400030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">5.- Cano Portero R, García Delgado C, de Mateo Ontanon S: Meningococcal disease. The situation in Spain in the 1998-1999 period. Rev. Esp. Salud Publica. 2000; 74: 369-375.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549770&pid=S1135-7606200400030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">6.- Castell C, García Calabuig MA, Tobalina MC, Robertson M: Profilaxis de la infección meningocócica. Departamento de Sanidad de la Comunidad Autónoma del País Vasco. Vitoria-Gasteiz, 2004.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549771&pid=S1135-7606200400030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">7.- Chaudhuri AK, Hartley RB, Maddocks AC: Waterhouse-Friderichsen syndrome caused by a DF-2 bacterium in a splenectomised patient. J. Clin. Pathol. 1981; 34: 172-173.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549772&pid=S1135-7606200400030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">8.- Ludwig J, Handbook of Autopsy Practice, 3º ed. Human Press. New Jersey, 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549773&pid=S1135-7606200400030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">9.- Apicella MA. Neisseria meningitidis. En: Mandell GL, Douglas RG, Bennett JE. Principles and Practice of Infectious Diseases, 3rd edition, Churchill Livingstone, New York, 1990. pp. 1600-1613.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1549774&pid=S1135-7606200400030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2">10.- Fernández-Rodríguez A, Vázquez JA, Suárez-Mier MP, Aguilera B, Ballesteros S, de la Fuente L, Vallejo G, Sancho M: Latex agglutination for bacterial antigens and meningococcus PCR: two useful tools in legal sudden deaths. Forensic Sci. 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