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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Bases fisiológicas de la regeneración ósea I: Histología y fisiología del tejido óseo]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Complutense Facultad de Odontología Departamento de Medicina y Cirugía Bucofacial]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Bone is the only body tissue capable of regeneration, allowing the restitutio ad integrum following trauma. In the event of a fracture or bone graft, new bone is formed, which following the remodeling process is identical to the pre-existing. Bone is a dynamic tissue in constant formation and resorption. This balanced phenomena, known as the remodeling process, allows the renovation of 5-15% of the total bone mass per year under normal conditions (1). Bone remodeling consists of the resorption of a certain amount of bone by osteoclasts, likewise the formation of osteoid matrix by osteoblasts, and its subsequent mineralization. This phenomenon occurs in small areas of the cortical bone or the trabecular surface, called "Basic Multicellular Units" (BMU). Treatment in Traumatology, Orthopedics, Implantology, and Maxillofacial and Oral Surgery, is based on the biologic principals of bone regeneration, in which cells, extracellular matrix, and osteoinductive signals are involved. The aim of this paper is to provide an up date on current knowledge on the biochemical and physiological mechanisms of bone regeneration, paying particular attention to the role played by the cells and proteins of the bone matrix.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <a name="top"></a> <b>     <p ALIGN="right"><font face="Verdana" size="2">CIRUGÍA BUCAL</font></p>     <p ALIGN="CENTER">&nbsp;</p>     <p ALIGN="left"><font face="Verdana" size="4">Bases fisiológicas de la regeneración ósea I. Histología y  fisiología del tejido óseo</font></p>     <p ALIGN="left">&nbsp;</p>     <p ALIGN="left">&nbsp;</p>     <p ALIGN="left"><font face="Verdana" size="2">Isabel Fernández-Tresguerres Hernández-Gil <sup>1</sup>,  Miguel Angel Alobera Gracia <sup>1</sup>,&nbsp;    <br>  Mariano del Canto Pingarrón <sup>1</sup>,  Luis Blanco Jerez <sup>2</sup></font></p>     <p ALIGN="left"></b><font face="Verdana" size="2">(1) Profesor Titular Interino, MD. PhD. DDS, Departamento de  Ciencias de la Salud III,&nbsp;    <br>  Facultad de Ciencias de la Salud, Universidad Rey Juan  Carlos, Alcorcón    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> (2) Profesor Titular, MD. PhD. DDS. Departmento de Medicina y  Cirugía Bucofacial,&nbsp;    <br>  Facultad de Odontología, Universidad Complutense. Madrid</font></p>     <p ALIGN="left"><a href="#down"><font face="Verdana" size="2">Dirección para correspondencia</font></a> &nbsp; </p>     <p ALIGN="left">&nbsp; </p>     <p ALIGN="left">&nbsp; </p> <hr size="1">     <p ALIGN="left"><b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN</font> </p> </b>     <p><font face="Verdana" size="2"> El hueso es el único tejido del organismo capaz de  regenerarse, permitiendo la restitutio ad integrum tras el trauma. Cuando se  produce una fractura, se coloca un implante osteointegrado o se realiza un  injerto para aumentar el sustrato óseo antes de la inserción de implantes, lo  que se pretende es la regeneración ósea, es decir, la formación de hueso nuevo  que, tras un proceso de remodelado, sea idéntico al preexistente.    <br> El hueso es un tejido dinámico en constante formación y  reabsorción. Este fenómeno equilibrado, denominado proceso de remodelado,  permite la renovación de un 5-15 % del hueso total al año en condiciones  normales (1). El remodelado óseo consiste en la reabsorción de una cantidad  determinada de hueso llevada a cabo por los osteoclastos, así como la formación  de la matriz osteoide por los osteoblastos y su posterior mineralización. Este  fenómeno tiene lugar en pequeñas áreas de la cortical o de la superficie  trabecular, llamadas &quot;unidades básicas de remodelado óseo&quot;.    <br> La actuación terapéutica en los campos de la Traumatología y  Ortopedia, Cirugía Oral y Maxilofacial e Implantología, se asienta sobre los  principios biológicos de la regeneración ósea, en los que están implicados  células, matriz extracelular y señales osteoinductivas.    <br> El objetivo de este trabajo es realizar una puesta al día de  los conocimientos actuales sobre los mecanismos bioquímicos y fisiológicos de la  regeneración ósea, resaltando de manera especial el papel que en ella juegan las  células y las proteínas de la matriz ósea.</font> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font face="Verdana" size="2">Palabras clave: </font> </b> <font face="Verdana" size="2">  Hueso, regeneración, reabsorción, osteogénesis.</font> </p> <hr size="1"> <font FACE="Verdana" SIZE="1">     <p><font face="Verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font>     <p><font face="Verdana" size="2">Bone is the only body tissue capable of regeneration, allowing the restitutio ad integrum following trauma. In the event of a fracture or bone graft, new bone is formed, which following the remodeling process is identical to the pre-existing.    <br> Bone is a dynamic tissue in constant formation and resorption. This balanced phenomena, known as the remodeling process, allows the renovation of 5-15% of the total bone mass per year under normal conditions (1). Bone remodeling consists of the resorption of a certain amount of bone by osteoclasts, likewise the formation of osteoid matrix by osteoblasts, and its subsequent mineralization. This phenomenon occurs in small areas of the cortical bone or the trabecular surface, called &quot;Basic Multicellular Units&quot; (BMU).    <br> Treatment in Traumatology, Orthopedics, Implantology, and Maxillofacial and Oral Surgery, is based on the biologic principals of bone regeneration, in which cells, extracellular matrix, and osteoinductive signals are involved.    <br> The aim of this paper is to provide an up date on current knowledge on the biochemical and physiological mechanisms of bone regeneration, paying particular attention to the role played by the cells and proteins of the bone matrix.</font>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Key words</b>: Bone, regeneration, resorption, osteogenesis.</font></p> <i> <hr size="1"> </i>     <p></p> </font><b>     <p> &nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana">Introducción</font></p> </b>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"> Desde un punto de vista histológico, el hueso es un tejido  conjuntivo mineralizado muy vascularizado e inervado, que está estructurado en  laminillas de matriz osteoide calcificada. La disposición de estas laminillas es  la que determina que el hueso sea cortical o esponjoso. Ambos están constituidos  por osteonas. El hueso cortical o compacto se estructura en conductos de Havers  recubiertos de laminillas en disposición concéntrica donde se sitúan los  osteocitos. El hueso esponjoso o trabecular lo constituyen laminillas óseas en  forma de red que delimitan cavidades areolares en cuyo interior se encuentra  médula ósea (2).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Tanto el hueso cortical como el esponjoso contienen células  especializadas, matriz orgánica y fase mineral.</font></p>     <p><i><font face="Verdana" size="2">1. Células óseas</font></i><font face="Verdana" size="2">    <br> En el hueso coexisten varios tipos de células (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Las  células óseas se hallan dentro del propio tejido óseo o en el estroma conjuntivo  de la médula ósea, rico en células mesenquimales pluripotenciales  indiferenciadas (o mesenchymal stem cells). Desde los trabajos de Friedenstein  en 1976 se conoce que estas stem cells pueden dar origen a cinco estirpes  celulares distintas: fibroblastos, osteoblastos, condroblastos, adipocitos y  mioblastos (3), en respuesta a diferentes señales moleculares que inician la  cascada de activación de diferentes genes.</font></p>     <p align="center"> <i> <font face="Verdana" size="2"><a name="t1"><img border="0" src="/img/revistas/medicorpa/v11n1/11e.ht19.gif" width="445" height="203"> </a> </font> </i> </p>     <p><font face="Verdana" size="2"> 1.1.- Diferenciación osteoblástica.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> A/- Genética y factores de crecimiento: Actualmente se sabe  que la diferenciación hacia la estirpe osteoblástica está controlada por genes  pertenecientes a la familia Hedgehog, de los cuales los más conocidos son: Ihh  (Indian hedgehog) y Shh (Sonic hedgehog) (4,5). También es esencial el factor de  transcripción Cbfa1 (core-binding factor a-1, también llamado Runx2) (6-9) y las  proteínas morfogenéticas óseas (BMPs), que constituyen los reguladores más  potentes de la diferenciación osteoblástica desde las células mesenquimales  pluripotenciales (4).</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2"> B/- Marcadores de diferenciación: A medida que las células  precursoras se van diferenciando expresan en la membrana celular proteínas  específicas de su función o marcadores. La expresión de Cbfa1 es la primera  evidencia de la diferenciación osteogénica (4), cuyo máximo nivel se alcanza en  los pre-osteoblastos. El colágeno I y la osteopontina (OPN), se expresan de  forma temprana en células osteoprogenitoras. Igualmente la fosfatasa alcalina  (ALP) es una proteína de superficie que podría participar en la regulación de la  proliferación, migración y diferenciación de las células osteoblásticas. La  sialoproteína ósea (BSP) y la osteocalcina (OCN), son marcadores de  diferenciación del pre-osteoblasto al osteoblasto y aparecen cuando se inicia la  mineralización. La expresión de estas proteínas resulta especialmente útil como  marcadores osteogénicos en los estadíos finales de la diferenciación osteoblástica.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> 1.2.- El osteoblasto.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Los osteoblastos son células grandes (20-30 µm), de forma  poliédrica, con citoplasma basófilo y con un aparato de Golgi y un retículo  endoplásmico rugoso de tamaño importante. Proceden de las células mesenquimales  pluripotenciales de la médula ósea, endostio, periostio y pericitos  perivasculares (10). Emiten procesos citoplasmáticos hacia la matriz, que  comunican con la red de osteocitos y con osteoblastos vecinos. Los osteoblastos  y osteocitos se comunican entre sí por proteínas transmembrana o integrinas, que  actúan de enlace entre células o entre una célula y la matriz extracelular,  permitiendo el paso de mensajeros como calcio, citoquinas o prostaglandinas. En  estas células la conexión intercelular es la Conexina 43 (11).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"> Los osteoblastos sintetizan la matriz orgánica o sustancia  osteoide a un ritmo de 2 a 3 µm por día y expresan una enzima característica la  fosfatasa alcalina (ALP), que permite la mineralización a un ritmo de 1-2 µm por  día. Actualmente, se sabe que: 1.- sintetizan las proteínas colágenas y no  colágenas de la matriz orgánica del hueso, 2.- dirigen la disposición de las  fibrillas de la matriz extracelular, 3.- contribuyen a la mineralización de la  sustancia osteoide, gracias a la fosfatasa alcalina, 4.- median en la  reabsorción llevada a cabo por los osteoclastos a través de la síntesis de  citoquinas específicas (12) y 5.- sintetizan factores de crecimiento.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> La vida media de los osteoblastos humanos es de 1 a 10  semanas, al término de las cuales pueden desaparecer por mecanismos de  apoptosis, transformarse en células limitantes o de revestimiento (bone lining  cells) o en osteocitos (15 %) (13). Ambos tipos celulares representan estadíos  más avanzados de maduración. Las células limitantes son células elongadas y  planas, con un núcleo en forma de huso, sin apenas organelas. Pueden expresar  los marcadores osteoblásticos anteriormente citados como sialoproteína ósea,  osteopontina, osteonectina, y fosfatasa alcalina así como el receptor de  parathormona (PTH). Permanecen a lo largo de la superficie endóstica,  constituyendo con el endostio una capa protectora de la superficie ósea, que  juega un papel importante en la activación del remodelado óseo.</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2"> 1.3.- El osteocito.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Una vez mineralizada la matriz, algunos osteoblastos quedan  atrapados dentro, transformándose en osteocitos. Los osteoblastos, osteoclastos  y células limitantes se hallan en la superficie ósea, mientras que los  osteocitos están en el interior. Los osteocitos son las células más abundantes  del hueso (10 veces más que los osteoblastos). Poseen forma estrellada y su  cuerpo se sitúa en el interior de lagunas u osteoplasmas y los procesos  citoplasmáticos se comunican entre sí a través de los conductos calcóforos que  están llenos de fluido óseo extracelular. De esta forma, los osteocitos se  organizan formando un sincitio de células interconectadas que representa una  única estructura, con la ventaja de que existe una gran superficie de contacto  en el interior y hacia la superficie ósea, para asegurarse oxígeno y nutrientes.  Cuando se produce un trauma en el hueso el cese de la circulación sanguínea  origina hipoxia y necrosis de los osteocitos que estén a más de 0.1 mm de un  capilar intacto (14).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Los osteocitos también participan en la síntesis y  mineralización de la matriz osteoide, pero se cree que su función principal es  la de controlar el remodelado óseo, detectando las variaciones mecánicas de las  cargas, fenómeno denominado mecanotransducción (15)</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Los osteocitos constituyen el estadío final desde la línea  osteoblástica y son incapaces de renovarse. Poseen los mismos marcadores que los  osteoblastos, pero tienen como marcador específico el CD44, receptor de membrana  que se expresa fuertemente en osteocitos y es negativo en osteoblastos y células  limitantes.</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2"> 1.4.- El osteoclasto.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Las células encargadas de la reabsorción son los  osteoclastos. Se trata de células grandes (100 µm), multinucleadas, ricas en  mitocondrias y vacuolas. Los osteoclastos contienen fosfatasa ácida tartrato  resistente (TRAP), que permite la desfosforilación de las proteínas, cuya  actividad es aprovechada para su identificación, tanto in vivo como in vitro.  Además tienen receptores para calcitonina.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Los osteoclastos proceden de células madre hematopoyéticas  medulares denominadas &quot;Unidades Formadoras de Colonias de Granulocitos y  Macrófagos&quot; (CFU-GM), precursoras de macrófagos y monocitos (16).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los osteoclastos tienen dos especializaciones en la membrana:  un borde en cepillo, que es donde tiene lugar la reabsorción y una zona clara,  rica en microfilamentos, con integrinas que sirven de anclaje a la matriz. Para  ello, los osteoclastos se movilizan hacia la zona a reabsorber y, seguidamente,  se adhieren a la superficie ósea mineralizada por el ribete en cepillo sellando  los bordes del área mediante las integrinas. La integrina del osteoclasto,  particularmente av&#946;3,  reconoce la secuencia Arg-Gly-Asp (RGD) existente en el colágeno y otras  proteínas de la matriz osteoide. A este nivel el pH es ácido, ya que secretan  ácidos (H+) generados por la anhidrasa carbónica II y enzimas proteolíticas como  colagenasas, metaloproteasas, catepsina K, glucuronidasa, etc (16), que van a  originar la reabsorción del hueso mediante la solubilización de la matriz  orgánica primero y de la mineral después.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Respecto a la osteoclastogénesis actualmente se sabe que los  osteoblastos son fundamentales para la formación de osteoclastos. Así, el factor  estimulante de las colonias de macrófagos (M-CSF) producido por los osteoblastos  es requerido en las primeras fases de la osteoclastogénesis para la formación de  células gigantes multinucleadas. Los conocimientos actuales acerca de la  regulación de la osteoclastogénesis se basan en la existencia de 3 moléculas  clave: OPG (osteoprotegerina, proteína sintetizada por osteoblastos y pre-osteoblastos),  RANKL (ligando situado en la superficie de osteoblastos y pre-osteoblastos) y  RANK (receptor del anterior situado en la membrana de osteoclastos y pre-osteoclastos).  El RANKL (receptor activator of NFkB ligand) antiguamente llamado ODF (osteoclast  differentiation factor) (12,17) es una citoquina transmembrana perteneciente a  la familia del factor de necrosis tumoral (TNF) (18). La interacción entre RANKL  y su receptor RANK produce una activación de la diferenciación y de la actividad  osteoclástica, aumentando la reabsorción. Asimismo, los efectos del RANKL tanto  in vivo, como in vitro son inhibidos por la osteoprotegerina (OPG), proteína  circulante producida por los osteoblastos y pre-osteoblastos perteneciente a la  superfamilia de los receptores de TNF (12). </font>  </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Cuando se unen OPG y RANKL se inhibe la unión de RANKL a RANK  y se inhibe la diferenciación osteoclástica. Por ello OPG, RANK y RANKL son  importantes reguladores de la osteoclastogénesis.</font>  </p>     <p><i><font face="Verdana" size="2">2. Matriz orgánica</font></i><font face="Verdana" size="2">    <br> La matriz orgánica o sustancia osteoide representa un tercio  del peso óseo. Está formada fundamentalmente por proteínas, entre las que  destaca el colágeno (90%) (<a href="/img/revistas/medicorpa/v11n1/11e.ht20.gif" target="_blank">tabla 2</a>). La matriz juega un papel importante en el  conjunto del sistema óseo, siendo evidente este hecho cuando aparecen  enfermedades del colágeno como la osteogénesis imperfecta. Sin embargo,  actualmente debe considerarse a la matriz mineralizada extracelular como algo  más que un reservorio de calcio y fósforo, ya que constituye una reserva de  proteínas que participan en la regulación de la diferenciación celular y en la  integridad y función del tejido óseo (19). </font>  </p>     <p><font face="Verdana" size="2">A/.- El colágeno: El 90% de la matriz extracelular (MEC) está  constituida por colágeno, sobre todo tipo I (&gt;95%) y tipo V (&lt;5%). También se ha  comprobado la presencia en pequeñas proporciones de colágeno tipo III,  relacionado con las fibras de Sharpey y tipo XII, formado bajo estrés mecánico.  En la molécula de colágeno se halla la secuencia Arg-Gly-Asp (RGD), que es  reconocida por las integrinas de superficie de las células óseas (20). Contiene  característicamente, los aminoácidos hidroxilisina e hidroxiprolina siendo, este  último, un marcador específico de todos los fenotipos de colágeno y estando sus  valores de excreción urinaria en relación directa con la tasa de reabsorción  ósea (21). Las fibras de colágeno se estabilizan mediante puentes de hidrógeno  entre aminoácidos y a través de la formación de puentes de piridinolina, entre  las hidroxilisinas y lisinas. Sin embargo, el colágeno no tiene gran afinidad  por el calcio, por lo que son otras las proteínas implicadas en el depósito  mineral.</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">B/.- Proteínas no colágenas: Entre ellas destacan:</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">B.1.- Proteoglicanos: Constituyen el 10% de las proteínas no  colágenas. Son moléculas de gran tamaño. En la matriz osteoide hay cuatro tipos  de proteoglicanos: Hialuronano y Condroitín-sulfato: de molécula grande,  intervienen en las etapas iniciales de la morfogénesis ósea. Biglicano y  decorina: de molécula más pequeña, aparecen en las fases siguientes de la  formación ósea. </font>  </p>     <p><font face="Verdana" size="2">B.2.- Proteínas con ácido &#947;-carboxi-glutámico:  Son la osteocalcina (OCN) y la proteína de la matriz con ácido &#947;-carboxiglutámico.  Este ácido es un aminoácido que liga calcio y necesita vitamina K para su  síntesis.</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">La osteocalcina es una pequeña proteína de la matriz  sintetizada por los osteoblastos y plaquetas, dependiente de las vitaminas D y  K. Representa el 15% de las proteínas no colágenas de la matriz y contiene tres  restos de ácido <i> &#947;</i>-carboxiglutámico.  Sus niveles plasmáticos se han considerado como uno de los marcadores  bioquímicos de la osteogénesis, relacionándose con el número y actividad de los  osteoblastos.</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">B.3.- Glicoproteínas: Son la osteonectina, la fosfatasa  alcalina y las proteínas con el tripéptido RGD (Arg-Gly-Asp).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">La osteonectina es una glicoproteína con gran afinidad por el  colágeno tipo I, por el calcio y por la hidroxiapatita. Representa el 25% de las  proteínas no colágenas. Se cree que interviene en la regulación de la adhesión  celular entre la matriz y las células. En el hueso es necesaria para la  mineralización normal.</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">La fosfatasa alcalina es una enzima que libera fosfato  inorgánico a partir de ésteres fosfóricos, necesario para la mineralización.  Existen varias isoenzimas y, entre ellas la ósea, se ha considerado un buen  marcador de la actividad osteoblástica.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Proteínas con el tripéptido RGD, también llamadas SIBLINGS (Small  Integrin-Binding Ligand, N-linked Glycoprotein) son fundamentalmente cinco:  osteopontina, sialoproteínas óseas, fibronectina, trombospondina y vitronectina.  Son glicoproteínas fundamentales en los procesos de remodelado y regeneración  óseos, con una secuencia Arg-Gly-Asp (RGD) que es reconocida por las integrinas  de los osteoblastos y los osteoclastos (av&#946;3,  entre otras). También actúan como receptores de superficie de las células óseas  permitiendo la adhesión de las células a la matriz extracelular y activando  señales.</font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">B.4.-. Proteínas procedentes del plasma: Se encuentran en la  matriz orgánica ósea en mayor proporción que en el plasma. Son la albúmina y la  a2-SH-glicoproteína, probablemente relacionadas con la incorporación del calcio  a la matriz osteoide. </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">B.5.-. Factores de Crecimiento: Son polipéptidos sintetizados  en el propio hueso o procedentes de otros lugares (hígado, plaquetas, etc.), que  intervienen en la diferenciación, crecimiento y proliferación de las células de  forma autocrina o paracrina (<a href="/img/revistas/medicorpa/v11n1/11e.ht20.gif" target="_blank">tabla 2</a>) (22). </font></p> <i>     <p><font face="Verdana" size="2">3. Fase mineral</font></i><font face="Verdana" size="2">    <br> Finalmente, el componente mineral del hueso representa el 65%  del peso óseo. Está formado por calcio, fosfato y carbonato (en proporciones de  10:6:1) en forma de pequeños cristales de hidroxiapatita Ca<sub>10</sub> (PO<sub>4</sub>)<sub>6</sub>(OH)<sub>2</sub>  y, en menor proporción hay magnesio, sodio, potasio, manganeso y flúor. El  plasma se encuentra sobresaturado de calcio y fósforo respecto a la  hidroxiapatita, por lo que debe haber sustancias que inhiban la mineralización.  Las proteínas con capacidad adhesiva favorecen la mineralización, mientras que  los proteoglicanos, magnesio, ATP y pirofosfato la inhiben. </font></p> <i>     <p><font face="Verdana" size="2">4. Regeneración ósea</font></i><font face="Verdana" size="2">    <br> La regeneración tisular es la respuesta que consigue la  restitutio ad integrum del tejido tras un trauma, a diferencia de la reparación,  donde el tejido que se forma es un tejido cicatricial, con características  diferentes al original. En este sentido el hueso es el único tejido del  organismo, a excepción del tejido embrionario, que se restituye totalmente tras  una lesión (1). La regeneración ósea origina una respuesta en la que están  involucrados los vasos sanguíneos, las células y la matriz extracelular. Desde  los estudios de Trueta (23) se sabe de la importancia de los vasos sanguíneos en  la osteogénesis. Tras un trauma, se produce una respuesta inflamatoria y un  hematoma inicial, con hematíes, plaquetas y fibrina. Las células del coágulo  liberan interleuquinas y factores de crecimiento, originando la migración de  linfocitos, macrófagos, precursores de osteoclastos y células mesenquimales  pluripotenciales. Estas señales moleculares promueven la diferenciación hacia  células endoteliales, fibroblastos, condroblastos y osteoblastos, dando origen a  un nuevo tejido fibrovascular, que reemplazará al coágulo inicial. Todo ello  está regido por una serie de complejas interacciones entre factores de  crecimiento, hormonas y citoquinas. En este proceso va a ser fundamental el  aporte vascular, la síntesis proteica y la mineralización.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font face="Verdana">Bibliografía</font></p> </b>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 1. Davies JE, Hosseini MM. Histodinamics of endosseous would  healing. En: Davies JE ed. Bone Engineering. Toronto: Davies JE ed.; 2000. p.  1-14. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944349&pid=S1698-6946200600010001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 2. Wheater PR, Burkitt HG, Daniels VG. Functional Histology.  New York: Churchill Livingstone ed.; 1987. p. 142-60. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944350&pid=S1698-6946200600010001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 3. Friedenstein AJ. Precursor cells of mechanocytes. Int Rev  Cytol 1976;47:327-55. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944351&pid=S1698-6946200600010001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 4. Yamaguchi A, Komori T, Suda T. Regulation of osteoblast  differentiation mediated by Bone Morphogenetic Proteins, Hedgehogs, and Cbfa1.  Endocr Rev 2000;21:393-411. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944352&pid=S1698-6946200600010001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 5. Aubin JE. Osteogenic cell differentiation. En: Davies JE  ed. Bone Engineering. Toronto: Davies JE ed.; 2000. p. 19-30. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944353&pid=S1698-6946200600010001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 6. Heersche JNM. Mesenchymal stem cells and their involvement  in bone remodeling, repair, and regeneration. En: Zarb G, Leckholm U,  Albrektsson T, Tenenbaum H eds. Aging, Osteoporosis, and Dental Implants. Carol  Stream: Quintessence Publishing Co.; 2002. p. 17-23. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944354&pid=S1698-6946200600010001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 7. Komori T, Yagi H, Nomura S, Yamaguchi A, Sasaki K, Deguchi  K et al. Targeted disruption of Cbfa1 results in a complete lack of bone  formation owing to maturational arrest of osteoblasts. Cell 1997;89:755-64. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944355&pid=S1698-6946200600010001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 8. Ducy P, Zhang R, Geoffroy V, Ridall AL, Karsenty G.  Osf2/Cbfa1: a transcriptional activator of osteoblasts differentiation. Cell  1997;89:747-54. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944356&pid=S1698-6946200600010001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 9. Hoshi K, Komori T, Ozawa H. Morphological characterization  of skeletal cells in Cbfa1-deficient mice. Bone 1999;25:639-51. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944357&pid=S1698-6946200600010001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 10. Canfield AE, Doherty MJ, Ashton BA. Osteogenic potential  of vascular pericytes. En: Davies JE ed. Bone Engineering. Toronto: Davies JE  ed.; 2000. p. 143-51. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944358&pid=S1698-6946200600010001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 11. Civitelli R, Beyer EC, Warlow PM, Robertson AJ, Geist ST,  Steinberg TH. Conexin 43 mediates direct intercellular communication in human  osteoblastic cells networks. J Clin Invest 1993;91:1888-96. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944359&pid=S1698-6946200600010001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 12. Simonet WS, Lacey DL, Dunstan CR, Kelley M, Chang M-S,  Luethy R et al. Osteoprotegerin: a novel secreted protein involved in the  regulation of bone density. Cell 1997;89:309-19. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944360&pid=S1698-6946200600010001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 13. Aubin JE, Liu F. The osteoblasts lineage. En: Bilezikian  JP, Raisz LG, Rodan GA, eds. Principles of Bone Biology. San Diego, California:  Academic Press;1996. p. 51-67. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944361&pid=S1698-6946200600010001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 14. Ham AW. Some histophysiological problems peculiar to  calcified tissue. J Bone Joint Surg Am 1952;34:701. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944362&pid=S1698-6946200600010001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 15. Lanyon L. Osteocytes, strain detection, bone remodeling  and remodeling. Calcified Tissue Int 1993;53:102-7. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944363&pid=S1698-6946200600010001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 16. Mundy GR. Cytokines and growth factors in the regulation  of bone remodeling. J Bone Miner Res 1993;8:505-10. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944364&pid=S1698-6946200600010001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 17. Burgess TL, Quian Y, Kaufman S, Ring BD, Van G,  Capparelli C et al. The ligand for osteoprotegerin (OPGL) directly activates  mature osteoclasts. J Cell Biol 1999;145:527-38. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944365&pid=S1698-6946200600010001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 18. Lacey DL, Timms E, Tan HL, Kelley MJ, Dunstan CR,  Burguess TL et al. Osteoprotegerin ligand is a cytokine that regulates  osteoclasts differentiation and activation. Cell 1998;93:165-76. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944366&pid=S1698-6946200600010001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 19. Young MF. Bone matrix proteins: more than markers. Calcif  Tissue Int 2003;72:2-4. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944367&pid=S1698-6946200600010001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 20. Gehron Robey P, Fedarko NS, Hefferan TE, Bianco P, Vetter  UK, Grzesik W et al. Structure and molecular regulation of bone matrix proteins.  J Bone Miner Res 1993;8:483-7. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944368&pid=S1698-6946200600010001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 21. Schonau E, Rauch F. Markers of bone and collagen  metabolism. Problems and perspectives in Pediatrics. Horm Res 1997;48:50-9. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944369&pid=S1698-6946200600010001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 22. Canalis E, Economides AN, Gazzerro E. Bone morphogenetic  proteins, their antagonists, and the skeleton. Endocr Rev 2003;24:218-35. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944370&pid=S1698-6946200600010001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"> 23. Trueta J. The role of blood vessels in osteogenesis. J  Bone Joint Surg Br 1963;45:402.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2944371&pid=S1698-6946200600010001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><a href="#top"><font size="2" face="Verdana"><img border="0" src="/img/revistas/medicorpa/v11n1/seta.gif" width="15" height="17"></font></a><font size="2" face="Verdana"> <a name="down">Dirección para correspondencia</a></font></b><font face="Verdana" size="2">    <br> Dra. Isabel Fernández-Tresguerres Hernández-Gil    <br> Facultad de Ciencias de la Salud, Avda de Atenas s/n,    <br> Alcorcón, 28922 Madrid.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Teléfono: 91 4888941.    <br> E-mail: <a href="mailto:isatresguerres@yahoo.es">isatresguerres@yahoo.es</a></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Recibido: 2-08-2004    <br> Aceptado: 14-08-2005</font></p>      ]]></body><back>
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