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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Guerra Civil Española (1936-1939): identificación de restos humanos procedentes de fosas comunes en Cataluña mediante análisis de ADN Mitocondrial. A propósito de un caso]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Spanish Civil War (1936-1939): identification of human remains from mass graves in Catalonia using mitochondrial DNA analysis. A case report]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The identification of missing people during the Spanish civil war has become a subject of social interest. The present work describes the identification of the first corpse from a mass grave exhumed in Catalonia. As confirmatory technique to the classic methodology used in the identification of human skeletal remains (anthropometrics, dental charts...) forensic science finds in the DNA analysis an useful tool. The identification was carried out analyzing the control region of mitochondrial DNA due to the antiquity of the human remains (approximately 65 years) and because the only available sample of reference came from a distant maternal relative (niece). The sequencing products were analyzed using the genetic analyzer ABI PRISM 310 (AB). After fulfilling all the requirements of acceptance of the sequences and eliminated the possible presence of contaminations, a match was observed between the mtDNA sequences obtained for both samples, femur and the sample of reference contributed by the relative. The obtained sequence was 16298C, 263G, 315.1C and only one ocurrence of this sequence was observed in a database of 2192 Caucasian individuals (frequency 0,0013). The obtained results support the fact that when conventional nuclear DNA typing is not possible the analysis of mtDNA becomes an useful and powerful tool.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font face="Arial" size="5"><b>Guerra Civil Española (1936-1939): identificación de restos humanos  procedentes de fosas</b></font> <font face="Arial" size="5"><b>comunes en Cataluña mediante análisis de ADN Mitocondrial.  A propósito de un caso.    <br> </b></font><font face="Arial" size="4"><i>Spanish Civil War (1936-1939): identification of human remains from mass graves  in Catalonia using mitochondrial DNA analysis. A case report.</i></font> </p>  <hr>     <p><font face="Arial" size="3"><b>M. Crespillo<sup>1</sup>, M. Paredes<sup>1</sup>, J. Arimany<sup>2</sup>, L. Guerrero<sup>3</sup> y JL. Valverde<sup>4</sup></b></font></p> <hr> <table border="0" width="100%">   <tr>     <td width="48%" valign="top">           <p><b><font face="Arial" size="2">RESUMEN</font></b></p>     <p><b> <font face="Arial" size="2"> La identificación de personas desaparecidas durante la Guerra Civil española se  ha convertido en un tema de interés social. El presente trabajo describe la  identificación del primer cadáver exhumado en Cataluña procedente de una fosa  común de la guerra civil. Como técnicas confirmativas a la metodología clásica  empleada en la identificación de restos humanos (antropométricas, fórmula del  análisis dental...) la ciencia forense encuentra en el análisis del ADN una  herramienta útil. La identificación se llevó a cabo analizando la región de  control del ADN mitocondrial debido a la antigüedad de los restos humanos  (aproximadamente 65 años) y a que la única muestra de referencia disponible  procedía de un lejano pariente materno (sobrina). Los productos de secuenciación  fueron analizados utilizando un ABI PRISM 310 (AB). Tras cumplir con todos los  requisitos de aceptación de las secuencias y descartada la posible presencia de  contaminaciones eventuales, se observó una total coincidencia entre las  secuencias del ADNmt del fémur y la muestra de referencia aportada por el  familiar. La secuencia obtenida era 16298C, 263G, 315.1C y después de consultar  una base de datos de 2192 individuos caucásicos esta secuencia fue observada una  vez, de modo que la frecuencia de esta secuencia es de 0.0013. Los resultados  obtenidos apoyan el hecho de que cuando los análisis convencionales de ADN  nuclear son inviables el análisis de ADNmt se convierte en una útil y poderosa  herramienta.</font></b></p>           <p><b><font face="Arial" size="2">Palabras clave: ADN mitocondrial, PCR,  Restos Humanos, Medicina Forense, Guerra Civil Española, Identificación.</font></b></p>     </td>     <td width="4%">           <p></td>     <td width="48%" valign="top">           <p><b><font face="Arial" size="2">ABSTRACT</font></b></p>           <p><font face="Arial" size="2"> The identification of missing people during the Spanish civil war has become a  subject of social interest. The present work describes the identification of the  first corpse from a mass grave exhumed in Catalonia. As confirmatory technique  to the classic methodology used in the identification of human skeletal remains       (anthropometrics, dental charts...) forensic science finds in the DNA analysis  an useful tool. The identification was carried out analyzing the control region  of mitochondrial DNA due to the antiquity of the human remains (approximately 65       years) and because the only available sample of reference came from a distant  maternal relative (niece). The sequencing products were analyzed using the  genetic analyzer ABI PRISM 310 (AB). After fulfilling all the requirements of  acceptance of the sequences and eliminated the possible presence of       contaminations, a match was observed between the mtDNA sequences obtained for  both samples, femur and the sample of reference contributed by the relative. The  obtained sequence was 16298C, 263G, 315.1C and only one ocurrence of this  sequence was observed in a database of 2192 Caucasian individuals (frequency  0,0013). The obtained results support the fact that when conventional nuclear  DNA typing is not possible the analysis of mtDNA becomes an useful and powerful       tool.    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b> Key words: Mitochondrial DNA, PCR,  Human Remains, Forensic Medicine, Spanish Civil War, Identification.</b></font></td>   </tr> </table>     <p>&nbsp;</p> <hr> <table border="0" width="100%">   <tr>     <td width="33%"><b><font face="Arial" size="2">Fecha de recepción</font></b><font face="Arial" size="2">: 31.MAR.05       </font></td>     <td width="33%"></td>     <td width="34%"><b><font face="Arial" size="2">Fecha de aceptación</font></b><font face="Arial" size="2">: 17.JUN.05       </font></td>   </tr> </table>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Correspondencia</b>: Dr. Manuel Crespillo Márquez. Servicio de Biología. Instituto  Nacional de Toxicología y Ciencias Forenses.&nbsp;    <br>  Calle Merced, nº 1. 08002  Barcelona. Telf. 93 317 40 61. Fax 93 318 25 30. E-mail: <a href="mailto:manuel.crespillo@mju.es">manuel.crespillo@mju.es</a></font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><sup> 1</sup> Facultativo del Servicio de Biología del INTCF. Departamento de Barcelona.     <br> <sup> 2</sup> Médico Forense y Director del Instituto de Medicina Legal de Cataluña.    <br> <sup> 3</sup> Médico de la Fundación Althaia. Barcelona.     <br> <sup> 4</sup> Director del INTCF. Departamento de Barcelona.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2"> En los últimos años en España diferentes colectivos sociales representados  fundamentalmente por familiares de personas desaparecidas durante la guerra  civil revindican lo que se ha venido en llamar "el reconocimiento de la memoria  histórica". A esta sensibilidad no ha sido ajeno el Parlamento de Cataluña y en  el año 2003 se acordó crear una comisión multidisciplinar de expertos con la  intención entre otras cuestiones de realizar la identificación de cadáveres  procedentes de fosas comunes ubicadas en Cataluña. </font>     <p><font face="Arial" size="2"> En el presente trabajo se describe la identificación mediante pruebas de  análisis genético del primer cadáver exhumado de una fosa común de la Guerra  Civil Española (1936-1939) en Cataluña.</font>     <p><font face="Arial" size="2"> En ocasiones, la identificación de cadáveres mediante las técnicas clásicas de  la medicina forense (huellas dactilares, fórmula dentaria, medidas  antropológicas…) no permiten definir con precisión la identidad de unos restos  cadavéricos y es necesario recurrir a técnicas de análisis de ácido  desoxirribonucleico (ADN).</font>     <p><font face="Arial" size="2"> En las dos últimas décadas los avances en biología molecular han permitido dotar  a la medicina forense con una valiosísima herramienta para la resolución de  casos judiciales tanto en el ámbito penal como en el civil. Efectivamente, hoy  mediante el análisis de polimorfismos de ADN somos capaces de precisar con altos  índices de probabilidad el autor de una violación, un homicidio o la identidad  de un cadáver.</font>     <p><font face="Arial" size="2"> Desgraciadamente existen dos factores como son el tiempo transcurrido y la  condiciones medioambientales (humedad, temperatura…) que ocasionan una  degradación del material genético. Esta circunstancia hace que al quedar  afectado el ADN su análisis mediante marcadores genéticos nucleares sea en  ocasiones inviable. La medicina forense dispone en la actualidad de otra  estrategia para este tipo de muestras, se trata del análisis del ADN ubicado en  las mitocondrias y al que conocemos como mitocondrial (ADNmt).</font>     <p><font face="Arial" size="2"> La molécula de ADNmt es una molécula circular y cerrada de 16569 pares de bases.  La proporción de las cuatro bases es desigual en ambas hebras, de manera que una  de ellas es rica en adeninas y guaninas (hebra pesada ) mientras que la otra es  rica en citosinas y timinas (hebra ligera).</font>     <p><font face="Arial" size="2"> La zona del ADNmt más comúnmente empleada con fines forenses es una región  caracterizada por una alta variabilidad entre individuos llamada región de  control o <i>d-loop</i>. Dentro de dicha zona se encuentran ubicadas dos regiones  llamada región hipervariable 1 (HV1) que se extiende entre las bases 16024 y  16365 y la región hipervariable 2 (HV2) comprendida entre las bases 73 y 340 (<a href="#F1">Fig. 1</a>). La región de control no codifica para proteínas, ARNs de transferencia  o RNAs ribosómicos, sin embargo en ella se encuentran ubicados los promotores de  las hebras pesada y ligera, sitios de unión para factores de transcripción  mitocondrial o el origen de replicación de la hebra pesada.</font>     <p align="center">&nbsp; <a name="F1"><img src="/img/cmf/n38/imagenes/Art04-Figura1.jpg" width="349" height="424"></a>     <p><font face="Arial" size="2"> Existen tres características que hacen del ADNmt una herramienta idónea para la  resolución de casos como el que aquí se describe. En primer lugar, mientras que  el ADN nuclear está presente en dos copias por célula diploide el número de  moléculas de ADNmt por célula puede oscilar entre 1000 y 10000 moléculas [1].  Esta circunstancia hace viables análisis genéticos cuando estamos ante material  biológico con escasa cantidad de ADN nuclear o ADN parcialmente degradado. En  segundo lugar, se ha constatado que en las regiones sometidas a estudio (HV1 y  HV2) el índice de mutación es entre 5 y 10 veces superior al que acontece en el  ADN nuclear. [2-3]. Por último, el ADNmt es heredado por vía materna [4], de  manera que salvo que ocurran procesos de mutación, todas las personas que estén  emparentados por vía materna poseerán el mismo ADNmt. Esta propiedad es  sumamente importante puesto que nos va a permitir identificaciones de restos  cadavéricos incluso habiendo transcurrido varias generaciones [5-6]. </font>     <p><font face="Arial" size="2"><b>MATERIAL Y MÉTODOS:</b></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">Todo el proceso de análisis genético fue realizado en el Servicio de  Biología del Instituto Nacional de Toxicología y Ciencias Forenses del  Departamento de Barcelona.    <br>     <br> <b> Organización del laboratorio y aceptación de secuencias.</b> </font> </p>     <p><font face="Arial" size="2"> El gran enemigo que afrontan los laboratorios que practican análisis genéticos  con fines forenses se llama contaminación. La aparición de material genético  exógeno al propio de la evidencia ocasiona resultados no interpretables y en  algunos casos absolutamente erróneos. Esta circunstancia se agudiza  especialmente en aquellas muestras en las que la cantidad de ADN presente es muy  escasa. Es por tanto muy importante seguir unas medidas orientadas a minimizar  la aparición de contaminaciones. Durante todo el proceso de extracción y  amplificación se empleó bata, mascarilla y guantes que fueron cambiados con  frecuencia. La extracción de muestras, tanto dubitadas (huesos) como indubitadas  (saliva y pelos), se llevó a cabo en campanas de flujo laminar; asimismo la  extracción de muestras dubitadas e indubitadas se realizó con un intervalo de  tiempo y en habitaciones separadas. Reactivos y tubos fueron autoclavados  previamente a su uso. Con el fin de chequear reactivos en los pasos de  extracción y amplificación se emplearon blancos control. La secuenciación de las  regiones HV1 y HV2 se realizó tanto en sentido 5'-3 como en el sentido inverso  3'-5'. Todas las extracciones y amplificaciones se llevaron a cabo por dos  personas por separado y de la misma forma se contrastaron los resultados  obtenidos, asimismo estos resultados finales fueron cotejados con las secuencias  de ADNmt del personal del laboratorio. Hasta que no se dispuso de la secuencia  correspondiente al fémur no se solicitó la muestra de refencia para su cotejo,  impidiendo de esta manera cualquier posibilidad de cambio de muestras en el  laboratorio.</font> </p>     <p><font face="Arial" size="2"> Las secuencias finales se aceptaron cuando se cumplían todos los requisitos que  a continuación describimos:</font> </p>     <blockquote>     <p><font face="Arial" size="2"> 1. Blancos control de extracción y amplificación eran negativos.    <br> 2. Lecturas de secuenciación, para cada una de las regiones, coincidentes en  sentido 5'-3' y 3'-5'.    <br> 3. Resultados finales de secuencia coincidente para los extractos independientes  realizados por dos operarios.    <br> 4. No coincidencia de los resultados finales con las secuencias del personal del  laboratorio.</font> </p> </blockquote>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2"><b>Muestras</b></font><font face="Arial" size="2"><b>.</b> </font> </p>     <p><font face="Arial" size="2"> A tenor de la información proporcionada por gente del lugar en la fosa que se  exhumó en Prat de Lluçanes (Osona-Cataluña-), cabía esperar la aparición de seis  soldados republicanos y un civil. El trabajo antropológico sobre los restos  óseos aparecidos permitió seleccionar que cadáver podría corresponder con el  civil, siendo muestras de este cadáver las que fueron remitidas al laboratorio  para confirmar su identidad. Se remitió un fémur derecho y otro izquierdo de  aproximadamente 51cm de longitud del cadáver que se presumía podía ser el civil.  Una vez recibidas estas muestras se almacenaron a -20 ºC hasta su análisis. Con  posterioridad se proporcionó muestras de referencia consistente en saliva y  pelos con raíz procedentes de un presunto familiar, concretamente una sobrina  por línea materna de la persona a la que presumiblemente se esperaba que  perteneciesen los huesos (<a href="#F2">Fig. 2</a>). </font> </p>     <p align="center"><a name="F2"><img src="/img/cmf/n38/imagenes/Art04-Figura2.jpg" width="388" height="337"></a></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Extracción de material genético.</b></font>     <p><font face="Arial" size="2"> Para obtener el ADN a partir de las muestras indubitadas de saliva y pelo se  empleó un método clásico de extracción mediante disolventes orgánicos y  posterior concentración con Microcon-100 (Millipore, Billerica, MA, USA).</font>     <p><font face="Arial" size="2"> Se emplearon aproximadamente 2 gr de la porción central de fémur para la  extracción de ADN. Con el fin de eliminar todo el posible material contaminante  que el hueso pudiera presentar en su capa más externa se limpió este con papel  abrasivo de lija. Tras este paso se recuperaron 2 gr de fino polvo de hueso con  la ayuda de una lima que se depositaron en tubos de 50 mL con 8 mL de EDTA 0,5 M  pH 7,5 , 1 mg/ml de proteinasa K (10 mg/mL) y 6 % de sodio dodecil sulfato (SDS).&nbsp;</font>     <p><font face="Arial" size="2">  Los tubos se pusieron en agitación a 56 ºC durante 18 h. El polvo de hueso no  digerido fue sedimentado por centrifugación y el sobrenadante fue decantado a  otro tubo de 50 mL. El extracto fue limpiado de proteínas con el uso de  fenol:cloroformo:isoamílico (25:24:1) y posteriormente el ADN se concentró y  liberó de posibles inhibidores mediante ultrafiltración en columnas Centricon-100  (Millipore, Billerica, MA, USA).    <br>     <br> <b> Cuantificación de ADN.</b></font>     <p><font face="Arial" size="2"> La calidad del ADN extraído se estimó mediante el empleo de electroforesis  submarina en minigeles de agarosa y posterior tinción con bromuro de etidio.</font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2"> La cantidad de ADN humano procedentes tanto de las muestra de fémur como de las  muestras indubitadas de saliva y pelo se cuantificó mediante hibridación con la  sonda D17Z1 primate específica utilizando el kit Quantiblot™ (Applied Biosystems,  Foster City, USA). (<a href="#F3">Fig 3</a>).</font>     <p align="center">    <br> <a name="F3"><img src="/img/cmf/n38/imagenes/Art04-Figura3.jpg" width="459" height="361"></a>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Amplificación y secuenciación.</b> </font>     <p><font face="Arial" size="2"> Las zonas sometidas a análisis fueron las regiones HV1 comprendida entre los  nucleotidos 16024 y 16365 y la región HV2 ubicada entre las bases 73 y 340. La  numeración de las bases se hace en función a la asignación realizada en la  primera secuenciación del ADNmt por Anderson y cols [7] que sirve como secuencia  de referencia en el campo forense y es conocida como CRS (Cambridge Reference  Sequence). Los primers empleados en la amplificación de ambas regiones son los  descritos por Wilson y cols [8]. La región HV1 fue amplificada con la pareja de  primers L15997 y H16395 mientras que para la región HV2 se emplearon los primers  L048 y H408. La <a href="#T1"> tabla 1</a> describe la secuencia de cada uno de los primers  empleados. La reacción de amplificación se llevó a cabo en un termociclador  GeneAmpPCR System 2400 (Applied Biosystems, Foster City, USA). Las  amplificaciones de cada una de las regiones se llevó a cabo por separado y cada  reacción de amplificación contenía 5 pmol de cada primer, 50 mM de KCl, 10 mM  Tris-HCl (pH 8.3), 1.5 mM de MgCl<sub>2</sub>, 0,001% de gelatina, 200 µM de cada  nucleótido, 5U de AmpliTaqGold polimerasa (Applied Biosystems, Foster City,  USA). </font>     <p align="center"><a name="T1"><img src="/img/cmf/n38/imagenes/Art04-Tabla1.jpg" width="333" height="157"></a></p>     <p><font face="Arial" size="2">Los extractos de ADN procedentes de  las muestras de hueso fueron amplificados en un volumen final de 50 µl y con la  adición de 0,2 mg/ml de BSA (suero de albúmina bovina) para minimizar la acción  de inhibidores de la PCR y que presumiblemente cabe esperar en muestras de la  antigüedad de estas (65 años). Se utilizaron para la amplificación entre 1 y 3  µl de extracto mientras que de las muestras indubitadas bastó con 1µ con un  volumen final de 25 µl, no teniéndose que emplear BSA.</font>     <p><font face="Arial" size="2"> Con el fin de minimizar el riesgo de contaminación se amplificaron por separado  las muestras dubitadas e indubitadas. La no presencia de ADN contaminante en los  reactivos empleados en la amplificación se chequeó mediante la amplificación de  un blanco de reactivos.</font>     <p><font face="Arial" size="2"> La eficiencia de la amplificación se evaluó mediante electroforesis submarina en  minigeles de agarosa y posterior tinción con bromuro de etidio. Los productos de  amplificación tanto de las muestras problema como de los controles negativos de  extracción y amplificación se compararon con patrones de concentración y  longitud conocidos (<a href="#F4">Fig 4</a>).</font>     <p align="center"><a name="F4"><img src="/img/cmf/n38/imagenes/Art04-Figura4.jpg" width="401" height="401"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial" size="2">El material amplificado se purificó  de nucleótidos y primers no incorporados mediante ultrafiltración en columnas  Centricon-100 (Millipore, Billerica, MA, USA).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Se emplearon 3 µl de producto de PCR purificado para llevar a cabo la reacción  de secuenciación para la que se utilizó el kit BigDye™ Cycle Sequencing (Applied  Biosystems, Foster City, USA), siguiendo las instrucciones del suministrador. La  posterior eliminación de terminadores no incorporados se consiguió mediante el  empleo de columnas Centri-Sep™ (Princepton Separations Inc).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> La lectura de secuencias fue llevada a cabo en un secuenciador automático ABI  PRISM™ 310 (Applied Biosystems, Foster City, USA) y para la posterior edición e  interpretación de resultados se empleó el software SeqScape™ desarrollado por  Applied Biosystems (versión 2.1.1).</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"><b>Evaluación de los resultados.</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> En aquellos casos en los que no se puede excluir que las muestras dubitadas e  indubitadas puedan proceder de la misma línea materna es conveniente aportar  algún parámetro estadístico que nos de idea del peso de dicha coincidencia. Tal  y como recoge la Internacional Society of Forensic Genetics (ISFG ) [9] y el  European DNA profiling group (EDNAP) [10] en sendas publicaciones, lo  aconsejable para poder calcular la probabilidad (p) con la que se presenta una  determinada secuencia es realizar un contaje del número de veces que esa  secuencia aparece en una base de datos y posteriormente aplicarle un factor de  corrección por error de muestreo tales como un cálculo del intervalo de  confianza [11] o la corrección de Balding y Nichols [12]. Estos factores de  corrección son necesarios puesto que en las bases de datos de las que se dispone  en la actualidad es relativamente escaso el número de secuencias y es de esperar  que vayan apareciendo con cierta frecuencia variantes que no se encuentran aún  en ellas.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2">En el presente trabajo las secuencias se evaluaron empleando el factor de corrección de Balding y Nichols:</font> </p>     <p align="center"> <font face="Arial" size="2">p = x + 2/n + 2</font>     <p><font face="Arial" size="2">Donde <i> x</i> es el número de observaciones  de la secuencia obtenida en una base de datos de n individuos.</font></p>      <p><font face="Arial" size="2"> Asimismo, una vez conocida la probabilidad con la que aparece una determinada  secuencia en una base de datos, según recomienda la ISFG, lo deseable es  realizar una aproximación bayesiana de dicha coincidencia entre muestra dubitada  e indubitada, y para ello se enfrentan hipótesis alternativas. Se emplea para  ello el índice de verosimilitud o "<i>likelihood ratio</i>&quot; (LR) [13].</font></p>      <p><font face="Arial" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSIÓN:</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font face="Arial" size="2"> La cuantificación de las muestras de hueso sometidas a análisis puso de  manifiesto la presencia de cantidades de ADN nuclear ligeramente inferiores a  156 pgr (<a href="#F3">Fig. 3</a>).</font></p>      <p> <font face="Arial" size="2"> El análisis del minigel de los productos amplificados de los extractos de ADN de  fémur (<a href="#F4">Fig. 4</a>) nos indicó que, a pesar de observarse un alto grado de  degradación en dichas muestras, el resultado de la reacción de amplificación fue  eficiente para fragmentos de aproximadamente 340 pb (HV1) y 290 pb (HV2). Previa  a esta eficiente amplificación se había realizado una primera amplificación en  un volumen final de 25 µl y sin emplear BSA, no obteniéndose resultado alguno.  Se comprobó que la causa de esta infructuosa reacción de amplificación era  achacable probablemente a la presencia de inhibidores en el extracto de ADN,  puesto que al incorporar en el mismo tubo de amplificación el mismo volumen de  ADN empleado en la amplificación cuyo resultado había sido negativo y un control  positivo el resultado final de la amplificación también fue negativo. Con el fin  de diluir los inhibidores se aumentó el volumen del tubo de la reacción de PCR a  50 µl y se incorporó una sustancia que facilita la reacción de PCR como es el  BSA, obteniéndose así resultados positivos en este caso.</font></p>      <p> <font face="Arial" size="2"> Las muestras indubitadas mostraron resultados de amplificación ampliamente  satisfactorios sin tener que recurrir a empleo de un doble volumen de  amplificación ni BSA. Quedó garantizada la ausencia de ADN contaminante en las  reacciones de extracción y amplificación por los resultados negativos en la  amplificación de los blancos de extracción y amplificación.</font></p>      <p> <font face="Arial" size="2"> La secuencia de nucleótidos obtenida para las regiones HV1 y HV2 del ADNmt fue  completamente coincidente entre las dos extracciones realizadas sobre los huesos  (fémur derecho y fémur izquierdo). En la región HV1 presentaba una discrepancia  con respecto a la CRS en la posición 16298, concretamente una transición de una  timina a citosina. La región HV2 presentó dos discrepancias sumamente usuales,  por una parte una transición de adenina a guanina en la posición 263 y la  inserción de una citosina en la posición 315. (<a href="#F5">Fig. 5</a>).</font> </p>     <p align="center"><a name="F5"><img src="/img/cmf/n38/imagenes/Art04-Figura5.jpg" width="609" height="495"></a></p>     <p><font face="Arial" size="2">La secuencia obtenida presenta una transición en la posición 16298 de timina a citosina, este haplotipo podría  pertenecer al haplogrupo V [14] (aunque no es descartable que también pudiera  ser asignada a un haplogrupo H). Entre los diez haplogrupos más comunes en  individuos Caucásicos [15] (H, T, J, K, U, I, V, W, M, X) el haplogrupo V es uno  de los que con menos frecuencia se presentan (1,6 %) [14]. Las secuencias  obtenidas de las muestras indubitadas procedentes de familiares (saliva y pelo)  coincidieron base a base con la obtenida de las muestras de fémur. Estos  resultados pueden ser observados en la <a href="#T2"> Tabla 2</a> y en la <a href="#F5"> Fig. 5</a>. La secuencia  consensuada obtenida fue por último cotejada con las secuencias de ADNmt del  personal del laboratorio no obteniéndose coincidencia alguna. </font>     <p align="center"><a name="T2"><img src="/img/cmf/n38/imagenes/Art04-Tabla2.jpg" width="330" height="173"></a></p>     <p><font face="Arial" size="2">La secuencia final obtenida fue  16298C, 263G, 315.1C. Se realizó una consulta en una base de datos de 2192  individuos caucásicos, obteniéndose otra secuencia en dicha base de datos con  idénticas discrepancias con respecto a la CRS. La frecuencia (<i>p</i>) de dicha  secuencia fue de 0,0013 y para el cálculo del LR planteamos las siguientes  hipótesis:</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> H<sub>0</sub> = Probabilidad de obtener las secuencias del hueso y la muestra de  referencia dado que el cadáver del que procede el hueso y el familiar que aporta  muestra de referencia pertenezcan al mismo linaje materno.    <br> H<sub>1</sub> = Probabilidad de obtener las secuencias del hueso y la muestra de  referencia dado que el cadáver del que procede el hueso y el familiar que aporta  muestra de referencia no pertenezcan al mismo linaje materno.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"> <font face="Arial" size="2">LR = H<sub>0</sub>/H<sub>1</sub></font>     <p><font face="Arial" size="2">El LR obtenido fue de 735. Este valor  indica el número de veces que es más probable que obtengamos las secuencias  descritas para el fémur y las muestras de referencia si dichas muestras son  aportadas por personas emparentadas por vía materna frente a que se obtengan  dichos resultados de secuencia si las personas que aportan dichas muestras no  están emparentadas por vía materna.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Los resultados que aquí se presentan confirman una vez más, tal y como han  publicado autores anteriores [17], que el análisis del ADN mitocondrial se  convierte en una estrategia adecuada para llevar a cabo la identificación de  cadáveres de cierta antigüedad o de aquellos casos en los que solo se dispone de  parientes lejanos emparentados por vía materna. Esta última circunstancia es la  que concurre en el caso que aquí se describe, puesto que no se disponía de más  familiares que una sobrina.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Cuando se dispone de progenitores o descendientes directos (hijos/as) de la  persona que se intenta identificar y además es posible obtener una cantidad y  calidad adecuada de ADN nuclear para llevar a cabo un análisis de polimorfismo  genético mediante marcadores nucleares (STRs), la opción del análisis de ADN  nuclear es la elegida, ya que los índices de probabilidad aumentan  extraordinariamente si se compara con los que se obtienen mediante análisis de  ADNmt. Las bases de datos de ADNmt son bastante limitadas en cuanto al número de  datos, y esta circunstancia explica los bajos índices de probabilidad que se  obtienen cuando trabajamos con la opción del ADNmt. Actualmente se trabaja  activamente desde el laboratorio de Medicina Legal de Innsbruck (Austria) en la  creación de una gran base de datos mundial denominada EMPOP (EDNAP mtDNA  population database) [18] que tiene por objetivo recopilar secuencias de ADNmt a  nivel mundial y ofertar así a la comunidad forense una herramienta fundamental  en el tratamiento estadístico de las muestras analizadas mediante ADNmt.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Si bien es cierto que los análisis de cuantificación de ADN nuclear de las  muestras de fémur revelaron la presencia de ADN nuclear en muy escasa cantidad  (inferior a 156 pg) es posible que dichas muestras pudieran, empleando las  estrategias de amplificación adecuadas, generar perfiles genéticos  interpretables. En la actualidad en nuestro laboratorio se están llevando a cabo  distintos ensayos con el fin de poder obtener resultados para distintos short  tandem repeats (STRs) nucleares. El estado de integridad del ADN de los restos  óseos depende de diferentes variables ligadas a las condiciones medio  ambientales de la zona donde se encuentre la fosa, de manera que es posible  esperar, dependiendo de su procedencia, distinto estado de integridad del  material genético. No obstante, pensamos que sería una buena aproximación poder  determinar si con restos óseos de una antigüedad aproximada de 65 años es  posible realizar análisis del ADN nuclear, puesto que en algunas ocasiones sí  que se puede disponer de descendientes directos vivos o exhumados.</font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> El cumplimiento de todos los requisitos impuestos en nuestro laboratorio para la  aceptación de resultados finales garantiza la fiabilidad de los resultados y así  mismo podemos afirmar que los grandes avances tecnológicos, centrados  básicamente en los secuenciadores automáticos y software de análisis han  facilitado enormemente la secuenciación del ADNmt, labor que hace tan solo unos  pocos años resultaba terriblemente tediosa y no ausente de errores.    <br>     <br> <b> AGRADECIMIENTOS:</b></font></p>     <p><font face="Arial" size="2"> Los autores desean mostrar su agradecimiento a los médicos forenses Dr. Santiago  Crespo Alonso, Dr. Gabriel Font Valserchi, Dra. Mercè Subirana Doménech, Dr.  Josep Manel Tortosa López y Dr. Queral Solè Barjau por el laborioso y exhaustivo  trabajo de campo realizado.<font face="Wingdings" size="2">q</font></font></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <font face="Arial" size="2"><b>BIBLIOGRAFÍA:</b></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 1. Bodenhagen D, Clayton DA. The number of mitochondrial deoxiribonucleic acid  genomes in mouse L and human HeLa cells. J Biol Chem 1974; 249:1991-1995.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558767&pid=S1135-7606200400040000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 2. Brown WM, George M and Wilson AC. Rapid evolution of animal mitochondrial DNA.  Proc Natl Acad Sci USA 1979; 76: 1967-1971.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558768&pid=S1135-7606200400040000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 3. Cann RL, Stoneckey M Wilson AC. Mitochondrial DNA and Human Evolution. Nature  1987; 325: 31-36</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558769&pid=S1135-7606200400040000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 4. Giles RE, Blanc H, Cann HM, Wallace DC. Maternal inherence of human  mitochondrial DNA. Proc Natl Acad Sci USA 1980; 77: 6715-6719.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558770&pid=S1135-7606200400040000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 5. Gill P, Ivanov PL, Kimpton C, Piercy R, Benson N, Tully G, et al.  Identification of the remains of the Romanov family by DNA analysis. Nature  Genetics. 1994; 6, 130-135.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558771&pid=S1135-7606200400040000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 6. Jehaes E, Pfeiffer H, Toprak, Decorte R, Brinkmann B, Cassiman J-J.  Mitocondrial DNA analysis of the putative heart of Louis XVII son of Louis XVI  and Marie-Antoinette. Eur J Hum Genet 2001; 9: 185-190.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558772&pid=S1135-7606200400040000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 7. Anderson S, Bankier AT, Barrell BG, Bruijn MHK de, Coulson AR, Douin IC et  al. Sequence and organization of the mitochondrial genome. Nature 1981; 290:  457-465.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558773&pid=S1135-7606200400040000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 8. Wilson MR, DiZinno JA, Polanskey D, Reploge J, Budowle B. Validation of  mitochondrial DNA sequencing for forensic casework analysis. Int J Legal Med  1995; 108: 68-74.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558774&pid=S1135-7606200400040000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 9. Carracedo A, Bär W, Lincoln P, Mayr W, Morling N, Olaisen B, et al. DNA  Commission of the International Society for Forensic Genetics: guidelines for  mitochondrial DNA typing. Forensic Sci Int 2000; 110: 79-85.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558775&pid=S1135-7606200400040000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 10. Tully G, Bär W, Brinkmann B, Carracedo A, Gill P, Parson W et al.  Considerations by the European DNA profiling (EDNAP) group on the working  practices, nomenclature and interpretation of mitochondrial DNA profiles.  Forensic Sci Int 2001; 124: 83-91.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558776&pid=S1135-7606200400040000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 11. Holland MM, Parsons TJ. Mitochondrial DNA sequence analysis validation and  use for forensic casework, Forensic Sci Rev 1999; 11: 21-50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558777&pid=S1135-7606200400040000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 12. Balding DJ, Nichols RA. DNA profile match probability calculation: how to  allow for population stratification, relatedness, database selection and single  bands. Forensic Sci Int 1994; 64: 125-140.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1558778&pid=S1135-7606200400040000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Arial" size="2"> 13. Evett IW, Weir BS. 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